ส่วนที่ 1: ฤทธิ์ต้านการอักเสบ สารต้านอนุมูลอิสระ การให้ความชุ่มชื้น และการสร้างภูมิคุ้มกันของ Quercetin 3-O- -D-Glucuronide ใน Keratinocytes ของมนุษย์และเซลล์เมลาโนมาผ่านการกระตุ้นเส้นทาง NF-κB และ AP-1

Mar 21, 2022


ติดต่อสอบถามเพิ่มเติมได้ที่tina.xiang@wecistanche.com



เชิงนามธรรม: เควอซิทิน3-O- -D-glucuronide(Q-3-G) คอนจูเกตกลูโคโรไนด์ของเควอซิทินได้รับการรายงานว่ามีต้านการอักเสบคุณสมบัติของมาโครฟาจที่กระตุ้นไลโปโพลีแซ็กคาไรด์ เช่นเดียวกับคุณสมบัติต้านมะเร็งและต้านอนุมูลอิสระ ซึ่งแตกต่างจากเควอซิทินซึ่งได้รับการอธิบายอย่างกว้างขวางว่ามีฤทธิ์ทางเภสัชวิทยามากมายรวมถึงผลในการปกป้องผิวหนัง ประโยชน์ทางเภสัชวิทยาและกลไกของ Q-3-G ในผิวหนังยังคงต้องได้รับการอธิบายอย่างชัดเจน การศึกษานี้มุ่งเน้นไปที่การกำหนดลักษณะคุณสมบัติในการปกป้องผิวหนัง รวมทั้งคุณสมบัติต้านการอักเสบและต้านอนุมูลอิสระของความเครียดที่เกิดจากปฏิกิริยาออกซิเดชันที่เกิดจาก Q-3-ต่อ UVB หรือ H2O2- ผลของความชุ่มชื้น และการเกิด antimelanogenesisกิจกรรมโดยใช้เซลล์เคราติโนไซต์ของมนุษย์ (HaCaT) และเซลล์มะเร็งผิวหนัง (B16F10) Q-3-G down-ควบคุมการแสดงออกของยีนและไซโตไคน์ที่ก่อให้เกิดการอักเสบ เช่น ไซโคลออกซีเจเนส-2 (COX-2) และปัจจัยเนื้อร้ายของเนื้องอก (TNF)- ใน H2O หรือ UVB- เซลล์ HaCaT ที่ฉายรังสี นอกจากนี้เรายังแสดงให้เห็นว่า O-3-Gexhibits มีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระโดยใช้การวิเคราะห์การขับอนุมูลอิสระ โฟลว์ไซโตเมตรี และการแสดงออกที่เพิ่มขึ้นของปัจจัยที่เกี่ยวข้องกับนิวเคลียสอีรีทรอยด์ 2- แฟกเตอร์ 2 (Nrf2) Q-3-G ลดการผลิตเมลานินในเซลล์ B16F10 ที่กระตุ้น -melanocyte-stimulating ( -MSH) ผลกระทบของความชุ่มชื้นและกลไกของ Q-3-G ได้รับการตรวจสอบโดยการประเมินยีนที่เกี่ยวข้องกับปัจจัยความชุ่มชื้น เช่น ทรานส์กลูตามิเนส-1(TGM-1), filaggrin(FLG) และการสังเคราะห์กรดไฮยาลูโรนิก (มี)-1 นอกจากนี้ Q-3-G ยังเพิ่มฟอสโฟรีเลชั่นของ c-Jun, Jun N-terminal kinase (JNK), Mitogen-activated protein kinase (MAPK) kinase 4(MKK4) และ TAK1 ที่เกี่ยวข้องกับ MAPK/AP เส้นทาง -1 และฟอสโฟรีเลชั่นของ IkB , IkB kinase(IKK)- , Akt และ Src ที่เกี่ยวข้องกับเส้นทาง NF-kB เมื่อนำมารวมกัน เราได้แสดงให้เห็นว่า Q-3-G มีฤทธิ์ต้านการอักเสบ สารต้านอนุมูลอิสระ การให้ความชุ่มชื้น และการสร้างภูมิคุ้มกันในเซลล์เคราตินและเซลล์เมลาโนมาของมนุษย์ผ่านวิถีทาง NF-kB และ AP-1

คีย์เวิร์ด: เควอซิทิน 3-O- -D-glucuronide;การป้องกันรังสียูวี; ให้ความชุ่มชื้น; การเกิด antimelanogenesis; AP-1; NF-kB

flavonoids anti-inflammatory

1. บทนำ

ผิวหนัง ซึ่งเป็นอวัยวะที่ใหญ่ที่สุดของร่างกาย เป็นเกราะป้องกันที่มีบทบาทสำคัญในการปกป้องร่างกายจากสภาพแวดล้อมภายนอกและปัจจัยที่สร้างความเสียหาย เช่น รังสีอัลตราไวโอเลต จุลินทรีย์ที่ติดเชื้อ และสารเคมีอันตราย บาเรียนี้ยังควบคุมความสมดุลของอิเล็กโทรไลต์และอุณหภูมิของร่างกาย และป้องกันการสูญเสียความชื้น [1,2] ผิวหนังของมนุษย์ประกอบด้วยสามชั้น: หนังกำพร้า, ผิวหนังชั้นหนังแท้ที่มีอวัยวะ และเนื้อเยื่อใต้ผิวหนัง [3] ชั้นหนังกำพร้ามีบทบาทสำคัญในการรักษาอุณหภูมิของร่างกาย

Keratinocytes ซึ่งเป็นองค์ประกอบที่มีอยู่มากมายในผิวหนังชั้นนอกนั้นจะมีปฏิสัมพันธ์กับเซลล์อื่นอย่างแน่นหนาผ่าน desmosomes และรอยต่อที่แน่นหนาซึ่งทำให้เกิดอุปสรรคทางเคมีกายภาพที่มีประสิทธิภาพ[4] แม้ว่าผิวหนังจะทำหน้าที่เป็นเกราะป้องกัน แต่รังสีอัลตราไวโอเลต (UV) มีผลอย่างมากต่อเซลล์ส่วนใหญ่ รวมทั้ง keratinocytes ซึ่งเป็นชั้นนอกของผิวหนัง รังสียูวีสามารถทำให้เกิดริ้วรอยแห่งวัย ผิวถูกทำลาย ริ้วรอย และรอยดำ ซึ่งถือเป็นปัจจัยเสี่ยงที่สำคัญที่สุดประการหนึ่ง [5]แสงยูวีประกอบด้วยช่วงความยาวคลื่นสามช่วง: UVA(320-400 นาโนเมตร), UVB (280-320 นาโนเมตร) และ UVC (200-280 นาโนเมตร) ข้างเคียงกับไฮโดรเจนเปอร์ออกไซด์ (H2O2) ซึ่งทราบกันดีอยู่แล้วว่ามีส่วนทำให้เกิดความเครียดจากปฏิกิริยาออกซิเดชัน UVB สามารถนำไปสู่การผลิตออกซิเจนชนิดปฏิกิริยา (ROS) ผ่านการกระตุ้นของเอนไซม์ที่สร้าง ROS [6] การสะสมของ ROS ที่ควบคุมไม่ได้ในเซลล์รวมถึง keratinocytes ได้รับการอธิบายว่าทำให้เกิดการเปลี่ยนแปลงออกซิเดชันกับไขมัน โปรตีน กรดนิวคลีอิก และโมเลกุลภายในเซลล์อื่นๆ ที่นำไปสู่ความเสียหายต่อผิวหนังประเภทต่างๆ และกระบวนการที่เกี่ยวข้องกับความชรา เช่น การตายของเซลล์ ความเครียดจากปฏิกิริยาออกซิเดชัน และการอักเสบ [7,8] นอกจากนี้ เป็นที่ทราบกันดีว่าการตอบสนองต่อความเครียดจากปฏิกิริยาออกซิเดชันมีอิทธิพลต่อความเสียหายของส่วนประกอบต่างๆ ของเซลล์ [9] เซลล์ผิวที่เสียหายยังสามารถนำไปสู่การตอบสนองต่อการอักเสบ ส่งผลให้ผิวหนังได้รับความเสียหายเรื้อรัง [10] UVB หรือ H2O2-ประเภทหนึ่งที่ทำลายผิวผ่านกระบวนการทางชีววิทยาคือการแสดงออกของยีนที่ทำให้เกิดการอักเสบ เช่น ไซโคลออกซีเจเนส-2 (COX-2) และไซโตไคน์ที่ก่อให้เกิดการอักเสบ [11] ดังนั้นการพัฒนาผลการป้องกันผิวที่ปลอดภัย แข็งแกร่ง และมีประสิทธิภาพมากขึ้นจึงเป็นสิ่งจำเป็นสำหรับการป้องกันและปิดกั้นโรคที่เกี่ยวข้องกับ UVB หรือ H2O2 ซึ่งเป็นสื่อกลางที่ทำร้ายผิว

ความชุ่มชื้นของผิวยังมีบทบาทสำคัญในการรักษาการทำงานตามปกติ โดยเฉพาะอย่างยิ่ง stratum corneum (SC) มีผลป้องกันการสูญเสียน้ำ [12] ปริมาณน้ำของ stratum corneum มีส่วนในการลอกผิวและการเจริญเติบโตที่เหมาะสม ในขณะที่น้ำใน SC ไม่เพียงพอจะส่งเสริมการสะสมและความผิดปกติของ corneocytes [12,13] ในขั้นตอนสุดท้ายของการสร้างความแตกต่างของเคราติโนไซต์ พลาสมาเมมเบรนและออร์แกเนลล์ของเซลล์จะหายไป จากนั้นแคลเซียมที่ไหลเข้าจะเหนี่ยวนำทรานส์กลูตามิเนส (TGM) เพื่อเชื่อมขวางกับโปรตีนอื่นๆ การขาดหรือสูญเสีย TGM-1 ทำให้เกิดการเชื่อมขวางที่บกพร่องของการห่อหุ้มเซลล์ Lamella ichthyosis เป็นตัวอย่างของโรคที่เกิดจากการสูญเสีย TGM-1 นอกจากนี้ filaggrin (FLG) ซึ่งเป็นเมทริกซ์เคราตินที่ก่อตัวขึ้น มีบทบาทในการสร้าง SC เนื่องจากทำหน้าที่เป็นโครงเพื่อจับโปรตีนและไขมันจากซองจดหมายที่เป็นเนื้อเดียวกัน [14] โดยเร่งปฏิกิริยาเชื่อมขวางของ g-glutamyl lysine, ATGMs และเมมเบรน -เอนไซม์ที่เกี่ยวข้อง ให้ความสมบูรณ์แก่ SCs [15] นอกจากนี้ กรดไฮยาลูโรนิก (HA) ยังเป็นชนิดของปัจจัยความชื้นตามธรรมชาติ (NMF) ที่เกี่ยวข้องกับการกักเก็บความชื้นในผิวหนังและแสดงรายละเอียดที่ชัดเจนในการเสื่อมสภาพของผิวที่แท้จริง เป็นสารนำส่งยา และเป็นส่วนประกอบที่สำคัญของเมทริกซ์นอกเซลล์ [16,17]. HA มีบทบาทในการเพิ่มความชุ่มชื้นของผิวโดยควบคุมยีนสังเคราะห์กรดไฮยาลูโรนิก (HAS) นอกจากนี้ กรดเรติโนอิก (วิตามินเอ) ยังควบคุม HA ในผิวหนังชั้นนอกได้อย่างมีประสิทธิภาพ [17] TGM-1, FLG และ HAS-12,3 เป็นยีนที่เกี่ยวข้องกับการผลิต NMF [18] นอกจากนี้ การกระตุ้นปัจจัยการถอดรหัส เช่น โปรตีนกระตุ้น-1(AP-1) และปัจจัยนิวเคลียร์ (NF)-kB มีส่วนเกี่ยวข้องในการผลิตสารก่อการอักเสบที่เพิ่มประสิทธิภาพเกราะป้องกันผิวและความชุ่มชื้นของผิว ผ่านเส้นทาง AP-1 และ NF-kB[19] เอ็นไซม์ส่งสัญญาณต้นน้ำในวิถี AP-1 รวมถึงไคเนสโปรตีนที่กระตุ้นการทำงานของไมโตเจน (MAPK) เช่น ไคเนสที่ปลาย N ของ c-Jun (JNK), ไคเนสควบคุมสัญญาณภายนอกเซลล์ (ERK) และ p38 ในขณะที่ Src Akt, IkB -kinase (IKKo/ ) และ KBO(IkBa) เป็นของเส้นทาง NF-KB [20. ผิวหนังยังผลิตเมลานินในชั้นผิวหนังชั้นนอก โดยเฉพาะอย่างยิ่งในเมลาโนไซต์ ซึ่งเป็นแหล่งสำคัญของเมลานิน ซึ่งมีส่วนในการกำหนดสีผิวและการสร้างเม็ดสี [21] การฉายรังสี UVB และฮอร์โมนกระตุ้นเมลาโนไซต์ (o-MSH) สามารถกระตุ้นการหลั่งเมลานิน ดังนั้นจึงกระตุ้นการสร้างเม็ดสี [22. ในระหว่างการสร้างเมลาโนเจเนซิส -MSH จะกระตุ้นโปรตีนไคเนส A (PKA), โปรตีนปัจจัยการถอดรหัสที่เกี่ยวข้องกับไมโครพทาลเมีย (MITF) และองค์ประกอบการตอบสนองของแคมป์ (CREB) [23] หนึ่งในหน้าที่ของเมลานินถือเป็นการป้องกันความเสียหายของผิวหนังจากรังสียูวีรวมถึงแสงแดด อย่างไรก็ตาม การผลิตเมลานินที่มากเกินไปหรือการขาดสารเมลานินที่เกิดจากความชรา ฮอร์โมนกระตุ้นเมลาโนไซต์ และการสัมผัสรังสียูวี ทำให้เกิดกระ ฝ้า เลนติจีนในวัยชรา และความผิดปกติอื่นๆ สุขภาพ [24]. ดังนั้นการควบคุมการสร้างเม็ดสีจึงเป็นที่ต้องการเพื่อรักษาทั้งสุขภาพและรูปลักษณ์ของร่างกายมนุษย์

เควอซิทินเป็นฟลาโวนอยด์ประเภทฟลาโวนอยด์ที่ได้รับการจัดสรรเด่น มีอยู่ในผัก ผลไม้ เครื่องดื่ม และพืชสมุนไพร [25] ด้วยเหตุนี้ เควอซิทินจึงได้รับการศึกษาอย่างกว้างขวางถึงประโยชน์ทางเภสัชวิทยา ได้แก่ ต้านการอักเสบ ต้านหลอดเลือดสารต้านอนุมูลอิสระ, ต้านมะเร็ง และคุณสมบัติในการปกป้องผิวหนัง และเกี่ยวข้องกับการสร้างเม็ดสี [24,26-29] อย่างไรก็ตาม งานหลายชิ้นที่ใช้วิธีการที่ละเอียดอ่อนและเชื่อถือได้ได้แสดงให้เห็นว่าเควอซิทินไม่ถูกตรวจพบในพลาสมา [30-33] และแทบจะไม่พบในสมอง [34,35] เควอซิทิน ซึ่งโดยทั่วไปแสดงในรูปของไกลโคไซด์ ถูกดูดซึมได้ดีและส่วนใหญ่ไฮโดรไลซ์และเผาผลาญในลำไส้เล็ก ลำไส้ใหญ่ ตับ และไตเป็นเมตาบอไลต์แบบคอนจูเกต [30,36-38] เฉพาะสารคอนจูเกตเช่น glucuronide หรือ sulfate (methylated หรือ unmethylated ตามลำดับ) แทนที่จะตรวจพบ quercetin aglycone หรือ glycosides ในเลือดหมุนเวียน 3/-methyl-quercetin-3-glucuronide, quercetin-3-glucuronide, and quercetin-3'-sulfate ถูกระบุว่าเป็นสารเมแทบอไลต์ที่สำคัญในพลาสมาหลังจาก 1.5 ชั่วโมงจากการบริโภคหัวหอมทอด[30, 32]. เมแทบอไลต์ของ quercetin เหล่านี้ก่อตัวขึ้นในลำไส้เล็กและตับโดยเอนไซม์เปลี่ยนรูปทางชีวภาพรวมถึง UDP-glucuronyltransferases อันเป็นผลมาจากการเผาผลาญเฟส II [29,39,40] มีรายงานด้วยว่าสารคอนจูเกตของเควอซิทินสะสมในพลาสมาของมนุษย์ในช่วงความเข้มข้น 10-'ถึง 10- องศา M หลังจากการรับประทานหัวหอมพร้อมอาหารเป็นระยะๆ เป็นเวลา 1 สัปดาห์[41] ค่าครึ่งชีวิตของสารเควอซิทินค่อนข้างสูง ที่ประมาณ 11 ถึง 28 ชั่วโมง [29] เนื่องจากสารประกอบเหล่านี้ถูกมองว่าเป็นรูปแบบหลักของสารเมตาบอไลต์เควอซิทินแบบคอนจูเกต การศึกษาโดยเน้นที่กิจกรรมทางชีววิทยาของฟลาโวนอลโดยใช้สารคอนจูเกตเหล่านี้จึงเป็นสิ่งสำคัญ ซึ่งทำให้เราต้องศึกษากิจกรรมทางชีววิทยาของเมตาบอไลต์เควอซิทินที่ควบคู่กัน เมแทบอไลต์ของกลูโคโรไนด์ที่มีมากที่สุดแห่งหนึ่งที่พบในพลาสมาและเนื้อเยื่อส่วนใหญ่ รวมทั้งตับ ไต และสมองคือ quercetin 3-O- -D-glucuronide(Q-3-G)(รูปที่ 1) [31,35,40,42,43] ซึ่งอาจสร้างกิจกรรมที่คล้ายกัน แข็งแกร่งกว่า หรืออ่อนแอกว่าเมื่อเปรียบเทียบกับสารประกอบหลักในแบบจำลองที่แตกต่างกัน Q-3-G ถูกส่งไปยังเนื้อเยื่อเป้าหมายผ่านพลาสมาเพื่อออกฤทธิ์ทางชีวภาพ [39] O-3-G ยังแสดงให้เห็นว่าเป็นสารที่มีประสิทธิภาพในพลาสมาของหนูหลังการให้เควอซิทินทางปาก [43] ในการศึกษาอื่นๆ พบว่า Q-3-เมแทบอไลต์ที่มี G สะสมอยู่ในเส้นเลือดใหญ่หลังการให้สารอาหารที่อุดมด้วยเคอร์ซิติน และได้รับการระบุว่าเป็นหลักการออกฤทธิ์ที่ตรวจพบในเลือดมนุษย์ตั้งแต่ 0{{48} } ไมโครเมตร【44】. นอกจากนี้ Q-3-G ยังสามารถพบได้ในไวน์ [45] และในพืชสมุนไพร เช่น Hypericum hirsutum, Nelumbo nucifera, Oenothera biennis และถั่วเขียว [46-49].Q-3-G ได้รับการอธิบายว่าเป็นส่วนประกอบต้านการอักเสบภายใต้สภาวะที่กระตุ้นด้วย LPS และแสดงคุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระในเลือด [50-52] อย่างไรก็ตาม เมื่อเทียบกับประวัติการใช้ที่ยาวนานและการศึกษาเกี่ยวกับเควอซิทินในวงกว้าง การศึกษาของ Q-3-G ยังคงต้องศึกษาต่อไป ดังนั้น Q-3-G จึงถูกเลือกให้เป็นตัวแทนของสารเมตาบอไลต์ของเควอซิทินในฐานะผู้เล่นในร่างกายของเควอซิทิน นอกจากนี้ บทบาทของ Q-3-G ต่อผลการปกป้องผิวหนังยังไม่ได้รับการอธิบายอย่างครบถ้วน ในการศึกษานี้ โดยใช้การประเมินในหลอดทดลองแบบต่างๆ เราตรวจสอบผลการป้องกันผิวของ Q-3-G ต่อ UVBor H2O2- ที่เกิดจากความเครียดและการอักเสบที่เกิดจากออกซิเดชัน ความชุ่มชื้นของผิวใน HaCaT (สายเซลล์เคราตินในมนุษย์) เซลล์ และฤทธิ์ต้านการเกิดมะเร็งในเซลล์ B16F10 (สายเซลล์มะเร็งผิวหนังของหนู)

Chemical structure of Q-3-G

1flavonoids antioxidant.jpg

2. ผลลัพธ์

2.1.ฤทธิ์ต้านการอักเสบและต้านอนุมูลอิสระของ Q-3-G ต่อ UVB หรือ H2O2-เซลล์ HaCaT ที่กระตุ้น

เนื้อเยื่อผิวหนังสามารถถูกทำลายได้ด้วยรังสียูวี รังสียูวีกระตุ้นปัจจัยที่เป็นอันตรายหลายประการ รวมถึงความเครียดจากปฏิกิริยาออกซิเดชัน การตายของเซลล์ apoptotic การอักเสบ และการเสื่อมสภาพของผิว ในการพิจารณากิจกรรมป้องกันรังสียูวีของ Q-3-G ในขั้นต้น เราประเมินว่า Q-3-G มีผลใดๆ ต่อความอยู่รอดของเซลล์ของเคราติโนไซต์ของมนุษย์หรือไม่ ด้วยการใช้ 3-(4-5-Dimethylthiazol-2-yl)-2,5-diphenyl-243 tetrazolium bromide (MTT) assay เราได้ตรวจสอบผลกระทบของพิษต่อเซลล์ ของ O-3-G ในเซลล์ HaCa ดังที่แสดงไว้ในรูปที่ 2a ไม่มีการรบกวนที่มีนัยสำคัญต่อความอยู่รอดของเซลล์ที่ความเข้มข้น 25-20 uM โดย Q-3-G ซึ่งบ่งชี้ว่า O-3-G ไม่มีความเป็นพิษต่อเซลล์จนถึง 20 µM และไม่ทำร้าย keratinocytes ซึ่งเป็นชั้นผิวเผินของเซลล์ผิวหนัง ต่อไป เราประเมินผลการปกป้องผิวจาก Q-3-G ในเซลล์ HaCaT ที่สัมผัสกับ UVB หลังจากการฉายรังสี UVB ที่ 30 mJ/cm² Q-3-G จะป้องกัน HaCaTcells อย่างมีนัยสำคัญจากการตายของเซลล์ที่เหนี่ยวนำโดย UVB ในลักษณะที่ขึ้นกับความเข้มข้น (รูปที่ 2b) ตามข้อตกลงกับการทดสอบ MTT การใช้กล้องที่เชื่อมต่อกับกล้องจุลทรรศน์เพื่อจับภาพลักษณะทางสัณฐานวิทยาของเซลล์ HaCaT, Q-3-G ป้องกันการตายของเซลล์เนื่องจากเซลล์ HaCaT ที่ฉายรังสี UVB ที่ความเข้มข้น 10 μM (รูปที่ 2c) . จำนวนเซลล์ HaCaT ภายใต้แต่ละสภาวะคือ 482 สำหรับกลุ่มที่ไม่บำบัด, 91 สำหรับกลุ่ม UVB 30 mJ/cm-,276 สำหรับกลุ่ม UVB 30 mJ/cm²บวก 5μM O-3-G และ 320 สำหรับ UVB 30 mJ/cm² บวก 10μM Q-3-G Group (รูปที่ 2d) ผลลัพธ์เหล่านี้ยืนยันว่า Q-3-G ยับยั้งความเสียหาย HaCaT ที่เกิดจาก UVB และช่วยปกป้องผิวจากการฉายรังสี UVB

i-inflammatory and antioxidant effects of Q-3-G. (a) Treatment of HaCaT cells with  various concentrations of Q-3-G (0–20 μM) for 24 h, using a conventional MTT assay to determine  cell viability. (b) HaCaT cells irradiated with UVB (30 mJ/cm3) for 10 s in the absence or presence of  Q-3-G (0–20 μM), followed by incubation for 24 h. A conventional MTT assay was used to determine  cell viability. (c,d) HaCaT cells were treated with Q-3-G (5, 10 μM) and UVB irradiation (30 mJ/cm3)  for 24 h. The representative cell morphology of Q-3-G against UVB was observed via microscopy,  and the number of cells was then plotted. (e,f) Anti-inflammatory effect of Q-3-G in HaCaT cells.  The HaCaT cells were irradiated with UVB (30 mJ/cm3) for 10 s or incubated with H2O2 (500 μM)  with or without Q-3-G (5–10 μM) and further incubated for 12 h. The mRNA expression levels of  COX-2 (e) and TNF-α (f) were determined by quantitative real-time PCR. GAPDH was used as a  housekeeping gene. (g–j) Antioxidant effect of Q-3-G in HaCaT cells. Q-3-G (0–40 μM) was reacted  with 2,2-diphenylpicrylhydrazyl (DPPH) in the dark at 37°C for 30 min. The absorbance at 517 nm  was measured spectrophotometrically (g). Q-3-G was reacted with 2,2-azinobis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS) at different concentrations in the dark at 37°C for 30 min. The absorbance at 730 nm was measured spectrophotometrically (h). Ascorbic acid was used as a control substance. (i) The HaCaT cells were irradiated with UVB (30 mJ/cm3) for 10 s with or without Q-3-G (5– 10 μM) and after incubating for 12 h, the mRNA level of Nrf2 was determined by quantitative realtime PCR. GAPDH was used as a housekeeping gene. (j) The representative result of intracellular  ROS production was measured by flow cytometry using DCFDA staining in HaCaT cells with or  without UVB irradiation (30 mJ/cm3) and Q-3-G (0-10 μM) were treated for 24 h. Results (a,b,d–i)  are expressed as mean ± SD. # p < 0.05 and ## p < 0.01 compared to normal group (no treatment),  and * p < 0.05 and ** p < 0.01 compared to inducer alone (UVB, H2O2, DPPH, or ABTS).  2.2. Antimelanogenesis Effect in B16F10 and Moisturizing Effect in HaCaT Cells of Q-3-G  To examine the effects of Q-3-G on melanogenesis, the melanoma cells were treated  with α-MSH for 48 h to secrete melanin in B16F10 cells. By employing MTT assays, we  first confirmed that Q-3-G had no cytotoxicity in B16F10 cells at concentrations up to 20  μM for 48 h (Figure 3a). This result showed, for the next assessments that the effects of Q- 3-G in B16F10 were not due to cell death. Next, we evaluated B16F10 with Q-3-G and α- MSH for 48 h to determine the effects of Q-3-G on melanogenesis. As shown in Figure 3b,  Q-3-G significantly inhibited melanin secretion. The positive control arbutin also significantly decreased melanin secretion.  The skin moisture-related molecule is hyaluronic acid (HA). As previously mentioned, HA, distributed throughout the epidermis and dermis, is an NMF that enhances  skin hydration [55]. We used a reverse transcription PCR (RT-PCR) assay to examine the  transcription level of HAS-1 after 12 h with a concentration of Q-3-G of up to 30 μM. HAS  promotes the accumulation of intermediate-sized HA within keratinocytes [12]. As shown  in Figure 3c, the expression of HAS-1 was increased by treatment with Q-3-G up to 10 μM.  In addition to the moisturizing factor, we also examined the expression of FLG and TGM- 1. We used retinol as a positive control group. The transcription levels of FLG and TGM-1 increased notably after treatment with Q-3-G at concentrations up to 10 μM (Figure 3d).  Figure 2. Anti-inflammatory and antioxidant effects of Q-3-G. (a) Treatment of HaCaT cells with various concentrations of Q-3-G (0–20 µM) for 24 h, using a conventional MTT assay to determine cell viability. (b) HaCaT cells irradiated with UVB (30 mJ/cm3 ) for 10 s in the absence or presence of Q-3-G (0–20 µM), followed by incubation for 24 h. A conventional MTT assay was used to determine cell viability. (c,d) HaCaT cells were treated with Q-3-G (5, 10 µM) and UVB irradiation (30 mJ/cm3 ) for 24 h. The representative cell morphology of Q-3-G against UVB was observed via microscopy, and the number of cells was then plotted.

การเกิดขึ้นและการกำเริบของการอักเสบในร่างกายบางครั้งกระตุ้นมาโครฟาจและปล่อยไซโตไคน์บางส่วน การอักเสบเป็นสัญลักษณ์ของความเครียดออกซิเดชัน เราตรวจสอบผลต้านการอักเสบของ Q-3-G ต่อการอักเสบที่เกิดจาก UVB หรือ HO2- เป็นที่ทราบกันดีว่า UVB สามารถส่งเสริมความเสียหายของ DNA และการอักเสบในเซลล์ผิวหนัง 【10】 เราฉายรังสีเซลล์ HaCaT ด้วย UVB 30mJ/cm² และบ่มเซลล์ HaCaT ด้วย H2O2(500 uM) เราใช้การทดสอบ PCR แบบเรียลไทม์เพื่อตรวจสอบการแสดงออกของ mRNA ของเอนไซม์ที่ทำให้เกิดการอักเสบ COX-2 และไซโตไคน์ที่ก่อให้เกิดการอักเสบ TNF- ดังที่แสดงโดยผลลัพธ์ในรูปที่ 2e,f ความเข้มข้น 10 ไมโครโมลาร์ของ O-3-G ยับยั้งการแสดงออกของ mRNA ของ COX-2 และ TNF- อย่างมีนัยสำคัญ ดังนั้น Q-3-G ระงับการตอบสนองต่อการอักเสบที่เกิดขึ้นในเซลล์ HaCaT หลังจากการฉายรังสี UVB หรือ H2O2

เราใช้ 2,2'-azinobis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid)(ABTS) และ 2,2-diphenyl-lpicrylhydrazyl(DPPH) radical scavenging assays—-ระบบแบบจำลองที่ใช้กันอย่างแพร่หลาย เพื่อตรวจสอบกิจกรรมการขับสารในหลอดทดลองของสารประกอบธรรมชาติ—เพื่อประเมินคุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระของ Q-3-G ที่ความเข้มข้นต่างกัน เซลล์ HaCaT ถูกบำบัดด้วย Q-3-G ในลักษณะที่ขึ้นกับความเข้มข้นจาก 2.5-40 ไมโครโมลาร์ในการมีอยู่ของ DPPH และผลลัพธ์แสดงกิจกรรมการขับที่มีนัยสำคัญที่มากกว่า 2.5 uM(รูปที่ 2g) . การทดสอบ ABTS ยังแสดงให้เห็นอย่างชัดเจนถึงผลกระทบของ Q-3-G ต่อการขับอนุมูลอิสระในลักษณะที่ขึ้นกับความเข้มข้นด้วยค่า IC50 ที่ 1.75 ไมโครโมลาร์ (รูปที่ 2 ชั่วโมง) แอสคอร์บิกแอซิด (AA) ซึ่งเป็นกลุ่มควบคุมเชิงบวก แสดงผลสารต้านอนุมูลอิสระได้ดีที่สุดในการทดสอบทั้ง DPPH และ ABTS มีรายงานว่าอีรีทรอยด์ปัจจัยนิวเคลียร์ 2-ปัจจัยที่เกี่ยวข้อง 2 (Nrf2) ซึ่งเป็นหนึ่งในยีนที่ขึ้นกับสารต้านอนุมูลอิสระ (ARE) ซึ่งได้รับรายงานเพื่อควบคุม oxidoreductase ที่ป้องกันและสารตั้งต้นของนิวคลีโอฟิลิกของมัน ซึ่งจะช่วยส่งเสริมเอนไซม์ต้านอนุมูลอิสระเพื่อขจัดความเสียหายและซ่อมแซม ระบบ [53] ต่อไป เราตรวจสอบระดับการแสดงออกของ Nrf2 ในเซลล์ HaCaT ที่ฉายรังสี UVB การเสริมความแข็งแกร่งให้กับการค้นพบข้างต้น O-3-G ได้เพิ่มระดับการแสดงออกของ Nrf2 จากการฉายรังสี UVB อย่างมีนัยสำคัญเมื่อเปรียบเทียบกับกลุ่มควบคุมในลักษณะที่ขึ้นกับความเข้มข้น สูงถึง 10 uM(Figure2i) ซึ่งบอกเป็นนัยว่า Q-3- G แสดงผลการต้านอนุมูลอิสระทั้งทางเคมีและทางชีววิทยาด้วยคุณสมบัติการขับอนุมูลอิสระและเพิ่มผลการป้องกันของการส่งสัญญาณ ARE ที่ขึ้นกับ Nrf2- ตามลำดับ นอกจากนี้ เรายังดำเนินการ ROS flow cytometry โดยใช้ dichlorodihydrofluorescein diacetate (DCFDA) ในสภาวะ UV สารต้านอนุมูลอิสระเป็นที่รู้จักกันอย่างแพร่หลายในการปราบปรามแรงกดดันของเซลล์โดยการยับยั้งการผลิต ROS [54] ผลการศึกษาพบว่าการบำบัดด้วย Q-3-G ที่ความเข้มข้น 5 และ 10 ไมโครโมลาร์ลดระดับของ ROS ที่เหนี่ยวนำโดย UVB (รูปที่ 2j) เมื่อนำมารวมกัน ข้อมูลเหล่านี้บอกเป็นนัยว่า Q-3-แสดงคุณสมบัติในการปกป้องผิวหนัง เช่น ฤทธิ์ต้านการอักเสบและสารต้านอนุมูลอิสระต่อ H2O หรือความเครียดจากปฏิกิริยาออกซิเดชันและการอักเสบที่เกิดจาก UVB ในเซลล์ HaCaT

n plotted. (e,f) Anti-inflammatory effect of Q-3-G in HaCaT cells.  The HaCaT cells were irradiated with UVB (30 mJ/cm3) for 10 s or incubated with H2O2 (500 μM)  with or without Q-3-G (5–10 μM) and further incubated for 12 h. The mRNA expression levels of  COX-2 (e) and TNF-α (f) were determined by quantitative real-time PCR. GAPDH was used as a  housekeeping gene. (g–j) Antioxidant effect of Q-3-G in HaCaT cells. Q-3-G (0–40 μM) was reacted  with 2,2-diphenylpicrylhydrazyl (DPPH) in the dark at 37°C for 30 min. The absorbance at 517 nm  was measured spectrophotometrically (g). Q-3-G was reacted with 2,2-azinobis-(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid (ABTS) at different concentrations in the dark at 37°C for 30 min. The absorbance at 730 nm was measured spectrophotometrically (h). Ascorbic acid was used as a control substance. (i) The HaCaT cells were irradiated with UVB (30 mJ/cm3) for 10 s with or without Q-3-G (5– 10 μM) and after incubating for 12 h, the mRNA

A level of Nrf2 was determined by quantitative realtime PCR. GAPDH was used as a housekeeping gene. (j) The representative result of intracellular  ROS production was measured by flow cytometry using DCFDA staining in HaCaT cells with or  without UVB irradiation (30 mJ/cm3) and Q-3-G (0-10 μM) were treated for 24 h. Results (a,b,d–i)  are expressed as mean ± SD. # p < 0.05 and ## p < 0.01 compared to normal group (no treatment),  and * p < 0.05 and ** p < 0.01 compared to inducer alone (UVB, H2O2, DPPH, or ABTS).  2.2. Antimelanogenesis Effect in B16F10 and Moisturizing Effect in HaCaT Cells of Q-3-G  To examine the effects of Q-3-G on melanogenesis, the melanoma cells were treated  with α-MSH for 48 h to secrete melanin in B16F10 cells. By employing MTT assays, we  first confirmed that Q-3-G had no cytotoxicity in B16F10 cells at concentrations up to 20  μM for 48 h (Figure 3a). This result showed, for the next assessments that the effects of Q- 3-G in B16F10 were not due to cell death. Next, we evaluated B16F10 with Q-3-G and α- MSH for 48 h to determine the effects of Q-3-G on melanogenesis. As shown in Figure 3b,  Q-3-G significantly inhibited melanin secretion. The positive control arbutin also significantly decreased melanin secretion.  The skin moisture-related molecule is hyaluronic acid (HA). As previously mentioned, HA, distributed throughout the epidermis and dermis, is an NMF that enhances  skin hydration [55]. We used a reverse transcription PCR (RT-PCR) assay to examine the  transcription level of HAS-1 after 12 h with a concentration of Q-3-G of up to 30 μM. HAS  promotes the accumulation of intermediate-sized HA within keratinocytes [12]. As shown  in Figure 3c, the expression of HAS-1 was increased by treatment with Q-3-G up to 10 μM.  In addition to the moisturizing factor, we also examined the expression of FLG and TGM- 1. We used retinol as a positive control group. The transcription levels of FLG and TGM-1 increased notably after treatment with Q-3-G at concentrations up to 10 μM (Figure 3d).  Figure 2. Anti-inflammatory and antioxidant effects of Q-3-G. (a) Treatment of HaCaT cells with various concentrations of Q-3-G (0–20 µM) for 24 h, using a conventional MTT assay to determine cell viability. (b) HaCaT cells irradiated with UVB (30 mJ/cm3 ) for 10 s in the absence or presence of Q-3-G (0–20 µM), followed by incubation for 24 h. A conventional MTT assay was used to determine cell viability. (c,d) HaCaT cells were treated with Q-3-G (5, 10 µM) and UVB irradiation (30 mJ/cm3 ) for 24 h. The representative cell morphology of Q-3-G against UVB was observed via microscopy, and the number of cells was then plotted. (e,f) Anti-inflammatory effect of Q-3-G in HaCaT cells. The HaCaT cells were irradiated with UVB (30 mJ/cm3 ) for 10 s or incubated with H2O2 (500 µM) with or without Q-3-G (5–10 µM) and further incubated for 12 h. The mRNA expression levels of COX-2 (e) and TNF-α (f) were determined by quantitative real-time PCR. GAPDH was used as a housekeeping gene. (g–j) Antioxidant effect of Q-3-G in HaCaT cells. Q-3-G (0–40 µM) was reacted with 2,2- diphenylpicrylhydrazyl (DPPH) in the dark at 37 ◦C for 30 min. The absorbance at 517 nm was measured spectrophotometrically (g). Q-3-G was reacted with 2,2-azinobis-(3-ethylbenzothiazoline-6- sulfonic acid (ABTS) at different concentrations in the dark at 37 ◦C for 30 min. The absorbance at 730 nm was measured spectrophotometrically (h). Ascorbic acid was used as a control substance. (i) The HaCaT cells were irradiated with UVB (30 mJ/cm3 ) for 10 s with or without Q-3-G (5–10 µM) and after incubating for 12 h, the mRNA level of Nrf2 was determined by quantitative real-time PCR. GAPDH was used as a housekeeping gene. (j) The representative result of intracellular ROS production was measured by flow cytometry using DCFDA staining in HaCaT cells with or without UVB irradiation (30 mJ/cm3 ) and Q-3-G (0-10 µM) were treated for 24 h. Results (a,b,d–i) are expressed as mean ± SD. # p < 0.05 and ## p < 0.01 compared to normal group (no treatment), and * p < 0.05 and ** p < 0.01 compared to inducer alone (UVB, H2O2 , DPPH, or ABTS)

Effects on anti-radiation of cistanche

2.2.ผลแอนไทม์ลาโนเจเนซิสใน B16F10 และผลการให้ความชุ่มชื้นในเซลล์ HaCaT ของ Q-3-G

เพื่อตรวจสอบผลของ O-3-G ต่อการสร้างเมลาโนมา เซลล์เมลาโนมาได้รับการรักษาด้วย -MSH เป็นเวลา 48 ชั่วโมงเพื่อคัดหลั่งเมลานินในเซลล์ B16F10 เมื่อใช้การทดสอบ MTT เรายืนยันในตอนแรกว่า Q-3-G ไม่มีความเป็นพิษต่อเซลล์ในเซลล์ B16F10 ที่ความเข้มข้นสูงถึง 20 ไมโครโมลาร์ เป็นเวลา 48 ชั่วโมง (รูปที่ 3a) ผลลัพธ์นี้แสดงให้เห็นว่า สำหรับการประเมินครั้งต่อไปว่าผลกระทบของ O-3-G ใน B16F10 ไม่ได้เกิดจากการตายของเซลล์ ต่อไป เราประเมิน B16F10 ด้วย Q-3-Gand -MSH เป็นเวลา 48 ชั่วโมงเพื่อตรวจสอบผลกระทบของ Q-3-G ต่อการสร้างเม็ดสี ดังที่แสดงไว้ในรูปที่ 3b, Q-3-G ยับยั้งการหลั่งเมลานินอย่างมีนัยสำคัญ อาร์บูตินกลุ่มควบคุมเชิงบวกยังช่วยลดการหลั่งเมลานินอย่างมีนัยสำคัญ

Antimelanogenesis and moisturizing effects of Q-3-G. (a) Treatment of B16F10 cells with various concentrations of Q-3-G (0–20 µM) for 48 h, using a conventional MTT assay to determine cell viability. (b) B16F10 cells were treated with Q-3-G (10–20 µM) or arbutin (1 mM) for 48 h, and melanin secretion and intracellular melanin were measured at 475 nm. Results are expressed as mean ± SD. ## p < 0.01 compared to normal group (no treatment), and * p < 0.05 and ** p < 0.01 compared to inducer alone (α-MSH). (c) The expression level of HAS-1 was measured by RT-PCR in HaCaT cells treated with Q-3-G (5–30 µM) and retinol (10 µg/mL) for 12 h. (d) The transcriptional levels of FLG and TGM-1 were determined by RT-PCR in HaCaT cells treated with Q-3-G (2.5–10 µM) and retinol (10 µg/mL) for 12 h. (e) MAPK inhibitor (SB203590, SP600125, UO126) and NF-κB inhibitor (Bay117082) were treated with HaCaT cells for 30 min and incubated with Q-3-G for 12 h. The mRNA expression levels of FLG, TGM-1 and GAPDH were determined by RT-PCR. Results (a,b) are expressed as mean ± SD. ## p < 0.01 compared to normal group (no treatment), and ** p < 0.01 compared to inducer alone (α-MSH).

โมเลกุลที่เกี่ยวข้องกับความชื้นของผิวหนังคือกรดไฮยาลูโรนิก (HA) ดังที่ได้กล่าวไว้ก่อนหน้านี้ HA ซึ่งกระจายอยู่ทั่วหนังกำพร้าและหนังแท้เป็น NMF ที่ช่วยเพิ่มความชุ่มชื้นของผิว [55] เราใช้การทดสอบ PCR แบบถอดความแบบย้อนกลับ (RT-PCR) เพื่อตรวจสอบระดับการถอดรหัสของ HAS-1 หลังจาก 12 ชั่วโมงด้วยความเข้มข้นของ Q-3-G สูงถึง 30 uM HAS ส่งเสริมการสะสมของ HA ขนาดกลางภายใน keratinocytes [12] ดังแสดงในรูปที่ 3c การแสดงออกของ HAS-1 เพิ่มขึ้นโดยการรักษาด้วย Q-3-G สูงถึง 10 μM นอกจากปัจจัยความชุ่มชื้นแล้ว เรายังตรวจสอบการแสดงออกของ FLG และ TGM{{ 13}}. เราใช้เรตินอลเป็นกลุ่มควบคุมเชิงบวก ระดับการถอดรหัสของ FLG และ TGM-1 เพิ่มขึ้นอย่างเด่นชัดหลังการรักษาด้วย Q-3-G ที่ความเข้มข้นสูงถึง 10 ไมโครโมลาร์ (รูปที่ 3d) การค้นพบนี้ชี้ให้เห็นว่า Q-3-G มีฤทธิ์ในการให้ความชุ่มชื้นแก่ผิวหนังในเซลล์ HaCaT นอกจากนี้ การใช้ SB203580 (ตัวยับยั้ง p38), SP600125(ตัวยับยั้ง JNK), UO126(ตัวยับยั้ง ERK) และอ่าว11-7082 (ตัวยับยั้ง NF-kB) เราได้ตรวจสอบการมีส่วนร่วมของเส้นทางการส่งสัญญาณ MAPK และ NF-kB ในการให้ความชุ่มชื้น แฟกเตอร์ของ Q-3-เซลล์ HaCaT ที่บำบัดด้วย G จากการแสดงออกของยีนที่เหนี่ยวนำโดย O-3- G ทั้งระดับของ TGM-1 และ FLG ลดลงโดยการรักษาด้วย SP600125 ซึ่งเป็นตัวยับยั้ง JNK (รูปที่ 3e) ซึ่งบ่งชี้ว่าจำเป็นต้องมี JNK เพื่อเพิ่มการแสดงออก ของ TGM-1 และ FLG ในแง่ของการให้ความชุ่มชื้นแก่ผิวของ O-3-G นอกจากนี้ การแสดงออกของ FLG ยังลดลงโดย Bay11-7082 ซึ่งเป็นตัวยับยั้ง IKK และ IkB ซึ่งแนะนำว่ากลไกทางเภสัชกรรมของ Q-3-G อาจเป็นของวิถีการส่งสัญญาณ NF-kB

2.3. เส้นทางการส่งสัญญาณที่เกี่ยวข้องกับการให้ความชุ่มชื้นของ Q-3-G ผ่านการเปิดใช้งาน AP-1 และ NF-kB

จากผลลัพธ์ของ mRNA ก่อนหน้านี้ เราตั้งสมมติฐานว่าการมีส่วนร่วมของ AP-1 และการส่งสัญญาณ NF-kB ต่อเอฟเฟกต์ความชุ่มชื้นของ Q-3-G สามารถเกิดขึ้นได้ในระดับโปรตีนเช่นกัน ด้วยการใช้ Western blot assay เราตรวจสอบฟอสโฟรีเลชั่นของโมเลกุลต้นน้ำของ AP-1 และ NF-kB อย่างแรก ในวิถี AP-1 ฟอสโฟรีเลชั่นของ c-Jun เพิ่มขึ้นหลังจากการฟักตัวของเซลล์ HaCaT ด้วย Q-3-G เป็นเวลา 24 ชั่วโมง(รูปที่ 4a) ระดับของ p-INK ยังเพิ่มขึ้นหลังการบำบัดด้วย Q-3-G ที่ความเข้มข้น 2.5,5 และ 10 ไมโครโมลาร์ รูปแบบทั้งหมดของ JNK ยังคงไม่เปลี่ยนแปลง (รูปที่ 4b) เราตรวจสอบฟอสโฟรีเลชั่นของ MKK4 และ TAK-1 เพิ่มเติม ซึ่งเป็นตัวควบคุมต้นน้ำของ JNK ดังที่แสดงไว้ในรูปที่ 3c หลังจากการบำบัดเซลล์ HaCaT ด้วย O-3-G ระดับโปรตีนของ p-MKK4 และ p-TAK1 ก็ถูกปรับเพิ่มขึ้นเช่นกัน

The effects of Q-3-G on AP-1 and the NF-kB signaling pathways.(a)HaCaT cells were incubated with Q-3-G(2.5, 5, and 10 μM) and retinol (10 ug/mL) for 24 h, using immunoblot analysis to determine the phosphorylation of c-Jun.(b)HaCaT cells were incubated with Q-3-G (2.5,5,and 10μM))and retinol (10 ug/mL) for 24 h, using immunoblot analysis to determine the phosphorylation of TAK1, MKK4, and JNK

(c,d) The phosphorylation of p50, p65 (c), IKKα, and IκBα (d) was determined by immunoblot analysis after incubation of HaCaT cells with Q-3-G (5 and 10 µM) and retinol (10 µg/mL) for 24 h. (e) The effects of Q-3-G on the phosphorylation of Src and Akt (Ser 473) were measured by immunoblot analysis with Q-3-G (5 to 10 µM) and retinol (10 µg/mL). The expression of β-actin was used as control protein. (f) Treatment of HEK293T cells with various concentrations of Q-3-G (0–20 µM) for 24 h, using a conventional MTT assay to determine cell viability. (g,h) HEK293T cells overexpressing AP-1-luc (g) and NF-κB-Luc (h) were treated with Q-3-G (5 and 10 µM) and retinol (10 µg/mL) for 24 h. Results (f,g,h) are expressed as mean ± SD. * p < 0.05 and ** p < 0.01 compared to normal (no treatment).

นอกจากการส่งสัญญาณ NF-kB แล้ว Q-3-G ยังเพิ่มฟอสโฟรีเลชั่นของ p50 และ p65 ซึ่งเป็นหน่วยย่อยของ NF-kB(รูปที่ 4c) นอกจากนี้ เราประเมินการเปิดใช้งาน IKK และ IkBa ซึ่งเพิ่มขึ้น Q-3-G สูงถึง 10 uM เมื่อเทียบกับกลุ่มควบคุม (รูปที่ 4d) ในที่สุด เราได้กำหนดการกระตุ้นโมเลกุลต้นน้ำที่เกี่ยวข้องกับเส้นทางการส่งสัญญาณ NF-kB ฟอสโฟรีเลชันของ Src และ Akt (Ser473) ถูกทำให้เพิ่มขึ้นโดยการบำบัดด้วย O-3-G(รูปที่ 4e) โดยรวม ข้อมูลเหล่านี้บ่งชี้ว่าผลการปกป้องผิวหนังของการกระตุ้น Q-3-G เป้าหมาย TAK1 และ Src โดยการเพิ่มระดับโปรตีน ดังนั้นจึงควบคุมกิจกรรมของ AP-1 และ NF-kB ตามลำดับ

cistanche extract

2.4.ผลกระทบของ Q-3-G ต่อการเปิดใช้งานการถอดเสียงของ AP-1 และ NF-kB

เราตรวจสอบความเป็นพิษต่อเซลล์ของเซลล์ของ Q-3-G ในเซลล์ไตของตัวอ่อน HEK293T ของมนุษย์โดยการทดสอบ MTT (รูปที่ 4f) ความมีชีวิตของเซลล์ HEK293T ไม่ได้รับผลกระทบอย่างมีนัยสำคัญหลังการรักษาด้วย Q-3-G (2.5-20 μM) เมื่อเปรียบเทียบกับเซลล์ที่ไม่ได้รับการรักษา

เราใช้การทดสอบลูซิเฟอเรสเพื่อพิจารณาว่า Q-3-G สามารถมอดูเลตการสอบวิเคราะห์โปรโมเตอร์ NF-kB และ AP-1 ได้หรือไม่ เรายืนยันว่า O-3-G เพิ่ม AP-1-การออกฤทธิ์ของลูซิเฟอเรสที่เป็นสื่อกลาง (รูปที่ 4g)และการออกฤทธิ์ของลูซิเฟอเรสที่อาศัย NF-kB (รูปที่ 4h) ในลักษณะที่ขึ้นกับความเข้มข้น ผลลัพธ์เหล่านี้ยืนยันว่าการเปิดใช้งาน AP-1 และการเปิดใช้งาน NF-KB เป็นเป้าหมายทางเภสัชวิทยาที่สำคัญของ Q-3-G



คลิกลิงค์เพื่อรับข้อมูลเพิ่มเติม:https://www.xjcistanche.com/news/part-2-anti-inflammatory-antioxidant-moistu-55118278.html



คุณอาจชอบ