Cistanche Tonify ไตอย่างไร?
Mar 15, 2022
ติดต่อ:joanna.jia@wecistanche.com/ WhatsApp: 008618081934791
คลิกที่นี่เพื่อดูข้อมูลเกี่ยวกับส่วนที่ 1 (บทนำ วัสดุ และวิธีการ ) ของบทความนี้
ยาจีนที่บำรุงไตสามารถยับยั้งการตายของเซลล์ประสาทโดปามีนได้อย่างไร?
Shaogang Lin, 1 Shuifen Ye, 2 Jinmu Huang, 1 Yun Tian, 3 Yihui Xu, 2 Mengqi Wu, 2 Jingxia Wang, 2 Songying Wu, 4 และ Jing Cai, MD, Ph.D.2
วัสดุและวิธีการ
ออกแบบ
การสังเกตเปรียบเทียบในหลอดทดลองของเภสัชวิทยาในซีรัม
เวลาและการตั้งค่า
การทดลองดำเนินการในห้องปฏิบัติการ Cytobiology มหาวิทยาลัยการแพทย์แผนจีนฝูเจี้ยน ประเทศจีน ตั้งแต่ปี 2010 ถึง 2011
วัสดุ
สัตว์
หนูวิสตาร์เพศผู้ 60 ตัว อายุ 8 สัปดาห์ น้ำหนัก 200–220 กรัม ซื้อจาก SLAC Laboratory Animal Co., Ltd. เซี่ยงไฮ้ ประเทศจีน (ใบอนุญาตเลขที่ SCXK (Hu) {{4} }) พวกมันถูกเลี้ยงในห้องปฏิบัติการ Animal Center ของ Fujian University of Traditional Chinese Medicine ในประเทศจีน ที่อุณหภูมิ 20–22 องศา โดยมีความชื้น 40–60 เปอร์เซ็นต์ และให้แสงสว่างตั้งแต่ 7:00 am ถึง 19:00 น. จัดเตรียมอาหารโดย ศูนย์สัตว์ทดลองแห่งมหาวิทยาลัยการแพทย์แผนจีนฝูเจี้ยน ขั้นตอนการทดลองทั้งหมดเป็นไปตามคำแนะนำสำหรับการดูแลและการใช้สัตว์ทดลอง ซึ่งกำหนดโดยกระทรวงวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีของจีน[33]

Cistanche สำหรับการปรับปรุงการทำงานของไต
ยาเสพติด
Herba Epimedii ส่วนทางอากาศของ Epimedium sagittatum Maxim มาจากมณฑลเสฉวน ประเทศจีน; Semen Cuscutae ซึ่งเป็นเมล็ดพันธุ์แห้งของ Cuscuta Chinensis Lam. มาจากมณฑลซานตง ประเทศจีน; และเฮอร์บา ซิสตันเชส ซึ่งเป็นกลุ่มของใบไม้เกล็ดของ Cistanche deserticola YCMa มาจากเขตปกครองตนเองซินเจียงอุยกูร์ ยาทั้งหมดจัดทำโดย Fujian Pharmaceutical Co., Ltd. มณฑลฝูเจี้ยน ประเทศจีน Herba Epimedii, Semen Cuscutae และ Herba Cistanches ละ 97.2 กรัม แช่ในภาชนะต้มที่มีน้ำกลั่น 1 500 มล. ให้ความร้อนอย่างรวดเร็ว ต้ม รักษาที่ 100 องศาถึง ปล่อยให้ส่วนประกอบออกฤทธิ์ของยาละลายและควบแน่นเป็น 540 มล. ปริมาณยาที่ยังไม่ผ่านกระบวนการในสารละลายยาคือ 0.180 ก./มล. สารละลายถูกกรอง ใส่ในขวด ปิดผนึก ฆ่าเชื้อ และเก็บไว้ที่ 4 องศา ซื้อ Selegiline 5 มก. × 10 เม็ดต่อชุดจาก Nanjing Sike Pharmaceutical Co., Ltd. (มณฑลเจียงซู ประเทศจีน) เซลิกิลีน 21.6 มก. ถูกละลายในน้ำกลั่นสองครั้งเพื่อเตรียมสารละลายน้ำ 540 มล. ความเข้มข้นของสารละลายยาเท่ากับ 0.04 มก./มล. สารละลายยาถูกใส่ในขวด ปิดผนึก ฆ่าเชื้อ และเก็บไว้ที่อุณหภูมิ 4 องศา
วิธีการ
การเตรียมเซรั่มที่มีส่วนผสมของยา
Herba Epimedii, Semen Cuscutae, Herba Cistanches และกลุ่ม selegiline ถูกผสมในช่องท้องด้วยเซรั่มที่ประกอบด้วยยาที่มี 0.180 g/mL Herba Epimedii, Semen Cuscutae หรือ Herba Cistanches หรือ {{ 5}}.0ซีลีจิลีน 4 มก./มล. วันละสองครั้ง ที่ขนาดยา 0.1 มล./กก. เป็นเวลา 14 วันติดต่อกัน กลุ่มซีรั่มเปล่าถูกบริหารให้ในปริมาณที่เท่ากันของน้ำกลั่น สัตว์เหล่านี้ขาดอาหารและน้ำเป็นเวลา 12 ชั่วโมงหลังการให้ยาครั้งสุดท้าย หนูแรทถูกทำให้หมดความรู้สึกโดยการฉีดเข้าช่องท้องด้วยคีตามีน ไฮโดรคลอไรด์ 0.3 มล./100 กรัม เก็บเลือดจากหลอดเลือดแดงใหญ่ในช่องท้องและหมุนเหวี่ยงที่ 1 000 รอบ/นาที เป็นเวลา 15 นาที ส่วนลอยเหนือตะกอนถูกเก็บเกี่ยว ปิดใช้งานในอ่างน้ำที่ 56 องศาเป็นเวลา 30 นาที กรองผ่านเมมเบรนที่มีรูพรุนขนาด 0.22 ไมโครเมตร และเก็บไว้ที่ –20 องศา
การเตรียมสารละลาย 50×Sato
ส่วนผสมของ DMEM/F12 ขนาด 60 มล. (Gibco, Carlsbad, CA, USA), อินซูลินจากวัว 15 มก. (Sigma, St. Louis, MO, USA), 15 mg transferrin (Sigma), 145.8 mg sodium pyruvate (Biosharp ประเทศเกาหลี), putrescine 12 มก. (Solarbio, ปักกิ่ง, จีน), 25 ไมโครลิตร โซเดียม ซีลีไนต์ (1 มก./มล., 100 มก./100 มล. H2O; Sigma) และ 100 ไมโครลิตร โปรเจสเตอโรน (0.315 มก. /มล., 15.75 มก./50 มล.; Biosharp) ถูกอัลตราซาวนด์ในอ่างน้ำแข็งเป็นเวลา 1.5 ชั่วโมง กรองผ่านตัวกรอง 0.22 ไมโครเมตร แบ่งส่วนย่อยและเก็บไว้ที่ -20 องศา

Cistanche รักษาการทำงานของไต
การเพาะเลี้ยงเซลล์
เซลล์ถูกเพาะใน DMEM/F12 ที่เสริมด้วย 5 เปอร์เซ็นต์ (v/v) fetal bovine serum (Gibco), 1 เปอร์เซ็นต์ (v/v) glutamine (Sigma), 2 เปอร์เซ็นต์ (v/v) 50×Sato's สารละลาย และ 2 เปอร์เซ็นต์ (v/v) เพนิซิลลิน/สเตรปโตมัยซิน เซลล์ถูกบ่มใน 5 เปอร์เซ็นต์ (ปริมาตร/ปริมาตร) CO2 และคงสภาพที่ความชื้นอิ่มตัวที่ 37 องศา เซลล์ถูกทริปซิไนซ์ด้วยทริปซิน 0.25 เปอร์เซ็นต์ (โดยน้ำหนัก/ปริมาตร) และส่งผ่าน เซลล์ในเฟสลอการิทึมถูกรวบรวมสำหรับการทดลองในภายหลัง
ผลของ H2O2 ต่อการเจริญเติบโตของเซลล์ MES23.5
เซลล์ถูกเพาะในจานเพาะเลี้ยง96-หลุม (5 × 105 เซลล์/หลุม) บ่มด้วยสารละลายเพาะเลี้ยง H2O2 50, 100, 150, 200, 300 และ 400 ไมโครโมล/ลิตร (Shanghai Shiyi Chemicals Reagent Co., Ltd. ., เซี่ยงไฮ้, จีน) หลังจาก 24 ชั่วโมงเป็นเวลา 1, 3, 6, 9, 12, 24 ชั่วโมง ตามด้วย MTT (Sigma) เป็นเวลา 4 ชั่วโมง สารละลายในหลุมถูกทิ้ง และเติมไดเมทิลซัลฟอกไซด์ (ซิกมา) 150 ไมโครลิตร เขย่าจานเพาะเชื้อเป็นเวลา 10 นาที และหาค่าการดูดกลืนแสงของตัวอย่างที่ 570 นาโนเมตรโดยใช้เครื่องอ่านไมโครเพลทอัตโนมัติ (EXL800; Biotek, Winooski, VT, USA) สารละลายเพาะเลี้ยง DMEM/F12 ที่เตรียมใหม่ถูกใช้เป็นกลุ่มควบคุมเชิงลบ บ่อคู่ขนานถูกตั้งไว้ที่จุดเวลาแต่ละจุด การทดลองดำเนินการเป็นสามเท่า
อิทธิพลของซีรัมที่ประกอบด้วยยาที่ความเข้มข้นต่างกันต่อการเจริญเติบโตของเซลล์ MES23.5 ที่บำบัดด้วย H2O2-
เซลล์ถูกเพาะเมล็ดและสัมผัสกับซีรัมที่ประกอบด้วยยาที่มี 5, 10, 15, 20, 25 และ 30 เปอร์เซ็นต์ (v/v) Herba Epimedii, Semen Cuscutae, Herba Cistanches และเซลีจิลีนหรือซีรัมเปล่าเป็นเวลา 24 ชั่วโมง เซลล์ถูกเพาะเลี้ยงเพิ่มเติมด้วยสารละลายเพาะเลี้ยงที่มี 100 ไมโครโมล/ลิตร H2O2 เป็นเวลา 3 ชั่วโมง ตามด้วย MTT เป็นเวลา 4 ชั่วโมง มีการวางบ่อคู่ขนานสามบ่อในแต่ละกลุ่ม สารละลายเพาะเลี้ยง DMEM/F12 ที่เตรียมใหม่ถูกใช้เป็นกลุ่มควบคุมเชิงลบ เซลล์ที่เพาะเลี้ยงในสารละลายเพาะเลี้ยงที่มี 100 ไมโครโมล/ลิตร H2O2 และซีรัมเปล่าทำหน้าที่เป็นกลุ่มแบบจำลอง และเซลล์ที่เพาะเลี้ยงในซีรัมเปล่าเพียงอย่างเดียวทำหน้าที่เป็นกลุ่มซีรัมเปล่า การทดลองดำเนินการเป็นสามเท่า ค่าการดูดกลืนแสงเฉลี่ยของแต่ละกลุ่มคำนวณเป็นอัตราการรอดตายของเซลล์
โฟลว์ไซโตเมทรีสำหรับนิพจน์ FasL, Fas, caspase-3 และ Bcl-2 ในเซลล์ MES23.5
เซลล์ถูกเพาะและบำบัดเหมือนเมื่อก่อน เซลล์ที่เพาะเลี้ยงใน 100 ไมโครโมล/ลิตร H2O2 เพียงอย่างเดียวถือเป็นกลุ่มแบบจำลอง แอนติบอดี FasL ที่ติดฉลากไฟโคอีริทรินและกลุ่มควบคุมไอโซไทป์ FasL (แต่ละหลอด 5 ไมโครลิตร) ถูกเติมลงในสองหลอด (BD, ซานโฮเซ, แคลิฟอร์เนีย, สหรัฐอเมริกา) ผสมอย่างสม่ำเสมอกับเซลล์ เก็บไว้ที่อุณหภูมิห้องในความมืดเป็นเวลา 15 นาที ปั่นแยกที่ 1 000 รอบ/นาทีเป็นเวลา 5 นาทีหลังจากเติม PBS 2 มล. ส่วนลอยเหนือตะกอนถูกทิ้ง และเซลล์ถูกแขวนลอยใหม่โดยใช้ 500 ไมโครลิตร PBS ความยาวคลื่นของอุปกรณ์เลเซอร์สำหรับโฟลว์ไซโตเมทรี (Facscalibur; BD) คือ 488 นาโนเมตร อัตราการแสดงออกของเซลล์ FasL-positive ถูกวิเคราะห์และคำนวณโดยซอฟต์แวร์ Cell Quest (BD) อัตราการแสดงออกของ Fas-, caspase-3- และ Bcl-2-เซลล์บวกถูกตรวจพบโดยใช้วิธีการเดียวกัน
ELISA สำหรับเนื้อหาของปัจจัยการเจริญเติบโตของเส้นประสาท ปัจจัย neurotrophic ที่ได้รับจากสมอง และปัจจัย neurotrophic ที่ได้มาจากเซลล์ glial ในเซลล์
เซลล์ถูกเพาะและบำบัดตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ supernatant ถูกเก็บเกี่ยวและปัจจัยการเจริญเติบโตของเส้นประสาทปัจจัย neurotrophic ที่ได้รับจากสมองและเนื้อหาปัจจัย neurotrophic ที่ได้มาจากเซลล์ glial ถูกวัดตามคำแนะนำของผู้ผลิต (BD) วัดค่าการดูดกลืนแสงที่ 450 นาโนเมตรโดยใช้เครื่องอ่านไมโครเพลทอัตโนมัติ (EXL800; Biotek, Winooski, VT, USA)
การวิเคราะห์ทางสถิติ
ผลลัพธ์แสดงเป็นค่าเฉลี่ย± SD วิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้ซอฟต์แวร์ SPSS 180 (SPSS, Chicago, IL, USA) การวิเคราะห์ความแปรปรวนทางเดียวดำเนินการตามด้วยการทดสอบความแตกต่างที่มีนัยสำคัญน้อยที่สุดแบบเปรียบเทียบหลายรายการ ค่า P < 0.05="">

Cistanche สำหรับการทำงานของไต
รับทราบ
ขอขอบคุณ Chen B ห้องปฏิบัติการทางประสาทวิทยา มหาวิทยาลัย Capital Medical ที่มอบ MES23.5 . ด้วยความกรุณาโดปามีนเซลล์ประสาท
เชิงอรรถ
เงินทุน: การศึกษานี้ได้รับการสนับสนุนโดยกองทุนเพื่อการพัฒนาของ Chen Keji Integrative Medicine, No. CKJ2010025 และ the Key Foundation of Society Development in Fujian Province, No. 2013Y0059
ความขัดแย้งทางผลประโยชน์: ไม่มีการประกาศ
การรับรองด้านจริยธรรม: การศึกษานี้ได้รับอนุญาตจากคณะกรรมการจริยธรรมของสัตว์แห่งมหาวิทยาลัยการแพทย์แผนจีนฝูเจี้ยน ประเทศจีน
(ตรวจสอบโดย Diwakarla S, Norman C, Cheng HY, Wang JM)
(แก้ไขโดย Wang LM, Su LL, Li CH, Song LP, Liu WJ, Zhao M)

ข้อมูลอ้างอิง
[1] Zhang ZX, Roman GC, Hong Z และอื่น ๆ โรคพาร์กินสันในจีน: ความชุกในปักกิ่ง ซีอาน และเซี่ยงไฮ้ มีดหมอ 2005;365(9459):595–597. [PubMed] [Google Scholar]
[2] เขา JC, วัง WW. ผลของเทียนหม่ากัวเต็งหยินต่ออะพอพโทซิสของโดปามีนเซลล์ประสาทในหนูจำลองโรคพาร์กินสัน จงอี้ ซาจื่อ. 2010;51(11):1024–1027. [Google Scholar]
[3] Perier C, Bové J, Vila M. Mitochondria และโปรแกรมการตายของเซลล์ในโรคพาร์กินสัน:อะพอพโทซิสและอื่น ๆ สัญญาณรีดอกซ์ต้านอนุมูลอิสระ 2012;16(9):883–895. [PubMed] [Google Scholar]
[4] กัลลาเกอร์ DA, Schapira AH. สาเหตุและการรักษาโรคพาร์กินสัน Curr Top Med เคมี. 2009;9(10):860–868. [PubMed] [Google Scholar]
[5] Rangasamy SB, Soderstrom K, Bakay RA และอื่น ๆ การบำบัดด้วยปัจจัย Neurotrophic สำหรับโรคพาร์กินสัน Prog Brain Res. 2010;184:237–264. [PubMed] [Google Scholar]
[6] Zuccato C, Cattaneo E. ปัจจัย neurotrophic ที่ได้รับจากสมองในโรคเกี่ยวกับระบบประสาท แนท เรฟ นูรอล. 2009;5(6):311–322. [PubMed] [Google Scholar]
[7] Cai DF, Chen XQ, Gao Y. ผลของสูตรพุ่มไม้ยังบันต่อการทำงานของ nigrostriatal ในหนูโมเดลพาร์กินสันหลังการรักษาด้วยเลโวโดปาในระยะยาว Zhongguo Zhong Xi Yi Jie He Za Zhi. 2002;22(1):43–46. [PubMed] [Google Scholar]
[8] Yang MH, Wang HM, Liu Y. ผลของยาต้ม Bushen Huoxue ต่อตัวรับเด็กกำพร้าและไทโรซีนไฮดรอกซิเลสในสมองของหนูที่เป็นโรคพาร์กินสัน ชิน เจ อินทิกร์ เมด 2011;17(1):43–47. [PubMed] [Google Scholar]
[9] Li SD, Liu Y, Yang MH. ผลของพุ่มไม้ Huo Xue yin ต่อสมอง NF-kB และไม่มีเนื้อหาในหนูจำลองโรคพาร์กินสัน เจ ตราดิษฐ์ ชินเมด. 2012;32(1):67–70. [PubMed] [Google Scholar]
[10] Tian Y, Cai J, Chen XZ และอื่น ๆ ผลการป้องกันของการบำรุงแบบจีนไตสมุนไพรบนเซลล์ประสาทของเซลล์ประสาท striatal ในหนูจำลองโรคพาร์กินสัน Zhongguo Laonian Xue Zazhi. 2011;31(3):440–443. [Google Scholar]
[11] Yu H, Li YH, Feng XL และอื่น ๆ การระบุและการทดสอบกิจกรรมของไทโรซีนไฮดรอกซีเลสในเซลล์ MES23.5 Zhongguo Shengwu Huaxue yu เฟินซี เซิงหวู่ Xuebao 2004;20(1):95–100. [Google Scholar]
[12] วัง XR. ปักกิ่ง: สำนักพิมพ์การแพทย์ของประชาชน; 2550. วิธีและเทคโนโลยีการทดลองทางพิษวิทยา. [Google Scholar]
[13] Lv SJ. ปักกิ่ง: สำนักพิมพ์วิทยาศาสตร์การแพทย์ของจีน; 2010. การทดสอบภูมิคุ้มกันทางคลินิก. [Google Scholar]
[14] Eriksen JL, Wszolek Z, Petrucelli L. การเกิดโรคระดับโมเลกุลของโรคพาร์กินสัน อาร์ค นิวโรล 2005;62(3):353–357. [PubMed] [Google Scholar]
[15] Christen Y. ความเครียดจากปฏิกิริยาออกซิเดชันและโรคอัลไซเมอร์. Am J Clin Nutr. 2000;71(2):621S–629S. [PubMed] [Google Scholar]
[16] Blandini F, Armenteros MT, Fancellu R และอื่น ๆ ฤทธิ์ป้องกันระบบประสาทของราซากิลีนในรูปแบบหนูของโรคพาร์กินสัน เอ็กซ์พี นิวโรล 2004;187(2):455–459. [PubMed] [Google Scholar]
[17] Zhang XN, Wang HH, Wang ZQ และอื่น ๆ ผลการป้องกันของ icariin บนอะพอพโทซิสของเซลล์ประสาทของหนูที่เพาะเลี้ยงขั้นต้นที่เหนี่ยวนำโดยเปปไทด์ Aâ25-35 เจ้อเจียง Daxue Xuebao: Yixue Ban 2007;36(3):224–228. [PubMed] [Google Scholar]
[18] วัง LH, บุพีซี, เปา YM. ฤทธิ์ป้องกันระบบประสาทของสารสกัด Cuscuta Chinensis Lam ต่อความเสียหายของเซลล์ PC12 ที่มีความแตกต่างของเส้นประสาทที่เกิดจากออกซิเจนชนิดปฏิกิริยา Xibao Shengwu Xue Zazhi. 2005;27:69–72. [Google Scholar]
[19] Sun SL, วัง B, Peng HS. การยับยั้งสารสกัด Dodder ไปยัง myocyte หัวใจอะพอพโทซิสในหนูอายุมาก Zhongguo Laonian Xue Zazhi. 2011;31:642–644. [Google Scholar]
[20] Yang JH, Hu JP, Rena K, และคณะ ความสัมพันธ์ระหว่างโครงสร้างกับกิจกรรมของฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์ในพืช Cistanche salsa ต่อฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ จงเหยาไค. 2552;32(7):1067–1069. [PubMed] [Google Scholar]
[21] Wu Y, Li L, Wen T และอื่น ๆ ผลการป้องกันของ echinacoside ต่อความเป็นพิษต่อตับที่เกิดจากคาร์บอนเตตระคลอไรด์ในหนูแรท พิษวิทยา. 2007;232(1-2):50–56. [PubMed] [Google Scholar]
[22] เฉิง SD. ปักกิ่ง: สำนักพิมพ์การแพทย์ของประชาชน; 2549. โรคพาร์กินสัน. [Google Scholar]
[23] Yang T. Beijing: สำนักพิมพ์การแพทย์ของประชาชน; 2010. ชีววิทยาของเซลล์. [Google Scholar]
[24] Baba N, Koji T, Itoh M และอื่น ๆ การเปลี่ยนแปลงซึ่งกันและกันในการแสดงออกของ Bcl-2 และ Bax ในนิวเคลียสไฮโปกลอสซัลหลัง axotomy ในหนูที่โตเต็มวัย: การมีส่วนร่วมที่เป็นไปได้ในการเหนี่ยวนำการตายของเซลล์ประสาท ความละเอียดของสมอง 1999;827(1-2):122–129. [PubMed] [Google Scholar]
[25] Zuccato C, Cattaneo E. ปัจจัย neurotrophic ที่ได้รับจากสมองในโรคเกี่ยวกับระบบประสาท แนท เรฟ นูรอล. 2009;5(6):311–322. [PubMed] [Google Scholar]
[26] Peterziel H, Unsicker K, Krieglstein K. TGFbeta กระตุ้นการตอบสนองของ GDNF ในเซลล์ประสาทโดยการสรรหา GFRalpha1 ไปที่พลาสมาเมมเบรน เจ เซลล์ ไบโอล. 2002;159(1):157–167. [บทความฟรี PMC] [PubMed] [Google Scholar]
[27] Hong M, Mukhida K, Mendez I. GDNF บำบัดโรคพาร์กินสัน ผู้เชี่ยวชาญ Rev Neurother 2008;8(7):1125–1139. [PubMed] [Google Scholar]
[28] Chaturvedi RK, Shukla S, Seth K และอื่น ๆ ปัจจัยการเจริญเติบโตของเส้นประสาทช่วยเพิ่มการอยู่รอดของโดปามีนการปลูกถ่ายอวัยวะ ช่วยชีวิตเซลล์ประสาทโดปามีนเนอร์จิกไนกรัม และฟื้นฟูการขาดดุลการทำงานในรูปแบบโรคพาร์กินสันในหนู ประสาทวิทยา เลตต์. 2006;398(1-2):44–49. [PubMed] [Google Scholar]
[29] Kavanagh ET, Loughlin JP, Herbert KR, และคณะ การทำงานของเซลล์ PC12 ที่ป้องกัน NGF หลังจากได้รับ 6-hydroxydopamine ชุมชน Biochem Biophys Res. 2006;351(4):890–895. [PubMed] [Google Scholar]
[30] Baquet ZC, Bickford PC, โจนส์ เคอาร์. จำเป็นต้องมีปัจจัย neurotrophic ที่มาจากสมองเพื่อสร้างจำนวนที่เหมาะสมของโดปามีนเซลล์ประสาทใน substantia nigra pars compacta เจ นิวโรซี. 2005;25(26):6251–6259. [บทความฟรี PMC] [PubMed] [Google Scholar]
[31] หง SY, Liou HC, Fu WM. กลไกของการกระทำ heme oxygenase-1 เกี่ยวข้องกับการเพิ่มประสิทธิภาพของการแสดงออกของปัจจัย neurotrophic เภสัชวิทยา. 2010;58(2):321–329. [PubMed] [Google Scholar]
[32] Duarte EP, Curcio M, Canzoniero LM, และคณะ การป้องกันระบบประสาทโดย GDNF ในสมองขาดเลือด ปัจจัยการเจริญเติบโต 2012;30(4):242–257. [PubMed] [Google Scholar]
[33] กระทรวงวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีแห่งสาธารณรัฐประชาชนจีน. คำแนะนำสำหรับการดูแลและการใช้สัตว์ทดลอง 2549 30 ก.ย.; [Google Scholar]





