ติดต่อ: Audrey Hu Whatsapp/hp: 0086 13880143964 อีเมล:audrey.hu@wecistanche.com

เชิงนามธรรม:ความกังวลที่เพิ่มขึ้นต่อสุขภาพโดยรวมกำลังขับเคลื่อนตลาดโลกด้วยส่วนผสมจากธรรมชาติ ไม่เพียงแต่ในอุตสาหกรรมอาหารเท่านั้น แต่ยังรวมถึงในด้านเครื่องสำอางด้วย ในการศึกษานี้ การตรวจคัดกรองการใช้งานเครื่องสำอางที่มีศักยภาพของสารสกัดที่เป็นน้ำจาก Icelandic . สามชนิดสาหร่ายผลิตโดยสนามไฟฟ้าพัลซิ่ง (PEF) สารสกัดที่ผลิตโดย PEF จาก Ulva lactuca, Alaria esculenta และPalmaria palmata ถูกนำมาเปรียบเทียบกับการสกัดด้วยน้ำร้อนแบบดั้งเดิมในแง่ของปริมาณโพลีฟีนอล ฟลาโวนอยด์ และคาร์โบไฮเดรต นอกจากนี้,สารต้านอนุมูลอิสระคุณสมบัติและฤทธิ์ยับยั้งเอนไซม์ถูกประเมินโดยใช้การสอบวิเคราะห์ ในหลอดทดลอง PEF ให้ผลลัพธ์ที่คล้ายคลึงกันกับวิธีการดั้งเดิม โดยแสดงให้เห็นข้อดีหลายประการ เช่น ธรรมชาติที่ไม่ใช่ความร้อนและเวลาในการสกัดที่สั้นกว่า ในบรรดาสามสายพันธุ์ไอซ์แลนด์ Alaria esculenta มีปริมาณฟีนอลิกสูงสุด (ค่าเฉลี่ย 8869.7 µg GAE/g dw) และฟลาโวนอยด์ (ค่าเฉลี่ย) ค่า 12,098.7 µg QE/g dw) สารประกอบยังแสดงค่าสูงสุดสารต้านอนุมูลอิสระความสามารถ นอกจากนี้ สารสกัด Alaria esculenta ยังมีฤทธิ์ต้านเอนไซม์ที่ดีเยี่ยม (76.9, 72.8, 93.0 และ 100 เปอร์เซ็นต์สำหรับ collagenase, elastase,ไทโรซิเนสandhyaluronidase ตามลำดับ) สำหรับใช้ในผลิตภัณฑ์ฟอกสีผิวและต่อต้านริ้วรอย ดังนั้นการศึกษาเบื้องต้นของเราจึงชี้ให้เห็นว่าสารสกัดจากเอสคูเลนตาไอซ์แลนด์ที่ผลิตโดย PEF สามารถใช้เป็นส่วนผสมที่มีศักยภาพสำหรับสูตรเครื่องสำอางและเวชสำอางธรรมชาติ

คำสำคัญ:สาหร่าย; Ulva lactuca; Alaria esculenta; พัลมาเรีย พัลมาตา; การสกัดด้วย PEF สารประกอบออกฤทธิ์ทางชีวภาพ การสกัดสีเขียว ส่วนผสมจากธรรมชาติ เวชสำอาง

cistanche เป็นส่วนผสมจากธรรมชาติที่ทำให้ขาวขึ้น

1. บทนำ

ในช่วงไม่กี่ปีที่ผ่านมา ความต้องการสารประกอบออกฤทธิ์ทางชีวภาพที่อาจมีประโยชน์ต่อสุขภาพเพิ่มขึ้นอย่างมาก กลุ่มวิจัยหลายกลุ่มได้ให้ความสำคัญกับการวิจัยเกี่ยวกับสิ่งมีชีวิตในทะเล เช่น สาหร่ายมาโคร เพื่อค้นหาแหล่งสารประกอบธรรมชาติที่แปลกใหม่และยั่งยืนสำหรับการใช้งานในอุตสาหกรรมอาหารเกษตร เภสัชวิทยา อาหาร และล่าสุดในด้านเครื่องสำอาง [1,2] . สาหร่ายมาโครเป็นกลุ่มสิ่งมีชีวิตสังเคราะห์แสงที่มีขนาดใหญ่และต่างกัน โดยมีลักษณะที่มีความหลากหลายทางชีวภาพอย่างมากและองค์ประกอบทางชีวเคมีที่ซับซ้อน ตามโครงสร้างทางเคมีและปริมาณเม็ดสี สาหร่ายสามารถแบ่งออกเป็นสามเชื้อสาย ได้แก่ สาหร่ายสีน้ำตาล (Phaeophyceae) สาหร่ายสีแดง (Rhodophyta) และสาหร่ายสีเขียว (Viridiplantae) สารประกอบของสาหร่ายจะถูกเก็บไว้ภายในเซลล์ไซโตพลาสซึมหรือจับกับเยื่อหุ้มเซลล์ ดังนั้นการหยุดชะงักของเซลล์จึงเป็นสิ่งสำคัญสำหรับ thevalorization ของชีวมวลของสาหร่าย นอกจากนี้ องค์ประกอบของผนังเซลล์ยังมีความแตกต่างกันอย่างมากระหว่างสาหร่ายชนิดต่างๆ ตั้งแต่เยื่อแผ่นเล็กๆ ไปจนถึงโครงสร้างที่ซับซ้อนหลายชั้น ทำให้การฟื้นตัวของผลิตภัณฑ์จากสาหร่ายเป็นสิ่งที่ท้าทาย [3] โดยทั่วไป สาหร่ายเป็นแหล่งที่ดีเยี่ยมของโพลีแซ็กคาไรด์ โปรตีน ลิปิด และสารเมตาโบไลต์ทุติยภูมิที่หลากหลาย เช่น สารประกอบฟีนอล เทอร์พีนอยด์ แคโรทีนอยด์ เม็ดสี และอนุพันธ์ไนโตรเจน [4–6] แม้ว่าเมแทบอไลต์ปฐมภูมิจะมีความสำคัญอย่างยิ่ง แต่ข้อมูลล่าสุดแสดงให้เห็นว่าเนื้อหาของเมตาโบไลต์ทุติยภูมิเป็นตัวกำหนดกิจกรรมทางชีวภาพของสาหร่ายสารสกัด [7].

ความกังวลที่เพิ่มขึ้นเกี่ยวกับสุขภาพโดยรวมและการตระหนักรู้เกี่ยวกับสารเคมีอันตรายในผลิตภัณฑ์ประจำวัน กำลังผลักดันตลาดโลกของส่วนผสมจากธรรมชาติและสารอินทรีย์ [8] ในช่วงหลายปีที่ผ่านมา จิตสำนึกของผู้บริโภคที่มีต่อการเลือกใช้ส่วนผสมจากธรรมชาติและผลิตภัณฑ์ที่เป็นมิตรกับสิ่งแวดล้อมได้ขยายจากอุตสาหกรรมอาหารไปสู่อุตสาหกรรมเครื่องสำอางและการดูแลส่วนบุคคล [9] นอกจากนี้ ในบริบทปัจจุบันของภาวะโลกร้อนและปัญหาทางนิเวศวิทยา มีการตระหนักรู้ของสาธารณชนเกี่ยวกับปัญหาสิ่งแวดล้อมเพิ่มมากขึ้น ด้วยความกังวลในปัจจุบันนี้ ผู้บริโภคจึงหันมาสนใจผลิตภัณฑ์ที่เป็นมิตรต่อสิ่งแวดล้อม ดีต่อสุขภาพ และปลอดสารเคมี เป็นผลให้อุตสาหกรรมเครื่องสำอางกำลังแทนที่สารเคมีที่เป็นพิษและส่วนผสมที่เป็นอันตรายด้วยสารประกอบที่แปลกใหม่และมีคุณค่าจากธรรมชาติในการผลิตผลิตภัณฑ์ความงามที่ "สะอาดทางเคมี" [10]

ตามธรรมเนียมแล้วเครื่องสำอางถูกกำหนดให้เป็นผลิตภัณฑ์ที่ใช้กับร่างกายมนุษย์เพื่อทำความสะอาด เสริมสวย หรือส่งเสริมความน่าดึงดูดใจโดยไม่กระทบต่อโครงสร้างหรือการทำงานของร่างกาย อย่างไรก็ตาม กระแสใหม่และความต้องการของผู้บริโภคในปัจจุบันได้ส่งเสริมการพัฒนาผลิตภัณฑ์ใหม่ที่ให้ประโยชน์หลายประการโดยใช้ความพยายามเพียงเล็กน้อย คำว่า cosmeceutical มักใช้เพื่ออธิบายผลิตภัณฑ์เครื่องสำอางที่มีสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพที่อ้างว่ามีประโยชน์ทางการแพทย์หรือคล้ายยา [11] เวชสำอางมักประกอบด้วยส่วนผสมที่ออกฤทธิ์ เช่น วิตามิน ไฟโตเคมิคอล เอนไซม์สารต้านอนุมูลอิสระและ/หรือน้ำมันหอมระเหย [12] เนื่องจากมีการค้นพบสารประกอบออกฤทธิ์ทางชีวภาพหลายชนิดในสาหร่ายขนาดใหญ่ การตรวจสอบของใหม่สาหร่ายs และสารสกัดจากสาหร่ายทะเลได้รับการพิสูจน์แล้วว่าเป็นพื้นที่ที่มีแนวโน้มในการศึกษาเครื่องสำอางและเครื่องสำอาง [13,14]

เมแทบอไลต์ทุติยภูมิจำนวนหนึ่งมาจากสาหร่ายขึ้นชื่อในเรื่องประโยชน์ต่อสุขภาพอันทรงคุณค่าต่อผิว เช่น ปกป้องแสง ให้ความชุ่มชื้นสารต้านอนุมูลอิสระ,คุณสมบัติต้านการอักเสบและการเกิดใหม่ [15]. จากผลที่เป็นประโยชน์เหล่านี้ สาหร่ายรวมอยู่ในผลิตภัณฑ์เวชสำอาง เช่น ครีมกันแดด ผลิตภัณฑ์ต่อต้านวัย และเพื่อป้องกันรอยดำ ขณะที่โพลีแซ็กคาไรด์ใช้สำหรับรักษาผิวให้ชุ่มชื้นและป้องกันความแห้งกร้าน [16] ในช่วงอายุมากขึ้น โปรตีนเมทริกซ์นอกเซลล์จะไวต่อกิจกรรมที่มากเกินไปของเอ็นไซม์โปรตีโอไลติก เช่น คอลลาเจนเนสและอีลาสเทส ส่งผลให้เกิดการเปลี่ยนแปลงที่มองเห็นได้ของผิวหนัง เช่น ริ้วรอยหรือการสูญเสียความยืดหยุ่นของผิวหนัง แนวทางที่มีแนวโน้มว่าจะป้องกันไม่ให้ผิวแก่ก่อนวัยคือการยับยั้งการทำงานของคอลลาเจนเอสและอีลาสเทสด้วยสารประกอบธรรมชาติ สารสกัดจากพืชได้รับการตรวจสอบอย่างกว้างขวางและพบว่ามีฤทธิ์ต้านคอลลาเจนและต่อต้านอีลาสเทส [17] อย่างไรก็ตาม มีข้อมูลเพียงเล็กน้อยเกี่ยวกับฤทธิ์ยับยั้งเอนไซม์ของสารสกัดจากสาหร่ายทะเล

วิธีการสกัดที่ใช้บ่อยที่สุดสำหรับการแยกสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพออกจากสาหร่ายนั้นใช้เทคนิคทั่วไป อย่างไรก็ตาม การใช้วิธีการดั้งเดิมมีข้อเสียหลายประการ เช่น การใช้ตัวทำละลายอินทรีย์ปริมาณมาก เวลาสกัดนานขึ้น อุณหภูมิสูง ปัญหาการเลือกใช้ ความต้องการพลังงานสูง และการสกัดร่วมของสารประกอบที่ไม่เป็นเป้าหมายหรือรบกวน [18] ดังนั้น เทคนิคการสกัดแบบใหม่ตามหลักการเคมีสีเขียวจึงน่าสนใจ [19]

สนามไฟฟ้าพัลซิ่ง (PEF) เป็นเทคโนโลยีการแปรรูปอาหารที่เกิดขึ้นใหม่โดยไม่ใช้ความร้อนและประหยัดพลังงาน [20] PEF เกี่ยวข้องกับการใช้พัลส์สนามไฟฟ้าซึ่งโดยปกติแล้วจะมีแรงดันไฟฟ้าสูง (ช่วง kV) และระยะเวลาสั้น (ไมโครหรือนาโนวินาที) กับผลิตภัณฑ์ที่วางอยู่ระหว่างอิเล็กโทรดสองขั้ว [21] การประยุกต์ใช้พัลส์ไฟฟ้าทำให้เกิดรูพรุนแบบย้อนกลับหรือไม่สามารถย้อนกลับได้ในเยื่อหุ้มเซลล์ ซึ่งกำหนดเป็นอิเล็กโตรโพเรชันหรืออิเล็กโทรเพอร์มีบิไลเซชัน ซึ่งทำให้สะดวกต่อการแพร่กระจายอย่างรวดเร็วของตัวทำละลายและการเพิ่มประสิทธิภาพการถ่ายโอนมวลของสารประกอบภายในเซลล์ [22] การใช้งานล่าสุดมุ่งเน้นไปที่การใช้พลังงานไฟฟ้าแบบพัลซิ่งเป็นเทคนิคการสกัด (PEF-assistedextraction) จากผลิตภัณฑ์ชีวภาพ อาหาร และการเกษตร [23] ด้วยการบำบัดด้วย PEF เป็นไปได้เพื่อให้ได้สารสกัดที่มีความบริสุทธิ์สูงขึ้น เพิ่มอัตราการสกัดสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพ เช่น โพลีฟีนอล แคโรทีนอยด์ หรือแอนโธไซยานิน และกำจัดการใช้ตัวทำละลายอินทรีย์ และลดระยะเวลาในการสกัด [24,25] การบำบัดด้วย PEF ประสบความสำเร็จในการสกัดสารประกอบที่มีคุณค่าจากแหล่งทางทะเลต่างๆ เช่น แอสโปรตีน [26–28] คาร์โบไฮเดรต [29,30] ลิปิด [31,32] และเม็ดสี เช่น แคโรทีนอยด์ คลอโรฟิลล์ หรือไฟโคไซยานิน [22,33] ,34] จากสาหร่ายขนาดเล็กและสาหร่าย

ดังนั้น วัตถุประสงค์หลักของการศึกษาครั้งนี้คือเพื่อประเมินศักยภาพในการใช้งานเครื่องสำอางของสารสกัด PEF จากสาหร่ายมาโครสามสายพันธุ์ที่เติบโตในไอซ์แลนด์: U. lactuca (สาหร่ายสีเขียว), A. esculenta (สาหร่ายสีน้ำตาล) และ P. palmata (มาโครสาหร่ายสีแดง) . ความพยายามของ Inan ในการพัฒนาส่วนผสมออร์แกนิคและธรรมชาติสำหรับสูตรสีเขียวนั้น การสกัดด้วยสารช่วยด้วย PEF ถูกเสนอให้เป็นทางเลือกที่เป็นมิตรกับสิ่งแวดล้อมแทนการสกัดด้วยตัวทำละลายอินทรีย์แบบดั้งเดิม หลังจากผ่านกรรมวิธีสกัดน้ำสาหร่ายสารสกัดมีลักษณะเฉพาะในแง่ของปริมาณโพลีฟีนอล ฟลาโวนอยด์ และคาร์โบไฮเดรต นอกจากนี้,สารต้านอนุมูลอิสระคุณสมบัติและการออกฤทธิ์ในการยับยั้งเอนไซม์ถูกประเมินโดยการใช้การสอบวิเคราะห์การออกฤทธิ์ ในหลอดทดลอง ผลลัพธ์ที่รายงานในที่นี้จะจัดให้มีพื้นฐานสำหรับการปรับปรุงความเข้าใจของมาโครสาหร่ายสีน้ำตาล สีแดง และสีเขียวเพื่อผลิตส่วนผสมออกฤทธิ์สำหรับสูตรผสมที่เป็นนวัตกรรมใหม่ในผลิตภัณฑ์เครื่องสำอางที่มีสารประกอบออกฤทธิ์ทางชีวภาพที่แยกได้จากแหล่งธรรมชาติและยั่งยืน

2. ผลลัพธ์และการอภิปราย

2.1. การสกัดด้วย PEF-Assisted สำหรับการแปรรูปชีวมวลสาหร่ายไอซ์แลนด์

ผลการศึกษาพบว่าค่าการนำไฟฟ้าสูงสุดในสารแขวนลอยที่เตรียมจาก A. esculenta ตามด้วย P. palmata และ U. lactuca (p < {{0}}.05)="" (ตารางที่="" 1)="" อย่างไรก็ตาม="" ผลการรักษาแบบไม่มีนัยสำคัญ="" (p=""> 0.05) ผู้เขียนคนอื่นใช้การวัดค่าการนำไฟฟ้าอย่างประสบความสำเร็จในการประเมินประสิทธิภาพของการบำบัดด้วย PEF ในเนื้อเยื่อชีวภาพสำหรับการปลดปล่อยสารไอออนิกภายในเซลล์ อันเป็นผลมาจากการซึมผ่านของเยื่อหุ้มเซลล์ที่เพิ่มขึ้น [35–37]

ในการศึกษาของเรา ผลลัพธ์ไม่ได้บ่งชี้ถึงการปลดปล่อยสารเหล่านี้อย่างแรงขึ้นโดย PEF เนื่องจากการเปลี่ยนแปลงของค่าการนำไฟฟ้าที่เกิดจากการบำบัดด้วยการสกัดมีแนวโน้มสูงสุดในสารแขวนลอย HW การศึกษาก่อนหน้านี้ได้ข้อสรุปว่าค่าการนำไฟฟ้าเริ่มต้นของสื่อนอกเซลล์มีอิทธิพลต่อประสิทธิภาพอิเล็กโตรโพเรชัน แต่ยังขาดข้อตกลงว่าปัจจัยทั้งสองนี้มีความสัมพันธ์เชิงบวกหรือเชิงลบ [38] ความผันแปรของการนำไฟฟ้าและลักษณะของวัสดุอาจทำให้การเปรียบเทียบซับซ้อน ในการศึกษาของเรา ค่าการนำไฟฟ้าของสารแขวนลอย A. esculenta กับอีก 2 สายพันธุ์มีความแตกต่างกันมาก ซึ่งไม่ได้สะท้อนถึงระดับการเปลี่ยนแปลงการนำไฟฟ้าระหว่างการบำบัดด้วยการสกัด มีการระบุว่าปริมาณขี้เถ้าของสาหร่ายสีน้ำตาลมีน้ำหนักมากกว่า 50 เปอร์เซ็นต์ของน้ำหนักแห้ง [39] ซึ่งประกอบด้วยไอออนเป็นส่วนใหญ่ ซึ่งอาจอธิบายค่าการนำไฟฟ้าสูงในสารแขวนลอย A. esculenta ได้บางส่วนเมื่อเทียบกับอีกสองสายพันธุ์

ผลการศึกษาพบว่า pH ในสารแขวนลอย U. lactuca ต่ำกว่าสำหรับอีกสองสายพันธุ์ แต่ไม่มีผลกระทบที่ชัดเจนจากประเภทการสกัด อุณหภูมิเพิ่มขึ้นจาก 22 ± 1◦C ก่อนการบำบัด เป็น 95 ◦C โดย HW (สำหรับทุกสายพันธุ์) ถึง 360 ± 1.0 ◦C, 46.3 ± 0 6 ◦C และ 51.0 ± 1◦C โดย PEF ใน A. esculenta, P. palmata และ U. lactucasuspensions มีแนวโน้มเช่นเดียวกันนี้สำหรับกลุ่มที่ได้รับการรักษาด้วย PEF ซึ่งต่อมาได้รับความร้อนจาก HW อุณหภูมิที่เพิ่มขึ้นเกิดจากการเปลี่ยนพลังงานไฟฟ้าเป็นพลังงานความร้อน (การให้ความร้อนแบบโอห์มมิก) ในระบบกันสะเทือนระหว่างการบำบัดด้วย PEF ระดับของอุณหภูมิที่เพิ่มขึ้นเป็นที่ทราบกันว่าเป็นสัดส่วนกับกระแสที่ใช้แต่ในสัดส่วนผกผันของการนำไฟฟ้า สิ่งนี้สามารถอธิบายได้ว่าทำไม P. palmata และU lactuca มีอุณหภูมิสูงขึ้นในระหว่างการรักษาด้วย PEF แม้ว่าจะมีค่าการนำไฟฟ้าต่ำกว่า A. esculenta

2.2. UV-VIS Absorption Spectra ของสารสกัดจากสาหร่ายไอซ์แลนด์

สาหร่ายที่ทำการศึกษามีความแตกต่างกันในโปรไฟล์สเปกตรัม (รูปที่ 1) ซึ่งบ่งชี้ว่าองค์ประกอบและศักยภาพในการดูดกลืนแสงยูวีจะแตกต่างกันไปในแต่ละสายพันธุ์ อย่างไรก็ตาม เทคนิคการสกัดแบบไม่มีการแสดงผลที่โดดเด่นในสเปกตรัมการดูดกลืนแสงยูวี สารสกัดจากสาหร่ายมีรูปแบบการดูดกลืนที่คล้ายคลึงกันโดยไม่คำนึงถึงวิธีการสกัด

สเปกตรัมการดูดกลืนแสง UV ของสาหร่ายสีเขียว U. lactuca แสดงให้เห็นจุดสูงสุดที่โดดเด่นในช่วง UV-B (280–320 นาโนเมตร) (รูปที่ 1a) ในขณะที่สารสกัดจากสาหร่ายสีน้ำตาล A. esculenta ไม่มีการก่อตัวของโซนการดูดซึมที่ชัดเจน (รูปที่ 1c ). อย่างไรก็ตาม ผลการดูดกลืนแสงที่เข้มข้นขึ้นที่ 220 นาโนเมตรในสารสกัด A. esculenta เมื่อเทียบกับ U. lactuca และ P. palmata ซึ่งสันนิษฐานว่าเป็นผลจากปริมาณสารประกอบฟีนอลิกสูงใน A. esculenta (ตารางที่ 2) การดูดซับสูงสุดภายในช่วงนี้เกี่ยวข้องกับความเชื่อมโยงระหว่างสารประกอบฟีนอลและแอลจิเนต สันนิษฐานว่าความสัมพันธ์นี้เพื่อรักษาความสามารถในการดูดซับรังสี UV ของสารประกอบฟีนอลเมื่อเวลาผ่านไป [40]

ที่น่าสนใจกว่านั้นคือ ผลที่ได้จากสารสกัดสาหร่ายสีแดง,P. Palmata ดูดซับส่วนหนึ่งของรังสี UV-A (320–400 นาโนเมตร) เป็นที่ทราบกันว่าสาหร่ายสีแดงสะสมสารป้องกันแสงด้วยความสามารถในการดูดซับรังสีอัลตราไวโอเลต เช่น กรดอะมิโนคล้ายมัยโคสปอริน (MAAs) ซึ่งดูดซับในยูวีรีเจียนเฉพาะนี้ [41] P. palmata เป็นเลิศในสเปกตรัมการดูดกลืนแสง UV โดยมีจุดสูงสุดที่โดดเด่นระหว่าง 320 ถึง 340 นาโนเมตรตามการมีอยู่ของ MAA ที่ดูดซับในช่วงนี้ [42] เช่น palythinol (การดูดกลืนสูงสุดที่ 332 นาโนเมตร), asterina-330 (ค่าการดูดซึมสูงสุดที่ 332 นาโนเมตร) 330 นาโนเมตร), porphyra-334 (การดูดกลืนสูงสุดที่ 334 นาโนเมตร) และอื่นๆ [43] เนื่องจากสภาวะการสกัด เช่น ชนิดของตัวทำละลาย เป็นที่ทราบกันดีว่ามีอิทธิพลต่อประสิทธิภาพของการสกัด ผลการศึกษาในปัจจุบันจึงถูกนำมาเปรียบเทียบกับการศึกษาก่อนหน้านี้เกี่ยวกับการสกัด MAAs ด้วยน้ำจาก P. palmata ในการศึกษาเหล่านี้ ตรวจพบพีคสูงสุดในการดูดกลืนที่ 325 ถึง 330 นาโนเมตร [44] เช่นเดียวกับในการศึกษานี้ ดังนั้นจึงเป็นไปได้ที่จะสันนิษฐานว่ายอดเขาที่สังเกตได้ระหว่าง 320 ถึง 340 นาโนเมตรอาจเกิดจากการมีอยู่ของ MAA

ความแตกต่างของสเปกตรัมการดูดกลืนแสงระหว่าง 350 และ 700 นาโนเมตร อธิบายได้จากการมีอยู่ของเม็ดสีเสริมที่แตกต่างกันในระบบภาพถ่ายของมาโครสาหร่ายสีเขียว น้ำตาล และแดง คลอโรฟิลล์-บี (450–500 นาโนเมตร) ฟูโคแซนธิน (400–500 นาโนเมตร) และไฟโคอีริทรินตามลำดับ (600–650 นาโนเมตร) ตามลำดับ [45] ความเข้มข้นของสารประกอบที่ละลายน้ำได้ในสารสกัดมีผลรุนแรงกว่า ดังนั้นรูปแบบที่สะท้อนความแตกต่างของสีระหว่างสายพันธุ์สาหร่ายจึงไม่ชัดเจนในการศึกษานี้

2.3. ปริมาณฟีนอลิก ฟลาโวนอยด์ และคาร์โบไฮเดรตทั้งหมดของสารสกัดจากสาหร่ายไอซ์แลนด์

ปริมาณฟีนอลิกทั้งหมดในสาหร่ายs อยู่ในช่วง 1592 ถึง 9368 µg GAE/g dw (ตารางที่ 2) สาหร่ายสีน้ำตาล A. esculenta แสดงปริมาณสูงสุด (p < 0.{05)="" ของสารประกอบฟีนอลิก="" (ค่าเฉลี่ย="" 8869.7="" µg="" gae/g="" dw)="" ตามด้วย="" p.="" palmata="" (ค่าเฉลี่ย="" 1806.2="" µg="" gae/g="" dw)="" และ="" u.="" lactuca="" (ค่าเฉลี่ย="" 1750.7="" µg="" gae/g="" dw)="" (มีความแตกต่างที่ไม่มีนัยสำคัญระหว่าง="" p.="" palmata="" และสารสกัด="" u.="" lactuca))="" สำหรับสาหร่ายแต่ละสายพันธุ์="" ปริมาณโพลีฟีนอลไม่แตกต่างกันในวิธีการสกัด="" ยกเว้น="" u.="" lactuca="" ซึ่งผลการทดลองพบว่า="" hw="" เป็นเทคนิคที่มีประสิทธิภาพสูงสุด="" (p="">< 0.05)="" อย่างไรก็ตาม="" ควรเน้นข้อดีของ="" pef="" ซึ่งรวมถึงธรรมชาติที่ไม่ใช่ความร้อน="" เวลาในการสกัดที่สั้นลง="" (10="" นาทีเทียบกับ="" 45="" นาที)="">

ในบรรดาสาหร่ายทั้งสามกลุ่ม มาโครสาหร่ายสีน้ำตาลมีจำนวนโพลีฟีนอลสูงกว่ามาโครสาหร่ายสีแดงและสีเขียว ผลลัพธ์สอดคล้องกับการศึกษาในช่วงต้น [46,47] ที่รายงานว่าสาหร่ายสีน้ำตาล (เช่น A. esculenta และ Saccharina latissma) มีปริมาณฟีนอลิกสูงกว่าสีแดง (P. palmata) และสายพันธุ์สีเขียว (เช่น U. lactuca) สิ่งนี้ได้รับการสนับสนุนจากผู้เขียนคนอื่น [48] ซึ่งสรุปว่าเนื้อหาโพลีฟีนอลเฉลี่ยเป็นชนิดเฉพาะ (A. esculenta > S. latissma > P. palmata) และเนื้อหาฟีนอลสูงกว่าสามเท่าใน A. esculenta มากกว่าในสายพันธุ์อื่น ( A. esculenta: 37 mgphloroglucinol เทียบเท่า (PGE)/g dw; S. latissma: 8 mg PGE/g dw; P. palmata: 5 mgGAE/g dw) นอกจากนี้ ในการศึกษาเดียวกัน ผู้เขียนรายงานว่าปริมาณโพลีฟีนอลแตกต่างกันไปตามฤดูกาล ในขณะที่ความผันแปรเชิงพื้นที่ (สาหร่ายถูกเก็บเกี่ยวในนอร์เวย์ ฝรั่งเศส และไอซ์แลนด์) มีผลเพียงเล็กน้อย ตัวอย่างเช่น Gager และคณะ (2020) พบว่าการเปลี่ยนแปลงตามฤดูกาลของปริมาณโพลีฟีนอลของ A. esculenta มีมากกว่า 300 มก. GAE/g DW ในฤดูใบไม้ร่วง เมื่อเทียบกับช่วงฤดูใบไม้ผลิ GAE/g DW ที่ต่ำกว่า 20 มก. Phlorotannins จากสาหร่ายสีน้ำตาลเจ็ดชนิดที่เก็บเกี่ยวในเชิงพาณิชย์ใน Brit tany (ฝรั่งเศส) ที่ตรวจพบโดย 1 H NMR และการทดสอบในหลอดทดลอง: ความผันแปรชั่วคราวและการประเมินศักยภาพในการใช้งานเครื่องสำอาง ตัวอย่างของเราถูกเก็บในเดือนกรกฎาคม (U. lactuca และA. esculenta) และในเดือนพฤศจิกายน (P. palmata) ในการศึกษาของ Roleda [48] เนื้อหาโดยเฉลี่ยใน A. esculenta จากเมือง Trondheim ประเทศนอร์เวย์ (ไม่ได้เก็บในไอซ์แลนด์) ในฤดูร้อนคือ 40 มก. PGE/g dw และ P. palmata จากไอซ์แลนด์ แต่มีค่า GAE/g dw 4 มก. ในฤดูใบไม้ร่วง ค่าที่สูงกว่าที่รายงานเมื่อเปรียบเทียบกับการศึกษาของเราสามารถอธิบายได้โดยสื่อการสกัดที่ใช้ (80:20 อะซิโตน: น้ำ) ซึ่งน่าจะส่งผลให้ได้ผลผลิตการสกัดที่สูงขึ้น นอกจากนี้ยังพบปริมาณโพลีฟีนอลที่สูงกว่าสำหรับสารสกัด A. esculenta โดยใช้ส่วนผสมของเอธานอลและน้ำ (50:50) กับอัลตราซาวนด์ [49] อย่างไรก็ตาม ด้วยการใช้สื่อในการสกัดแบบเดียวกันและการสกัดด้วยตัวทำละลายแบบคลาสสิก A. esculenta ได้รับการรายงานว่ามีสารสกัดที่ไม่เป็นน้ำ GAE/100 g dw 44.1 มก. ซึ่งค่อนข้างคล้ายกับที่พบในการศึกษาปัจจุบัน

ปริมาณฟลาโวนอยด์เฉลี่ยเฉพาะสปีชีส์ (A. esculenta > U. lactuca > P. palmata;(p < 0.{{10}}5) (ตารางที่ 2) ปริมาณสูงสุดของ พบสารฟลาโวนอยด์สำหรับสารสกัด A. esculenta (ค่าเฉลี่ย 12098.7 µg QE/g dw) ในขณะที่พบปริมาณที่ต่ำกว่าสำหรับ U. lactuca (ค่าเฉลี่ย 4152.4 µg QE/g dw) และกำหนดปริมาณขั้นต่ำสำหรับสารสกัด P. palmata ( ค่าเฉลี่ย 905.8 µg QE/g dw) เช่นเดียวกับพฤติกรรมที่พบในปริมาณฟีนอลิกทั้งหมด ประเภทของเทคโนโลยีการสกัดไม่มีผลกระทบอย่างมีนัยสำคัญต่อปริมาณฟลาโวนอยด์ (p > 0.05) ยกเว้น U. lactuca ผลการศึกษาพบว่า HW และการรวมกันของเทคนิคทั้งสอง (PEF บวก HW) เป็นเทคนิคที่มีประสิทธิภาพมากที่สุดสำหรับการสกัดฟลาโวนอยด์ใน U. lactuca (p < 0.05)

มีการศึกษาจำนวนมากเกี่ยวกับปริมาณฟลาโวนอยด์ในพืชบก แต่การศึกษาปริมาณฟลาโวนอยด์ในสาหร่ายนั้นหายาก [51] และโดยเฉพาะอย่างยิ่งในสายพันธุ์ที่ศึกษาในปัจจุบัน กล่าวคือการศึกษาของ Ummat et al. [49] รายงานว่าการสกัดด้วยอัลตราซาวนด์ช่วยฟื้นฟูการฟื้นตัวของฟลาโวนอยด์ใน 11สาหร่ายตรวจสอบ (รวมถึง A. esculenta) เปรียบเทียบกับการสกัดด้วยตัวทำละลายทั่วไปโดยใช้ส่วนผสมของเอทานอล 50 เปอร์เซ็นต์ ในการศึกษาอื่น ปริมาณฟลาโวนอยด์ถูกหาปริมาณในสารสกัดเมทานอลของ Ulva สี่ชนิด (Ulva clathrata, Ulva linza, Ulva flexuosa และ Ulva intestinalis) ที่ปลูกในส่วนต่างๆ ของชายฝั่งทางตอนเหนือของอ่าวเปอร์เซียทางตอนใต้ของอิหร่าน ปริมาณฟลาโวนอยด์ของสารสกัดจากสาหร่ายมีตั้งแต่ 8 ถึง 33 มก. RE/g dw [52] อย่างไรก็ตาม การศึกษาก่อนหน้านี้โดยกลุ่มวิจัยเดียวกันพบว่ามีการเปลี่ยนแปลงในองค์ประกอบทางเคมีโดยมีการเปลี่ยนแปลงของฤดูกาลและสภาพแวดล้อม [53] ดังนั้นจึงเป็นเรื่องยากเล็กน้อยที่จะมีภาพรวมของบรรณานุกรมของสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพเหล่านี้ในสาหร่ายเนื่องจากขาดงานวิจัยตีพิมพ์ แต่ยังเนื่องจากการเปลี่ยนแปลงในเนื้อหาฟลาโวนอยด์ที่ได้รับอิทธิพลจากสภาพการเจริญเติบโตและที่ตั้งทางภูมิศาสตร์

Mean carbohydrate content of produced extracts was also species-specific (P. palmata >U. lactuca > A. esculenta; p < 0.05)="" (ตารางที่="" 2)="" เนื้อหามีตั้งแต่="" 44.8="" ถึง="" 510="" มก.="" glue/gdw="" ขึ้นอยู่กับชนิดของสาหร่าย="" สาหร่ายมีพอลิแซ็กคาไรด์จำนวนมากพร้อมหน้าที่ที่สำคัญสำหรับเซลล์ของสาหร่ายขนาดใหญ่="" รวมทั้งการรองรับโครงสร้างและการจัดเก็บพลังงาน="" ตัวอย่างเช่น="" ส่วนหลักของผนังเซลล์สาหร่ายสีแดงและสีน้ำตาลจะแสดงด้วยกาแลคแทนที่มีซัลเฟต="" ซึ่งเรียกว่าวุ้น="" แอลจิเนต="" และคาราจีแนน="" [54]="" สาหร่ายสีแดง="" p.="" palmata="" แสดงปริมาณคาร์โบไฮเดรตสูงสุด="" (ค่าเฉลี่ย="" 441="" mgglue/g="" dw)="" ผลลัพธ์สอดคล้องกับการศึกษาก่อนหน้านี้ที่รายงานความเข้มข้นสูงสุดของโพลีแซคคาไรด์ใน="" palmaria="" สปีชีส์="" [55]="" นอกจากนี้="" mutripah="" และคณะ="" [56]="" อธิบายเนื้อหาคาร์โบไฮเดรตทั้งหมดของ="" p.="" palmata="" ที่มีสาหร่ายแห้ง="" 469="" มก./กรัม="">

สาหร่ายสีเขียวขนาดใหญ่ U. lactuca แสดงปริมาณ GluE/g สูงถึง 249.5 มก. ขึ้นอยู่กับเทคนิคการสกัดที่ใช้ (ตารางที่ 2) จากวรรณกรรม U. lactucahas เซลลูโลสที่ละลายน้ำได้และไม่ละลายน้ำซึ่งสอดคล้องกับโพลีแซ็กคาไรด์ที่มีโครงสร้างซึ่งมีส่วนประกอบหลักเรียกว่า ulvan ซึ่งมีสัดส่วนจากมวลชีวภาพ 9 ถึง 36 เปอร์เซ็นต์ [57] Ulvan ส่วนใหญ่ประกอบด้วย sulfated rhamnose กรด uronic (glucuronicacid และ iduronic acid) และ xylose เนื่องจากลักษณะขั้วของมัน ความสามารถในการละลายของสารละลายที่ไม่เป็นน้ำของ ulvan จึงเพิ่มขึ้นโดยการสกัดที่อุณหภูมิสูง (80–90 ◦C) [58] อุณหภูมิในการสกัดอาจเป็นสาเหตุว่าทำไมปริมาณคาร์โบไฮเดรตทั้งหมดของสารสกัดจากน้ำนมแม่ที่ผลิตโดยการสกัดด้วยน้ำร้อนแบบดั้งเดิมและการผสมผสานของวิธีการทั้งสอง (PEF บวก HW) จึงสูงกว่า (p < 0.05)="" เมื่อเทียบกับปริมาณที่ได้จากการใช้="" pef="">

ในทางกลับกัน ผู้เขียนคนอื่นๆ เน้นถึงความสำคัญของการเปลี่ยนแปลงตามฤดูกาลในเนื้อหาโพลีแซ็กคาไรด์ ตัวอย่างเช่น Schiener et al. อ้างว่าระบุความผันแปรตามฤดูกาลและคาดการณ์เวลาเก็บเกี่ยวที่ดีที่สุดสำหรับสาหร่ายทะเล การวิเคราะห์องค์ประกอบตามฤดูกาลของ A. esculenta แสดงให้เห็นว่าค่าสูงสุดของคาร์โบไฮเดรตใกล้เคียงกับความเข้มข้นของโปรตีน เถ้า โพลีฟีนอลและความชื้นที่ลดลง [39] ผู้เขียนกล่าวว่าความสัมพันธ์เหล่านี้ซึ่งแตกต่างกันไปตามฤดูกาลและสายพันธุ์ สามารถใช้โดยอุตสาหกรรมเพื่อเพิ่มผลผลิตเป้าหมายสาหร่ายส่วนประกอบ

2.4. ความสามารถในการต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดจากสาหร่ายไอซ์แลนด์

A. esculenta มีฤทธิ์ในการขจัด DPPH ที่แรงที่สุดในบรรดาสารสกัดหยาบของสาหร่ายทั้งสามชนิด (p < {0}}.05)="" โดยให้ผลการไล่ออกมากกว่า="" 90="" เปอร์เซ็นต์="" (ตารางที่="" 3)="" เมื่อเปรียบเทียบกับชนิดที่ต่างกัน="" สารละลายมาตรฐาน="" a.="" esculenta="" แสดงกิจกรรมการขับที่เปรียบเทียบได้กับกรดแอสคอร์บิก="" 100="" ไมโครกรัม/มิลลิลิตร="" (87.9="" เปอร์เซ็นต์)="" กรดแกลลิก="" (91.0="" เปอร์เซ็นต์)="" และ="" -โทโคฟีรอล="" (87.9="" เปอร์เซ็นต์)="" ผลลัพธ์ของเราสอดคล้องกับการศึกษาเมื่อเร็วๆ="" นี้="" [50]="">สารต้านอนุมูลอิสระฤทธิ์ของสารสกัด A. esculenta น่าแปลกที่ไม่มีความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญในสารต้านอนุมูลอิสระสังเกตการออกฤทธิ์ระหว่างวิธีการสกัดที่ต่างกันที่ทดสอบ (p > 0.05) คาดว่าสารสกัด PEF จะแสดงค่าต้านอนุมูลอิสระได้ดีกว่าสารสกัดที่ผลิตด้วยการสกัดแบบร้อน เนื่องจากการศึกษาอื่น ๆ ได้แสดงให้เห็นว่าเทคนิคสีเขียว (เช่น การสกัดด้วยไมโครเวฟหรือการสกัดด้วยเอนไซม์) สามารถหลีกเลี่ยงการสลายตัวของสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพได้อย่างมีประสิทธิภาพ ซึ่งแสดงฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระที่สูงขึ้น [59 ,60].

ความสามารถของสาหร่ายสารสกัดเพื่อลดไอออนของเฟอร์ริก (Fe3 บวก) เป็นเฟอร์รัส (Fe2 บวก) และความสามารถในการกำจัด ABTS ที่รุนแรงยังได้รับการศึกษาโดยวิธี FRAP และ ABTS ตามลำดับ ผลลัพธ์ของ FRAP แสดงให้เห็นแนวโน้มที่คล้ายคลึงกันกับ DPPH โดยแสดงว่า A. esculenta มีความสามารถที่แข็งแกร่งที่สุดในการลดไอออนของเฟอร์ริก (Fe3 บวก ) เป็นเฟอร์รัส (Fe2 บวก ) ในบรรดาสารสกัดที่หยาบของสาหร่ายทั้งสามชนิด (p < 0="" {{6}="" }5).="" อย่างไรก็ตาม="" พบพฤติกรรมที่แตกต่างออกไปสำหรับ="" abts="" สารสกัดจากสาหร่ายทะเลทั้งหมดมีความสามารถใกล้เคียงกันในการขจัด="" abts="" รุนแรง="" (p=""> 0.05) ซึ่งบ่งชี้ว่าสปีชีส์เหล่านี้อาจมีสารประกอบที่มีประสิทธิภาพซึ่งมีหน้าที่ในการไล่ออก

โดยทั่วไปแล้ว สาหร่ายสีน้ำตาลเป็นที่รู้จักกันว่าสูงกว่าสารต้านอนุมูลอิสระศักยภาพเมื่อเปรียบเทียบกับตระกูลสีแดงและสีเขียว [61] ผลลัพธ์ของเรายังแสดงให้เห็นว่าสารสกัดจากน้ำ A. esculenta แสดงฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระที่มีประสิทธิภาพเกี่ยวกับการขจัด freeradicals และกำลังการลดลง ซึ่งบ่งชี้ว่า A. esculenta อาจเป็นแหล่งข้อมูลสำหรับสารต้านอนุมูลอิสระตามธรรมชาติ กิจกรรมการต้านอนุมูลอิสระสูงที่สังเกตพบสำหรับสารสกัด A. esculenta อาจเชื่อมโยงกับเนื้อหาสูงในสารประกอบฟีนอลที่กำหนดในสารสกัดจากสาหร่ายสีน้ำตาล ในการศึกษาจำนวนมากสารต้านอนุมูลอิสระกิจกรรมของสารสกัดจากสาหร่ายถูกกำหนดให้เป็นสารประกอบฟีนอลิก ซึ่งแสดงความสัมพันธ์เชิงบวกระหว่างปริมาณฟีนอลและความสามารถในการกำจัดส่วนใหญ่ด้วย DPPH [62,63] พบผลความสัมพันธ์ที่คล้ายคลึงกันในการศึกษาปัจจุบันสำหรับสารสกัด A. esculenta (ดูการสนทนาที่ดีขึ้นในหัวข้อ 2.6 ความสัมพันธ์ระหว่างสารประกอบทางเคมีและคุณสมบัติออกฤทธิ์ทางชีวภาพ)

2.5. ฤทธิ์ยับยั้งเอนไซม์ของสารสกัดจากสาหร่ายไอซ์แลนด์

ไอซ์แลนด์สาหร่ายสารสกัดแสดงผลการยับยั้งในเชิงบวกต่อเอนไซม์ทั้งหมดที่ทดสอบแล้ว (ตารางที่ 4) ซึ่งเป็นการเปิดช่องทางใหม่สำหรับการใช้ประโยชน์จากสารยับยั้งเอนไซม์ตามธรรมชาติจากแหล่งสาหร่าย เท่าที่ทราบ นี่เป็นครั้งแรกที่กิจกรรมการยับยั้งเอนไซม์ของไอซ์แลนด์สาหร่ายสารสกัดที่ผลิตโดย PEF ได้รับการทดสอบแล้ว

2.5.1. กิจกรรมยับยั้งคอลลาเจน

สารสกัด A. esculenta มีการยับยั้ง collagenase ในเชิงบวกตั้งแต่ 68 ถึง 91 เปอร์เซ็นต์ ในขณะที่สารสกัด P. palmaria และ U. lactuca แสดงฤทธิ์ยับยั้งการต่อต้านคอลลาเจนเล็กน้อย (ตารางที่ 4) สารสกัดจากน้ำร้อน A. esculenta แสดงฤทธิ์ยับยั้งคอลลาเจนเดส 71.1 เปอร์เซ็นต์ ซึ่งสูงกว่าสารละลายมาตรฐาน epigallocatechin-3-gallate (EGCG) (63.2 เปอร์เซ็นต์) และเทียบได้กับมาตรฐานเชิงบวกที่ได้จากชุดเอนไซม์เชิงพาณิชย์ (74.9 เปอร์เซ็นต์) สิ่งสำคัญ ผลการวิจัยพบว่าสารสกัด A. esculenta ที่ผลิตโดย PEF แสดงให้เห็นการยับยั้ง acollagenase ที่ 91 เปอร์เซ็นต์ ซึ่งแสดงฤทธิ์ที่สูงกว่าตัวยับยั้งที่จัดหาโดยชุดเครื่องมือทางการค้า ควรเน้นว่ากิจกรรมนี้สังเกตได้เฉพาะในสารสกัดจากน้ำที่ผลิตโดย PEF และไม่ได้เกิดจากการรวมกันของ PEF บวก HW พฤติกรรมนี้สามารถอธิบายได้ด้วยความเป็นไปได้ที่กระบวนการทำน้ำร้อนอาจส่งผลเสียต่อสารประกอบที่มีหน้าที่ในการยับยั้งการทำงานของคอลลาเจนเนส อย่างไรก็ตาม จำเป็นต้องมีการศึกษาเพิ่มเติมเพื่ออธิบายผลลัพธ์เหล่านี้เนื่องจากความซับซ้อนของสารสกัดจากสาหร่ายดิบ กลุ่มวิจัยดังกล่าวกำลังทำงานในการระบุตัวยับยั้งโมเลกุลในสารสกัด A. esculenta เพื่อให้เข้าใจถึงผลกระทบเชิงบวกเหล่านี้ที่ผลิตโดย PEF ได้ดียิ่งขึ้น

ผลลัพธ์เกี่ยวกับการยับยั้งคอลลาเจนเนสโดยสารสกัด A. esculenta เป็นไปตามข้อมูลก่อนหน้านี้ ซึ่ง A. esculenta ถูกใช้ในสารสกัดเชิงพาณิชย์เนื่องจากมีฤทธิ์ต้านการเสื่อมสภาพ ความเสื่อมโทรมของคอลลาเจนเกิดขึ้นตามวัยอันเนื่องมาจากกิจกรรมของคอลลาเจน ส่งผลให้เกิดริ้วรอยบนผิวหนัง การยับยั้งคอลลาเจนเนสโดยสารประกอบที่เกิดขึ้นตามธรรมชาติเป็นโอกาสที่น่าสนใจสำหรับผลิตภัณฑ์ต่อต้านวัย ตัวอย่างเช่น SEPPIC ซัพพลายเออร์ของส่วนผสมสำหรับอุตสาหกรรมเครื่องสำอางกำลังเสนอสารสกัดไขมันจาก A เอสคูเลนต้า (Kalpariane® AD) [64]

2.5.2. กิจกรรมยับยั้งอีลาสเทส

เฉพาะสารสกัดหยาบของ A. esculenta เท่านั้นที่ยับยั้ง elastase ซึ่งแสดงกิจกรรมที่สูงกว่า 70 เปอร์เซ็นต์ของการยับยั้ง (ตารางที่ 4) อย่างไรก็ตาม ฤทธิ์ต้านอีลาสเทสของสารสกัด A. esculenta ไม่มีความแตกต่างทางสถิติระหว่างวิธีการสกัด (p > 0.05) เมื่อเทียบกับ quercetinsolutions สารยับยั้ง elastase ที่รู้จักกันดีซึ่งมีการยับยั้ง 100 เปอร์เซ็นต์ที่ 1 mM และ 58.7 เปอร์เซ็นต์ที่ 0.5 mM ประสิทธิภาพของสารสกัดจาก A. esculenta นั้นสูง

อีลาสเทสเป็นเอนไซม์โปรตีเอสที่สามารถลดอีลาสตินโดยการทำลายเปปไทด์บอนด์ที่เฉพาะเจาะจง จึงสามารถยับยั้งการทำงานของอีลาสเทสในชั้นหนังแท้เพื่อรักษาความยืดหยุ่นของผิวได้ [65] สารสกัดจากพืชหลายชนิดได้รับการระบุว่าเป็นสารยับยั้งอีลาสเทส [17]; อย่างไรก็ตาม มีการตรวจสอบเพียงเล็กน้อยเกี่ยวกับการยับยั้งอีลาสเทสจากแหล่งสาหร่าย จากข้อมูลในวรรณคดี โพลีฟีนอลที่สกัดจากพืชเป็นที่ทราบกันว่าเป็นสารยับยั้งอีลาสเทสที่แข็งแกร่งและไฮยาลูโรนิเดส [66] ผลการศึกษาล่าสุดรายงานว่า phlorotannins ซึ่งเป็นชนิดของแทนนินในสาหร่ายสีน้ำตาล สารสกัดจากสาหร่ายทะเล Eisenia bicyclis และสาหร่ายสีน้ำตาล Ecklonia cava มีประโยชน์ต่อผิวโดยการลดกิจกรรมของอีลาสเทสอย่างมีนัยสำคัญ [67] สารสกัด A. esculenta ที่ผลิตในการศึกษานี้แสดงให้เห็นว่า ค่า TPC และ TFC สูงสุดเมื่อเปรียบเทียบกับสปีชีส์อื่นที่ศึกษา (ตารางที่ 4) นี่อาจเป็นเหตุผลว่าทำไมสารสกัดที่เป็นน้ำจาก P. palmaria และ U. lactuca ไม่แสดงฤทธิ์ต้านอีลาสเทส เพื่อยืนยันสมมติฐานนี้ ได้ทำการวิเคราะห์สหสัมพันธ์ของเพียร์สัน โดยแนะนำว่าฤทธิ์ต้านเอนไซม์มีความสัมพันธ์เชิงบวกกับเนื้อหาของสารฟีนอลิก (ดูการอภิปรายเพิ่มเติมในหัวข้อ 2.6 ความสัมพันธ์ระหว่างสารประกอบเคมีและคุณสมบัติออกฤทธิ์ทางชีวภาพ)

2.5.3. กิจกรรมยับยั้งไทโรซิเนส

สารสกัด A. esculenta มีผลบวกไทโรซิเนสการยับยั้งสูงกว่า 90 เปอร์เซ็นต์สำหรับวิธีการสกัดทั้งหมดที่ใช้ ในขณะที่สารสกัด P. palmaria และ U. lactuca ไม่แสดงผลการยับยั้งไทโรซิเนส (ตารางที่ 4) อย่างไรก็ตาม ฤทธิ์ต้านไทโรซิเนสของสารสกัด A. esculenta ไม่แตกต่างกัน (p < 0.05)="" กับวิธีการสกัด="" การเปรียบเทียบผลของ="" a.="" esculentaextracts="" กับสารละลายเควอซิทินที่ทดสอบ="" สารสกัดหยาบของสาหร่ายสีน้ำตาลแสดงฤทธิ์การยับยั้งได้ดีกว่าสารละลายเหล่านี้="" (88="" และ="" 75="" เปอร์เซ็นต์สำหรับเควอซิทินสารละลาย="" 0.5="" และ="" 1="" มิลลิโมลาร์="" ตามลำดับ)="" จากวรรณคดี="" นักวิจัยหลายคนรายงานฤทธิ์ต้านไทโรซิเนสของพืช="" แบคทีเรีย="" และเชื้อรา="" [68]="" อย่างไรก็ตาม="" แม้ว่าการศึกษาต่างๆ="" ชี้ให้เห็นว่าสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพที่ได้จากสาหร่ายทะเลมีศักยภาพที่ดีที่จะนำไปใช้เป็นสารฟอกสีผิว="" [13]="" แต่ก็ยังเป็นโดเมนที่ยังไม่ได้สำรวจและมีการศึกษาเพียงเล็กน้อยเท่านั้น="" การศึกษาส่วนใหญ่ดำเนินการในพื้นที่นี้เน้นที่สาหร่ายสีน้ำตาล="" โดยเห็นด้วยกับผลการศึกษาปัจจุบันที่สารสกัดจาก="" a.="" esculentaextracts="" แสดงฤทธิ์ต้านไทโรซิเนสได้ดีที่สุด="" ตัวอย่างเช่น="" อนุพันธ์ของ="" phloroglucinol="" และ="" phlorotannins="" ซึ่งเป็นสารทุติยภูมิที่พบได้ทั่วไปในสาหร่ายสีน้ำตาล="" ได้แสดงให้เห็นฤทธิ์ในการยับยั้งไทโรซิเนสเนื่องจากความสามารถในการคีเลตทองแดง="" [69]="" ในการศึกษาเมื่อเร็วๆ="" นี้="" สารสกัดจากสาหร่ายสีน้ำตาล="" lessonia="" trabeculate="" ที่ผลิตโดยการสกัดด้วยไมโครเวฟช่วยยับยั้งการทำงานของไทโรซิเนสที่="" 33.73="" เปอร์เซ็นต์="" [60]="" ในการศึกษาอื่น="" สารสกัดจากสาหร่ายสีน้ำตาล="" turbinaria="" conoides="" แสดงฤทธิ์เป็น="">สารต้านอนุมูลอิสระและไทโรซิเนสตัวยับยั้ง แต่ในกรณีนี้ เอทานอลถูกใช้เป็นตัวทำละลาย [70] ความสัมพันธ์ที่มีนัยสำคัญระหว่างฤทธิ์ยับยั้งโพลีฟีนอลที่สกัดจากพืชในเห็ดไทโรซิเนสได้รับรายงานในการศึกษาก่อนหน้านี้ [68] ในทำนองเดียวกัน ผลการศึกษานี้ชี้ให้เห็นว่ากิจกรรมการยับยั้งต่อไทโรซิเนสมีความสัมพันธ์เชิงบวกกับปริมาณฟลาโวนอยด์และฟีนอล (ดูหัวข้อ 2.6 ความสัมพันธ์ระหว่างสารเคมีและคุณสมบัติทางชีวภาพ)

ไทโรซิเนสมีบทบาทสำคัญในการสังเคราะห์ทางชีวภาพของเม็ดสีเมลานินในผิวหนัง เมลานินมีหน้าที่ในการป้องกันรังสีอัลตราไวโอเลตที่เป็นอันตราย ซึ่งอาจทำให้เกิดสภาวะทางพยาธิวิทยาหลายประการ [71] นอกจากนี้ยังสามารถสร้างปัญหาด้านความงามเมื่อเมลานินสะสมเป็นจุดที่มีเม็ดสีมากเกินไป [72] ดังนั้น การผสมผสานสารยับยั้งไทโรซิเนสในผลิตภัณฑ์เครื่องสำอางจึงน่าดึงดูดเนื่องจากผลของการฟอกสีฟันและหรือการทำให้ขาวขึ้น

cistanche สามารถยับยั้งไทโรซิเนส

2.5.4. กิจกรรมการยับยั้ง Hyaluronidase

ทั้งหมดสาหร่ายสารสกัดแสดงฤทธิ์ต้านไฮยาลูโรนิเดสสูงอย่างมีนัยสำคัญ (ตารางที่ 4) โดยแสดงผลลัพธ์ที่เทียบเท่ากับสารละลายกรดแทนนิก (ตัวยับยั้งไฮยาลูโรนิเดสที่รู้จักกันดี) โดยเฉพาะอย่างยิ่ง สารสกัด A. esculenta แสดงให้เห็น 100 เปอร์เซ็นต์ของการยับยั้งสำหรับวิธีการทั้งหมดที่ทดสอบ นอกจากนี้ สารสกัด U. lactuca แสดงฤทธิ์การยับยั้งได้สูงกว่า 90 เปอร์เซ็นต์ โดยที่การยับยั้งของสารสกัดที่ผลิตโดย PEF (96.8% ) และการรวมกันของ PEF บวก HW (97.3% ) นั้นสูงกว่าการยับยั้งที่เกิดจากวิธีน้ำร้อนแบบเดิม 93.4 เปอร์เซ็นต์ ) (p < 0.05)="" สารสกัด="" p.="" palmaria="" ทั้งหมดแสดงกิจกรรมที่คล้ายคลึงกัน="" (p="">< 0.05)="" การยับยั้งของสารสกัดที่ผลิตโดย="" pef="" คือ="" (91.9="" เปอร์เซ็นต์)="" และการรวมกันของ="" pef="" บวก="" hw="" (89.5="" เปอร์เซ็นต์)="" และวิธีการน้ำร้อนแบบเดิม="" (91.8="">

ผู้เขียนคนอื่น ๆ ยังอธิบายกิจกรรมต่อต้าน hyaluronidase ที่แตกต่างกันสาหร่ายs extracts โดยเฉพาะอย่างยิ่งสำหรับสารสกัดที่อุดมไปด้วย phlorotannins จากสาหร่ายสีน้ำตาล [73,74] อย่างไรก็ตาม ตามความรู้ที่ดีที่สุดของเรา นี่เป็นครั้งแรกที่มีรายงานเกี่ยวกับฤทธิ์ยับยั้ง hyaluronidase ของ P. palmata และสารสกัด U. lactuca ที่ผลิตโดย PEF

กรดไฮยาลูโรนิกเป็นส่วนประกอบหลักของผิวหนังชั้นหนังแท้ ซึ่งเกี่ยวข้องกับการซ่อมแซมเนื้อเยื่อ ซึ่งจะสลายตัวตามวัย ทำให้เกิดริ้วรอยและสูญเสียความกระชับของผิว ในแง่นี้ สารยับยั้ง hyaluronidase จะเพิ่มระดับกรดไฮยาลูโรนิกของเมทริกซ์นอกเซลล์ผิวหนัง เพื่อปรับปรุงลักษณะที่ปรากฏของผิวหน้าที่แก่ก่อนวัย [13] ดังนั้นผลการศึกษานี้อาจเปิดช่องทางใหม่ในการใช้ประโยชน์จากสารยับยั้งไฮยาลูโรนิเดสจากธรรมชาติจากแหล่งสาหร่ายที่มีศักยภาพในผลิตภัณฑ์เครื่องสำอาง

โดยสรุป ข้อมูลที่รวบรวมได้ทำให้เราสรุปได้ว่าสารสกัด A. esculenta มีฤทธิ์ในการยับยั้งโดยรวมได้ดีกว่า P. palmaria และ U. lactuca ต่อเอนไซม์ที่ทดสอบ ดังนั้นจึงเป็นสาหร่ายสายพันธุ์ที่มีแนวโน้มมากที่สุดที่มีฤทธิ์ต้านเอนไซม์ที่ดีเยี่ยม ดังนั้นจึงได้รับการคัดเลือกสำหรับการศึกษาเพิ่มเติมในห้องปฏิบัติการของเรา แม้ว่าสารสกัดหยาบจาก A. esculenta ดูเหมือนจะเป็นตัวเลือกที่ดีในการทดลองในหลอดทดลอง แต่การศึกษาเพิ่มเติมจำเป็นต้องดำเนินการเพื่อชี้แจงเอกลักษณ์ของสารที่รับผิดชอบต่อผลกระทบทางชีวภาพเหล่านี้

สารสกัดจาก cistanche: ต่อต้านอนุมูลอิสระ

2.6. ความสัมพันธ์ระหว่างสารเคมีและคุณสมบัติออกฤทธิ์ทางชีวภาพ

ผลจากการวิเคราะห์องค์ประกอบหลัก (PCA) พบว่า PC1 และ PC2 กำหนดการแยกกลุ่มหลักซึ่งคิดเป็น 71.9 เปอร์เซ็นต์ของความแปรปรวนของข้อมูลและ 14.5 เปอร์เซ็นต์ตามลำดับ (รูปที่ 2) สารสกัด A. esculenta มีลักษณะเฉพาะด้วยปริมาณฟลาโวนอยด์และสารประกอบฟีนอลิกที่สูงกว่า ผลการยับยั้งเอนไซม์ (คอลลาเจน ไทโรซิเนส และอีลาสเทส) และค่า DPPH และ FRAP มากกว่าสปีชีส์อื่น P. Palmata และ U. lactuca. ในทางกลับกัน A. esculenta มีปริมาณคาร์โบไฮเดรตต่ำกว่า โดยเฉพาะอย่างยิ่งเมื่อเทียบกับ P. palmata (ซึ่งอยู่ฝั่งตรงข้ามของ PC1) ความแปรปรวนของข้อมูลตาม PC2 ส่วนใหญ่เกี่ยวข้องกับการยับยั้ง ABTS และการยับยั้ง hyaluronidase ตามที่ระบุโดยตำแหน่งบนแปลง P. palmata มีความสัมพันธ์กับ ABTS ที่แข็งแกร่งกว่าในขณะที่ U. lactuca มีความสัมพันธ์กับผลการยับยั้ง hyaluronidase มากกว่าเมื่อเปรียบเทียบกับทั้งสองสายพันธุ์

ความสัมพันธ์เชิงบวกที่สูงและมีนัยสำคัญระหว่าง TPC, TFC, DPPH, FRAP และผลการยับยั้งต่อคอลลาเจนเนส อีลาสเทส และไทโรซิเนสแสดงโดยการวิเคราะห์ความสัมพันธ์แบบเพียร์สัน (ตารางที่ 5)

นี่เป็นข้อตกลงกับการศึกษาก่อนหน้านี้ โดยรายงานว่าสารประกอบฟีนอลิก (รวมถึงฟลาโวนอยด์) เป็นตัวการหลักในการออกฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของสารต่างๆสาหร่าย[75–77]. ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระสูงของสารสกัดจากสาหร่ายสีน้ำตาลมีความเกี่ยวข้องกับกลุ่มเฉพาะของโพลีฟีนอล ฟลอโรแทนนิน และโครงสร้างโมเลกุลที่เป็นเอกลักษณ์ของพวกมัน มีรายงานว่า Phlorotannis จากสาหร่ายสีน้ำตาลมีฟีนอลริงที่เชื่อมต่อถึงกันมากถึงแปดตัวซึ่งทำหน้าที่เป็นกับดักอิเล็กตรอน [78,79] คาดว่า ABT จะสัมพันธ์กับ TPC อื่นๆสารต้านอนุมูลอิสระพารามิเตอร์ สาเหตุที่เป็นไปได้อาจเป็นเพราะวิธีการนั้นขึ้นอยู่กับสภาวะของปฏิกิริยาที่แตกต่างกัน และความสามารถในการเกิดปฏิกิริยานั้นแตกต่างกันทั้งในแง่ของเวลาและช่วงของส่วนประกอบ ตัวอย่างเช่น น้ำยา ABTS ทำปฏิกิริยากับช่วงกว้างของสารต้านอนุมูลอิสระมากกว่าอนุมูล DPPH [80] ในทางกลับกัน ข้อจำกัดประการหนึ่งที่กล่าวถึงสำหรับ ABTS คือปฏิกิริยาที่ยาวนาน และเวลาตอบสนองทั่วไปอาจไม่อนุญาตให้ไปถึงจุดสิ้นสุด

ผลการวิจัยพบว่า TPC และ TFC มีความสัมพันธ์เชิงบวกสูงต่อการยับยั้งการทำงานของ collagenase, elastase และ tyrosinase ({{0}}.93–0.99) ในขณะที่ความสัมพันธ์กับการยับยั้ง ของ hyaluronidase ไม่แรงเท่า (r=0.42 และ 0.54 ตามลำดับ) ซึ่งบ่งชี้ว่าส่วนประกอบอื่นๆ อาจมีส่วนในการยับยั้งผลของสารสกัด มีการศึกษาอื่น ๆ รายงานว่าพอลิแซ็กคาไรด์มีฤทธิ์ยับยั้งไฮยาลูโรนิเดส เช่น กรดอัลจินิกในสาหร่ายสีน้ำตาล [81,82] จำเป็นต้องมีการศึกษาเพิ่มเติมเกี่ยวกับองค์ประกอบทางเคมีของสาหร่ายสปีชีส์สำหรับผลกระทบของสารประกอบที่แยกได้ต่อเอนไซม์เพื่อประเมินการมีส่วนร่วมขององค์ประกอบทางเคมีแต่ละอย่างเช่นเดียวกับในการศึกษานี้ เน้นไปที่สารสกัดหยาบ

ผลการวิจัยสอดคล้องกับการศึกษาก่อนหน้านี้ โดยระบุว่าองค์ประกอบทางเคมีและระดับของฤทธิ์ทางชีวภาพของสารสกัดมีความแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญระหว่างสาม linages (สาหร่ายสีแดง สีเขียว และสีน้ำตาล) และระหว่างสายพันธุ์ต่างๆ ที่อยู่ในไฟลัมเดียวกันนั้นได้รับอิทธิพลจากอายุและเนื้อเยื่อ พิมพ์. นอกจากนี้ องค์ประกอบและคุณลักษณะยังขึ้นอยู่กับปัจจัยแวดล้อมหลายอย่างที่ส่งผลต่อการกระจายและการเติบโตของสาหร่าย ตัวอย่างเช่น แสง (รังสีอัลตราไวโอเลต) อุณหภูมิ ความพร้อมของสารอาหาร การสัมผัสกับอากาศ การเคลื่อนที่ของน้ำ การสัมผัสกับคลื่น และความเค็ม อุณหภูมิได้รับการอธิบายว่าเป็นปัจจัยที่มีผลกระทบมากที่สุดต่อการสร้างเม็ดสีและความเข้มข้นของสารอาหาร ความเค็ม และรังสี UV เป็นปัจจัยที่มีอิทธิพลต่อความเข้มข้นของ TPC [83]

การกระจายของสาหร่ายชนิดต่างๆ จะแตกต่างกันไปตามความลึกของน้ำ ตำแหน่งที่สูงขึ้นของฝั่งในเขตน้ำขึ้นน้ำลงหรือเขตชายฝั่งจะเครียดมากขึ้นเมื่อสายพันธุ์ที่เติบโตที่นั่นต้องทนต่อการเปลี่ยนแปลงหลายประการในปัจจัยที่ไม่มีชีวิตอันเนื่องมาจากการเปลี่ยนแปลงของกระแสน้ำ ตัวอย่างเช่น ผลกระทบของการทำให้อากาศแห้ง การฉายรังสีแสงอาทิตย์สูง (ที่น้ำลง) การเปลี่ยนแปลงของความเค็มและอุณหภูมิ และภายใต้สภาวะที่มีอุณหภูมิอากาศต่ำ รวมถึงการแช่แข็ง ความลึกที่เพิ่มขึ้นส่งผลให้ความเข้มของแสงลดลงอย่างรวดเร็วและไม่มีการฉายรังสี

สาหร่ายที่เติบโตในช่วงน้ำขึ้นน้ำลงมีความไวต่อรังสี UV ต่ำกว่าและฟื้นตัวอย่างรวดเร็วจากความเครียดจากแสงอาทิตย์ ในขณะที่สาหร่ายที่เติบโตในเขต sublittoral มีความไวต่อรังสี UV มากกว่าและมีการฟื้นตัวจากความเครียดจากแสงอาทิตย์น้อยกว่า [84] ในขณะเดียวกันเสาน้ำก็ให้การป้องกัน ในการศึกษาปัจจุบัน การสัมผัสกับแสงแดดน่าจะแข็งแรงกว่าสำหรับ P. palmata เมื่อเทียบกับสายพันธุ์อื่นๆ การศึกษาอื่น ๆ แสดงให้เห็นว่าการก่อตัวของ MAA นั้นเกี่ยวข้องโดยตรงกับแสงแดด [85] ซึ่งปกป้องสิ่งมีชีวิตจากรังสี UV-A และ UV-B นอกจากนี้ยังพบว่าปริมาณ MAA จำเพาะลดลงตามความลึกของการสะสมที่เพิ่มขึ้น สาหร่ายทะเลเช่น A. esculenta เป็นที่รู้กันว่าเติบโตที่เขต sublittoral ตอนบน แต่ยังขยายไปสู่น้ำขึ้นน้ำลงต่ำสุดที่อยู่เหนือลายน้ำด้านล่าง หมายถึงคอลัมน์น้ำให้การป้องกันที่แข็งแกร่งกว่าสำหรับ P. palmata นอกจากนี้ลักษณะทางสัณฐานวิทยายังแตกต่างกัน ใบมีดของ A. esculenta มีความหนามากกว่าเมื่อเทียบกับอีกสองสายพันธุ์ U. lactuca ซึ่งเติบโตส่วนใหญ่ใน sublittoral intertidaland สามารถสังเคราะห์แสงและเติบโตภายใต้การฉายรังสีที่ต่ำมาก มีการระบุไว้ว่าการเปิดรับแสง UVB เพื่อเร่งการฟื้นตัวของพารามิเตอร์การสังเคราะห์แสงของ U lactuca จากผลกระทบด้านลบของแสง UVA มีโครงสร้างที่เล็กกว่า เรียบง่ายกว่า และมีอายุสั้นกว่า (3 เดือน) มากกว่าทั้ง A. esculenta (5-7 ปี) และ P. palmata ซึ่งมีการงอกใหม่ทุกปี

โดยสรุป สมมติฐานสามารถวาดได้ว่าความแตกต่างที่สำคัญในคุณสมบัติของสารสกัดคือความผันแปรของช่วงชีวิต ลักษณะทางสัณฐานวิทยา และสภาพการเจริญเติบโตของสาหร่าย

3. วัสดุและวิธีการ

3.1. วัสดุ

ไอซ์แลนด์สาหร่ายs U. lactuca (สาหร่ายสีเขียว), A. esculenta (สาหร่ายสีน้ำตาล) และ P. palmata(สาหร่ายสีแดง) โดย Icelandic Blue Mussel และสาหร่ายซึ่งเก็บเกี่ยวสาหร่ายทะเลใน Breidafjordur (ทางตะวันตกของไอซ์แลนด์) หลังจากการเก็บเกี่ยว สาหร่ายถูกทำให้แห้ง (เป็นวัสดุแห้งประมาณ 90 เปอร์เซ็นต์) บดและนำส่งบรรจุในสุญญากาศ เก็บตัวอย่างไว้ในที่แห้งและมืดที่อุณหภูมิห้องจนกว่าจะใช้

ไทโรซิเนสจากเห็ด L-3,4-ไดไฮดรอกซีฟีนิลอะลานีน (L-DOPA), อีลาสเทสจากตับอ่อนของสุกร, กรดแอสคอร์บิก, N-Succinyl-Ala-Ala-Ala-p-nitroanilide (AAAPVN), ไฮยาลูโรนิเดสจากอัณฑะของวัว , quercetin, -tocopherol, tannic acid, 2,2-diphenyl-1-picrylhydrazyl (DPPH), 2,4,6-Tripyridyl-s-Triazine (TPTZ), Trolox, Folin-Ciocalteu รีเอเจนต์, กรดแกลลิกและชุดทดสอบการวัดสีด้วยกิจกรรมคอลลาเจนเนส (MAK293) ถูกซื้อจากบริษัท Sigma-Aldrich Co. (เซนต์หลุยส์ รัฐมิสซูรี สหรัฐอเมริกา) ซื้อเกลือโซเดียมไฮยาลูโรนิกจากMakingCosmetics (Redmond, WA, USA) สารเคมีและรีเอเจนต์อื่นๆ ทั้งหมดเป็นเกรดเชิงวิเคราะห์และได้มาจาก VWR International, LLC น้ำปราศจากไอออน (Elix® Essential,Merck, Darmstadt, Germany) ถูกใช้สำหรับการสกัดและเตรียมสารละลายที่เป็นน้ำ

3.2. การออกแบบทดลอง

การออกแบบแฟกทอเรียลใช้สำหรับการประเมินผลกระทบของสาหร่ายทะเลไอซ์แลนด์ (U. lactuca,A. esculenta, P. palmata) และการบำบัดด้วยการสกัด (การสกัดด้วยน้ำร้อน (HW, 95 ◦C)), การสกัดด้วย PEFassisted (PEF) และการรวมกันของทั้งสอง เทคนิค (PEF บวก HW) เกี่ยวกับองค์ประกอบสารสกัดและฤทธิ์ทางชีวภาพ (ตารางที่ 6) การสกัดถูกดำเนินการเป็นสามเท่าสำหรับแต่ละกลุ่ม และทุกการทำซ้ำของสารสกัดถูกวิเคราะห์เป็นสามเท่า

3.3. การสกัดสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพจากสาหร่ายไอซ์แลนด์

การใช้ประโยชน์จากชีวมวลของสาหร่ายขนาดใหญ่ในระดับต่างๆ ได้กระตุ้นให้นักวิทยาศาสตร์สำรวจเทคนิคการสกัดที่เป็นมิตรต่อสิ่งแวดล้อม มีประสิทธิภาพ และคุ้มทุนมากขึ้น โดยใช้วิธีการสกัดที่เป็นมิตรกับสิ่งแวดล้อม ในงานวิจัยนี้ การสกัดด้วย PEF-assisted ถูกประเมินว่าเป็นวิธีที่แปลกใหม่และเป็นมิตรกับสิ่งแวดล้อมในการผลิตสารสกัดที่ใช้งานได้จริง ในขณะที่การสกัดด้วยน้ำร้อนแบบดั้งเดิมถูกนำมาใช้เพื่อการเปรียบเทียบ นอกจากนี้ ยังได้ศึกษาผลของการรวมกันของเทคนิคทั้งสอง, การบำบัดด้วย PEF ของสาหร่ายมาโครตามด้วยการสกัดด้วยน้ำร้อนแบบดั้งเดิม, ต่อการฟื้นตัวของสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพ เนื่องจากคาดว่าจะมีการสร้างอิเล็กโตรโพเรชันในเยื่อหุ้มเซลล์หลังการบำบัดทางกายภาพ การสกัดด้วยน้ำร้อนต่อไปนี้อาจช่วยให้การปลดปล่อยวัสดุภายในเซลล์สะดวกยิ่งขึ้น [86] ซึ่งเพิ่มผลผลิตการสกัด ต้องใช้เวลาหลังการบำบัดสำหรับวัสดุ เพื่อกระจายออกจากเซลล์ [87,88] และในการทดลองนี้ สารแขวนลอยรอข้ามคืนจนกระทั่งแยกของเหลว (สารสกัด)ออกจากเยื่อกระดาษ

ในส่วนของตัวกลางในการสกัดนั้น ใช้น้ำกลั่นเพื่อผลิตสาหร่ายสารสกัดเพื่อเอาชนะข้อจำกัดเกี่ยวกับการใช้สารพิษและตัวทำละลายอินทรีย์ กันน้ำได้ว่าเป็นตัวทำละลายที่ดีสำหรับการสกัดสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพหลายชนิดจากสาหร่ายs [46,89–91] และเป็นมิตรกับสิ่งแวดล้อม นอกจากนี้ น้ำยังมักใช้ในการสกัดด้วย PEF เนื่องจากเป็นตัวนำไฟฟ้าที่ดี

3.3.1. ขั้นตอนการสกัด

สำหรับการทำซ้ำในแต่ละกลุ่มสาหร่ายวินาที (15 กรัม) ถูกแช่ค้างคืนที่อุณหภูมิห้อง (22 ◦C) ในน้ำปราศจากไอออน (300 มล.) จากนั้น สารแขวนลอยถูกบำบัดด้วยPEF (PEF), ให้ความร้อน (HW) หรือทั้งที่บำบัดด้วย PEF และให้ความร้อน (PEF บวก HW) สารแขวนลอยถูกเก็บไว้ในตู้เย็นข้ามคืนตามด้วยการกรองด้วยกระดาษกรองหยาบ (20 µm) จากนั้นสิ่งกรอง (สารสกัด) จะถูกเก็บไว้ที่ 4 ◦C จนกระทั่งมีการวิเคราะห์

การสกัดด้วยสนามไฟฟ้าแบบพัลซิ่งนั้นดำเนินการโดยใช้เครื่องกำเนิดพัลส์ที่สร้างขึ้นภายในองค์กร มีตัวเก็บประจุ FuGHCK-200-2000 (FuG Elektronik GmbH, Rosenheim, Germany) และ spark gap (18.5 kV OG75, Perkin-Elmer Optoelectronics, GMBH, Wiese baden, Germany) อุปกรณ์ PEF สร้างพัลส์การสลายแบบเอ็กซ์โปเนนเชียลด้วยความกว้าง 0.96 µs และแอมพลิจูด 18 kV ห้องบำบัดลูกแก้วที่มีขนาด (ยาว x สูง x กว้าง) 20 × 8 × 2.5 ซม. โดยมีระยะห่างระหว่างอิเล็กโทรดเพลตที่สั้นที่สุด ใช้บำบัดสารแขวนลอยด้วยสนามไฟฟ้า 8 kV/cm ที่ 1.2 Hz เป็นเวลา 10 นาที

สารสกัด HW ถูกเตรียมโดยการให้ความร้อนกับสารแขวนลอยในบีกเกอร์ในอ่างน้ำที่มีอุณหภูมิคงที่และเก็บไว้ที่ 95 ◦C เป็นเวลา 45 นาที สำหรับสนามไฟฟ้าแบบพัลซิ่งแบบรวมและการบำบัดด้วยความร้อน สารแขวนลอยได้รับการบำบัดด้วย PEF แล้วใส่ลงในบีกเกอร์ ให้ความร้อนในอ่างน้ำ และเก็บไว้ที่ 95 ◦C เป็นเวลา 45 นาที

3.3.2. การวัดค่าการนำไฟฟ้า pH และอุณหภูมิ

ค่าการนำไฟฟ้าและ pH ของสารแขวนลอยของสาหร่ายถูกวัดหลังจากการแช่และหลังจากการสกัดที่อุณหภูมิห้อง โดยใช้เครื่องวัดค่า pH (OrionStar™ A215 pH/Conductivity Benchtop Meter, Thermo Scientific, Waltham, MA, USA) ที่ติดตั้งเซ็นเซอร์วัดค่าการนำไฟฟ้าและ อิเล็กโทรดผสม pH/ARC ไตรโอด นอกจากนี้ยังมีการบันทึกการเปลี่ยนแปลงของอุณหภูมิอันเนื่องมาจากการรักษา

3.4. โปรไฟล์สเปกตรัมของสารสกัดจากสาหร่ายทะเล

สเปกตรัมการดูดกลืนแสง UV-VIS ของสารสกัดจากสาหร่ายทะเลต่างๆ ถูกวัดสำหรับช่วง 200 ถึง 450 นาโนเมตร โดยใช้ลำแสงคู่ Thermo Scientific Evolution 350 UV Vis Spectrophotometer (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA, USA) พร้อมควอตซ์คิวเวต 1 ซม. ทำการสแกนสามครั้งสำหรับสารสกัดจากสาหร่ายแต่ละชนิด

3.5. การกำหนดปริมาณโพลีฟีนอลทั้งหมด

ปริมาณฟีนอลิกทั้งหมด (TPC) ในสาหร่ายสารสกัดถูกกำหนดโดยใช้รีเอเจนต์ Folin–Ciocalteu ตามวิธีการดัดแปลงเล็กน้อยที่อธิบายโดย Zhang [92] โดยใช้เครื่องสเปกโตรโฟโตมิเตอร์ Multiskan Sky Microplate (Thermo Fisher Scientific, Waltham, MA,USA) ปริมาตร 20 µL ของสาหร่ายสารสกัดหรือสารละลายมาตรฐานแบบอนุกรมผสมกับสารทำปฏิกิริยา Folin–Ciocalteu 100 ไมโครลิตร (10 เปอร์เซ็นต์ในน้ำกลั่น) หลังจากผ่านไป 5 นาที สารละลายโซเดียม คาร์บอเนต 80 ไมโครลิตรของ 7.5 เปอร์เซ็นต์ (ปริมาตร/น้ำหนัก) ถูกเติม ของผสมของปฏิกิริยาถูกบ่มที่อุณหภูมิห้องและความมืดเป็นเวลา 30 นาที วัดค่าการดูดกลืนแสงที่ความยาวคลื่น 760 นาโนเมตร ใช้น้ำกลั่นเป็นน้ำเปล่า เส้นโค้งมาตรฐานของกรดแกลลิกถูกใช้เพื่อกำหนดปริมาณฟีนอลิกทั้งหมดและแสดงเป็นไมโครกรัมของเทียบเท่ากรดแกลลิก (GAE) ต่อกรัมของวัสดุแห้ง (µg GAE/g dw)

3.6. การหาปริมาณฟลาโวนอยด์ทั้งหมด

ปริมาณฟลาโวนอยด์ทั้งหมด (TFC) ในสาหร่ายสารสกัดถูกกำหนดโดยวิธีการที่อธิบายโดย Kamtekar [93] และปรับให้เข้ากับ 96-ไมโครเพลทแบบหลุม โดยสรุป ปริมาตรของสารสกัดจากสาหร่ายทะเล 25 ไมโครลิตรหรือสารละลายมาตรฐานแบบอนุกรมถูกผสมกับโซเดียมไนไตรต์ 100 ไมโครลิตร(0.375 เปอร์เซ็นต์โดยน้ำหนัก/ปริมาตร) หลังจากผ่านไป 5 นาที อะลูมิเนียมคลอไรด์ 25 ไมโครลิตร (3 เปอร์เซ็นต์โดยน้ำหนัก/ปริมาตร) ถูกเติมไปยังของผสมและบ่มเป็นเวลา 6 นาทีที่อุณหภูมิห้อง จากนั้น 100 ไมโครลิตรของโซเดียมไฮดรอกไซด์ (2 เปอร์เซ็นต์โดยน้ำหนัก) ถูกเติมไปยังของผสมและผสม ทันที วัดค่าการดูดกลืนแสงที่ความยาวคลื่น 510 นาโนเมตร ใช้น้ำกลั่นและเอทานอลเป็นน้ำเปล่า เส้นโค้งมาตรฐานของเควอซิทิน (ละลายในเอทานอล) ถูกใช้เพื่อกำหนดปริมาณฟีนอลิกทั้งหมดและแสดงเป็นไมโครกรัมของเทียบเท่าเควอซิทิน (QE) ต่อกรัมของวัสดุแห้ง (ไมโครกรัม QE/กรัม dw)

3.7. การกำหนดปริมาณคาร์โบไฮเดรต

ปริมาณน้ำตาลอิสระถูกวัดตามวิธีการที่อธิบายโดย [94] โดยมีการดัดแปลงเล็กน้อย สารละลายฟีนอล 50 ไมโครลิตร (4 เปอร์เซ็นต์) และกรดซัลฟิวริก 250 ไมโครลิตร(96 เปอร์เซ็นต์ ) ถูกเติมลงใน 100 ไมโครลิตรของตัวอย่างหรือสารละลายมาตรฐาน หลังจากการบ่ม 10 นาทีที่อุณหภูมิห้อง อ่านค่าการดูดกลืนแสงของของผสมที่ 490 นาโนเมตร เส้นโค้งมาตรฐานของกลูโคสถูกใช้เพื่อกำหนดปริมาณคาร์โบไฮเดรตทั้งหมดและแสดงเป็นมิลลิกรัมเทียบเท่าของกลูโคส (GluE) ต่อกรัมของวัสดุแห้ง (มก. GluE/g dw)

3.8. คุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดจากสาหร่ายทะเล

3.8.1. 2,2 ไดฟีนิล-1-พิคริลไฮดราซิล (DPPH) การทดสอบการกำจัดอนุมูลอิสระ

ดิสารต้านอนุมูลอิสระกิจกรรม (DPPH) ของสาหร่ายสารสกัดถูกกำหนดตามวิธีการที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ [94] โดยมีการปรับเปลี่ยนบางอย่าง โดยย่อ สารละลาย DPPH 200 ไมโครลิตร 10.825 × 10−5 โมลาร์ถูกเติมไปยัง 100 ไมโครลิตรของตัวอย่าง (1:1 ในเมทานอล) ในเพลต96-หลุม ปริมาตรเดียวกันของ DPPH ถูกผสมกับมาตรฐาน 50 ไมโครลิตร บวกกับเมทานอล 50 ไมโครลิตร จากนั้นตัวอย่างและสารมาตรฐานถูกบ่มในที่มืดที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 30 นาที วัดค่าการดูดกลืนแสงที่ความยาวคลื่น 517 นาโนเมตร น้ำกลั่นถูกใช้เป็นน้ำเปล่า ความสามารถในการกำจัดอนุมูล DPPH คำนวณโดยใช้สมการต่อไปนี้:

ผลการกวาดล้าง ( เปอร์เซ็นต์ )=(1 − (ตัวอย่าง − ตัวอย่างว่างเปล่า)/(ตัวควบคุม − อะเมธานอลว่าง)) × 100 (1)

โดยที่ Acontrol คือค่าการดูดกลืนแสงของชุดควบคุม (สารละลาย DPPH ที่ไม่มีตัวอย่าง) ตัวอย่าง A คือค่าการดูดกลืนแสงของตัวอย่างทดสอบ (สารละลาย DPPH บวกกับตัวอย่างทดสอบ) ตัวอย่างที่ว่างเปล่าคือค่าการดูดกลืนแสงของตัวอย่างเท่านั้น (ตัวอย่างที่ไม่มีสารละลาย DPPH) และเอทานอลเปล่าคือค่าการดูดกลืนแสงของเมทานอลเท่านั้น ทางการค้าสารต้านอนุมูลอิสระs (กรดแอสคอร์บิก, กรดแกลลิก และ -โทโคฟีรอล) ถูกใช้เป็นกลุ่มควบคุมเชิงบวก

cistanche เป็นสารต้านอนุมูลอิสระ

3.8.2. การทดสอบพลังสารต้านอนุมูลอิสระลดเฟอร์ริกไอออน (FRAP)

กิจกรรม FRAP ถูกวัดตามวิธีการของ Benzie และ Strain [95] โดยสรุป บัฟเฟอร์อะซีเตต (300 มิลลิโมลาร์, pH 3.6), 2,4,6-ทริปไพริดิล-เอส-ไตรอะซีน (TPTZ) 10 มิลลิโมลาร์ใน 40 มิลลิโมลาร์, HCl และ FeCl3·6H2O (20 มิลลิโมลาร์) ถูกผสมในอัตราส่วนของ 10:1:1 เพื่อให้ได้ FRAPreagent ที่ใช้งานได้ ของผสมของปฏิกิริยาถูกบ่มที่ 37 ◦C เป็นเวลา 10 นาที ตัวอย่าง 50 ไมโครลิตรจากทุกสารสกัดถูกผสมกับสารละลาย FRAP 150 ไมโครลิตรที่ใช้งานได้เป็นเวลา 8 นาทีที่อุณหภูมิห้อง การดูดกลืนแสงของผลิตภัณฑ์สี Ferrous-TPTZ ถูกวัดที่ความยาวคลื่น 593 นาโนเมตร ค่า FRAP ของสาหร่ายสารสกัดถูกแสดงเป็น µM ของเทียบเท่าโทรลอกซ์ (TE) ต่อกรัมของวัสดุแห้ง

3.8.3. 2,2 อะซิโน-บิส(3-เอทิลเบนโซไทอะโซลีน-6-กรดซัลโฟนิก) (ABTS) การทดสอบ

การวิเคราะห์ดำเนินการโดยใช้โปรโตคอลการลดสี ABTS [76] พร้อมการปรับเปลี่ยนบางอย่าง ไอออนอนุมูลอิสระ ABTS (ABTS. บวก ) ถูกผลิตขึ้นโดยการทำปฏิกิริยา ABTS (66 มก.)ด้วยสารละลายโพแทสเซียม เพอร์ซัลเฟต 10 มล. (2.45 มิลลิโมลาร์) ผสมทิ้งไว้ในอุณหภูมิห้องมืดเป็นเวลา 12-16 ชั่วโมงก่อนใช้งาน เอบีทีเอส. บวกสารละลายถูกเจือจางด้วยน้ำจนถึงการดูดกลืนแสงที่ 0.700 ที่ 734 นาโนเมตร ของผสมของปฏิกิริยา (200 ul) ถูกถ่ายโอนไปยังอะมิโครเพลต, 50 ไมโครลิตรของตัวอย่างถูกเติมและจากนั้น 150 ไมโครลิตรของสารละลายรีเอเจนต์ เขย่าเพลทเป็นเวลา 10 วินาทีที่ความเร็วปานกลาง และวัดค่าการดูดกลืนแสงที่ 734 นาโนเมตร หลังจากการฟักไข่ 5 นาทีที่อุณหภูมิห้อง เส้นโค้งมาตรฐานถูกจัดทำขึ้นโดยการวางแผนการยับยั้ง A734nm ของมาตรฐาน Trolox ตามหน้าที่ของความเข้มข้น Troloxequivalentสารต้านอนุมูลอิสระค่าความจุ (TEAC) ของตัวอย่างคำนวณโดยใช้สมการที่ได้จากการถดถอยเชิงเส้นของเส้นโค้งมาตรฐานที่แทนที่ค่า A734 นาโนเมตรสำหรับแต่ละตัวอย่าง:

TEAC (µM)=(การยับยั้งตัวอย่าง A734nm - การสกัดกั้น)/ความชัน (2)

ดิสารต้านอนุมูลอิสระฤทธิ์ถูกแสดงออกในรูปของความเข้มข้นของ TEAC, µmol/g สาหร่ายน้ำหนักแห้ง

3.9. ฤทธิ์ต้านเอนไซม์ของสารสกัดจากสาหร่าย

3.9.1. การทดสอบการยับยั้งคอลลาเจน

ชุดทดสอบสีสำหรับกิจกรรมคอลลาเจนเนส (MAK293) ที่ซื้อจาก Sigma Aldrich ถูกใช้เพื่อตรวจสอบการยับยั้งคอลลาเจนของสาหร่ายสารสกัด การทำงานของคอลลาเจนเนสที่วัดเป็นชุดโดยใช้เปปไทด์สังเคราะห์ (FALGPA) ที่เลียนแบบโครงสร้างของคอลลาเจน ขั้นตอนดำเนินการตามคำแนะนำของชุดอุปกรณ์

3.9.2. การทดสอบการยับยั้งอีลาสเทส

การยับยั้งอีลาสเทสของสาหร่ายสารสกัดถูกตรวจสอบในสารละลายบัฟเฟอร์ทริสด้วยวิธีการดัดแปลงตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้า [96] โดยสังเขป 100 ไมโครลิตรของสารละลายบัฟเฟอร์ 0.1 โมลาร์ TRIS(pH 8.0) อีลาสเทส 25 ไมโครลิตร (1 U/mL ในบัฟเฟอร์ TRIS) และสารสกัดตัวอย่าง 25 ไมโครลิตร ถูกผสมและบ่มเป็นเวลา 15 นาทีที่ 30 C ก่อนเติมสารตั้งต้นเพื่อเริ่มปฏิกิริยา ภายหลังการบ่ม 50 ไมโครลิตรของสารละลาย AAAPVN 2 มิลลิโมลาร์ถูกเติม จากนั้น ค่าการดูดกลืนแสงที่420 นาโนเมตร ถูกเฝ้าติดตามเป็นเวลา 20 นาทีโดยใช้เครื่องอ่านไมโครเพลทภายใต้อุณหภูมิคงที่ที่ 30 C ในที่สุด การยับยั้งอีลาสเทสถูกคำนวณเป็นเปอร์เซ็นต์โดยใช้สมการ:

เปอร์เซ็นต์การยับยั้ง=[(∆Abs/min control − ∆Abs/min sample)/∆Abs/mincontrol] × 100 (3)

โดยที่ Abscontrol คือการดูดกลืนแสงของการทดสอบโดยใช้บัฟเฟอร์แทนตัวยับยั้ง (ตัวอย่าง) และตัวอย่าง Abs คือการดูดกลืนแสงของสารสกัดตัวอย่าง Quercetin ถูกใช้เป็นบวกการควบคุม ใช้บัฟเฟอร์ TRIS เป็นค่าว่าง

ผลกระทบของสารสกัดจากชะเอม:ต่อต้านริ้วรอย

3.9.3. การทดสอบการยับยั้งไทโรซิเนส

ไทโรซิเนสการทดสอบการยับยั้งถูกดำเนินการตามวิธีการที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้โดย [66] โดยใช้ L-DOPA เป็นสารตั้งต้น ตัวอย่าง 20 ไมโครลิตร เห็ด 10 ไมโครลิตรไทโรซิเนสสารละลาย (50 U/mL ในบัฟเฟอร์ฟอสเฟต) และ 80 ไมโครลิตรของบัฟเฟอร์ฟอสเฟต (pH=6.8) ถูกผสมในไมโครเพลทและบ่มล่วงหน้าที่ 37 ◦C เป็นเวลา 5 นาที จากนั้น 90 ไมโครลิตรของ L-DOPA(2 มก./มล.) ถูกเติม การก่อตัวของโดปาโครมถูกเฝ้าติดตามทันทีเป็นเวลา 20 นาทีที่ 475 นาโนเมตรในเครื่องอ่านไมโครเพลทภายใต้อุณหภูมิคงที่ 37 ◦C เปอร์เซ็นต์การยับยั้งของไทโรซิเนสคำนวณเอนไซม์โดยใช้สมการ:

เปอร์เซ็นต์การยับยั้ง=[(∆Abs/mincontrol − ∆Abs/min sample)/∆Abs/mincontrol] × 100 (4)

โดยที่การควบคุม Abs คือการดูดกลืนแสงของการทดสอบโดยใช้บัฟเฟอร์แทนตัวยับยั้ง (ตัวอย่าง) และตัวอย่าง Abs คือการดูดกลืนแสงของสารสกัดตัวอย่าง เควอซิทินถูกใช้เป็นผลบวกกลุ่มควบคุม บัฟเฟอร์ฟอสเฟตถูกใช้เป็นช่องว่าง

3.9.4. การทดสอบการยับยั้ง Hyaluronidase

กิจกรรมการยับยั้ง Hyaluronidase ถูกวัดตามที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้โดย [66] โดยไม่มีการดัดแปลงเล็กน้อย ปริมาตร 100 µl ของชนิด-1-S bovine testes hyaluronidase (2100 U/mL)ละลายใน 0 1 โมลาร์อะซิเตตบัฟเฟอร์ (pH 3.5) ถูกผสมกับสารสกัด 100 ไมโครลิตรและบ่มที่อุณหภูมิ 37 ◦ซ เป็นเวลา 20 นาที ปริมาตร 200 ไมโครลิตรของแคลเซียมคลอไรด์ 6 มิลลิโมลาร์ถูกเติมไปยังของผสมของปฏิกิริยา จากนั้นของผสมถูกบ่มที่ 37 ◦ซ เป็นเวลา 20 นาที Ca2 บวกกับไฮยาลูโรนิเดสที่ถูกกระตุ้นนี้ถูกบำบัดด้วยโซเดียม ไฮยาลูโรเนต 250 ไมโครลิตร (1.2 มก./มล.) ที่ละลายในบัฟเฟอร์อะซิเตต 0.1 โมลาร์ (pH 3.5) แล้วบ่มในอ่างน้ำที่ 37 ◦ซ เป็นเวลา 40 นาที 50 ไมโครลิตรของโซเดียมไฮดรอกไซด์ 0.9 โมลาร์และโซเดียมบอเรต 0.2 โมลาร์ 100 ไมโครลิตรถูกเติมลงในของผสมของปฏิกิริยาและจากนั้นบ่มในอ่างน้ำเดือดเป็นเวลา 5 นาที หลังจากการทำความเย็นจนถึงอุณหภูมิห้อง สารละลาย ρ-ไดเมทิลอะมิโนเบนซาลดีไฮด์ (DAMB) 250 ไมโครลิตรถูกเติมลงในของผสมของปฏิกิริยา สารละลาย DAMB ถูกเตรียมโดยการละลาย 0.25 gof DAMB ใน 21.88 มล. ของกรดอะซิติก 100 เปอร์เซ็นต์ และ 3.12 มล. ของกรดไฮโดรคลอริก 10N กลุ่มควบคุมถูกบำบัดด้วยน้ำ 100 ไมโครลิตร ร้อยละ 5 ของน้ำแทนการสกัด วัดค่าการดูดกลืนแสงที่ความยาวคลื่น 585 นาโนเมตร หลังจากผ่านไป 45 นาที เปอร์เซ็นต์การยับยั้งเอนไซม์คำนวณโดยใช้สมการต่อไปนี้:

เปอร์เซ็นต์การยับยั้ง=[(Abscontrol − Abssample)/Abscontrol] × 100 (5)

โดยที่การควบคุม Abs คือการดูดกลืนแสงของการทดสอบโดยใช้บัฟเฟอร์แทนตัวยับยั้ง (ตัวอย่าง) และตัวอย่าง Abs คือการดูดกลืนแสงของสารสกัดตัวอย่าง กรดแทนนิกใช้เป็นข้อมูลอ้างอิงมาตรฐาน

3.10. การวิเคราะห์ทางสถิติ

ค่าเฉลี่ยของการวิเคราะห์สามเท่าของสารสกัดทุกชิ้นถูกคำนวณและใช้เพื่อค้นหาค่าเฉลี่ยและส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐานสำหรับแต่ละกลุ่ม (n {{0}}) แบบจำลองเชิงเส้นทั่วไป (GLM) สำหรับปัจจัยคงที่ถูกนำมาใช้ในการประเมินผลกระทบหลักและปฏิกิริยาแบบสองทางของปัจจัยการทดลอง (ชนิดและวิธีการสกัด) ต่อตัวแปรที่วัดได้ นอกจากนี้ การทดสอบ ANOVA และ Tukey–Kramer ยังใช้เพื่อระบุความแตกต่างที่มีนัยสำคัญ (p < 0.05)="" ระหว่างกลุ่ม="" ความสัมพันธ์แบบเพียร์สันใช้ในการประเมินความสัมพันธ์เชิงเส้นระหว่างตัวแปร="" การวิเคราะห์องค์ประกอบหลัก="" (pca)="" ใช้เพื่อตรวจจับโครงสร้างในความสัมพันธ์ระหว่างตัวแปรที่วัดได้กับปัจจัยการทดลอง="" pca="" ลดข้อมูลจำนวนมากให้เป็นชุดเล็กๆ="" ของการรวมเชิงเส้นของตัวแปรที่เกี่ยวข้อง="" (เช่น="" ปัจจัย)="" ตามรูปแบบของความสัมพันธ์ระหว่างตัวแปรดั้งเดิม="" ผลรวมเชิงเส้นแอททริบิวต์ที่เป็นผลลัพธ์สามารถใช้สำหรับการทำโปรไฟล์คุณลักษณะเฉพาะของผลิตภัณฑ์ตามตัวแปรที่ศึกษา="" การวิเคราะห์ทางสถิติทั้งหมดดำเนินการโดยใช้="" ncss="" 2020="" statisticalsoftware="" (2020)="" (ncss,="" llc.,="" kaysville,="" ut,="">

สารสกัดจาก Cistanche ต่อต้านริ้วรอย

4. บทสรุป

ผลลัพธ์ของการทดสอบคัดกรองครั้งแรกนี้แสดงให้เห็นศักยภาพของ Icelandic . สามตัวสาหร่ายโดยการให้ผลที่เป็นประโยชน์อย่างมีประสิทธิผลผ่านหลายช่องทาง วิธีการสีเขียวที่พัฒนาขึ้นโดยใช้สนามไฟฟ้าแบบพัลซิ่งในน้ำแสดงผลลัพธ์ที่คล้ายคลึงกันกับการสกัดน้ำร้อนแบบดั้งเดิม โดยแสดงให้เห็นข้อดีหลายประการ เช่น ลักษณะที่ไม่เป็นความร้อนและเวลาในการสกัดที่สั้นกว่า (10 นาที เทียบกับ 45 นาที) ในบรรดาสาหร่ายทั้ง 3 สายพันธุ์ สาหร่ายสีน้ำตาล A. esculenta มีปริมาณ TPC และ TFC สูงที่สุดเช่นกันสารต้านอนุมูลอิสระความสามารถ นอกจากนี้ สารสกัดจากน้ำ A. esculenta มีฤทธิ์ยับยั้งได้ดีกว่า P. palmaria และ U. lactuca ต่อ collagenase, elastase, tyrosinase และ hyaluronidaseสาหร่ายสายพันธุ์ที่มีฤทธิ์ต้านเอนไซม์ที่ดีเยี่ยมสำหรับใช้ในการฟอกสีผิวต่อต้านริ้วรอยและสุขภาพผิว ที่น่าสนใจคือ ก. สารสกัดจากเอสคูเลนต้าที่ผลิตโดยวิธี PEF แสดงให้เห็นว่าสามารถยับยั้งคอลลาเจนเนสได้ถึง 91 เปอร์เซ็นต์ ซึ่งสูงกว่าฤทธิ์การยับยั้งที่แสดงโดยการสกัดด้วยน้ำร้อนแบบดั้งเดิมและสูงกว่าสารยับยั้งที่มาจากชุดเครื่องมือทางการค้า โดยสรุป การศึกษาเบื้องต้นของเราแนะนำว่า Icelandicสาหร่ายสารสกัดจากสาหร่ายสีน้ำตาล A. esculenta ที่ผลิตโดยการสกัดด้วยสนามไฟฟ้าแบบพัลซิ่งในน้ำเป็นส่วนผสมที่มีศักยภาพในการทำงานซึ่งสามารถใช้เป็นสารออกฤทธิ์สำหรับสูตรเครื่องสำอางและเวชสำอางในอนาคตอันใกล้

อ้างอิง

1. Ariede, MB; แคนดิโด, TM; เจโคม ALM; เวลาสโก, MVR; เดอ การ์วัลโญ เจซีเอ็ม; Baby, AR Cosmetic คุณลักษณะของสาหร่าย—Areview ความละเอียดของสาหร่าย 2017, 25, 483–487. [ข้ามอ้างอิง]

2. มักการ์, HPS; ทราน, จี.; Heuzé, V.; Giger-Reverdin, S.; ผู้เช่า, ม.; Lebas, F.; Ankers, P. สาหร่ายสำหรับอาหารปศุสัตว์: A review.Anim. ฟีดวิทย์ เทคโนโลยี 2016, 212, 1–17. [ข้ามอ้างอิง]

3. โอคอนเนอร์ เจ.; มีนนี่ เอส.; วิลเลียมส์ จอร์เจีย; Hayes, M. การสกัดโปรตีนจากสาหร่ายสี่ชนิดโดยใช้กลยุทธ์ก่อนการบำบัดทางกายภาพที่แตกต่างกันสามแบบ โมเลกุล 2020, 25, 2005. [CrossRef]

4. แม็กซิโม่ พี.; เฟอเรร่า LM; บรังโก, พี.; ลิมา, พี.; Lourenço, A. เมตาโบไลต์ทุติยภูมิและกิจกรรมทางชีวภาพของ Macroalgae ที่รุกรานของยุโรปใต้ มี.ค. ยาเสพติด 2018, 16, 265. [CrossRef]

5. Barkia, I.; ซารี, น.; Manning, SR Microalgae สำหรับผลิตภัณฑ์ที่มีมูลค่าสูงต่อสุขภาพและโภชนาการของมนุษย์ มี.ค. ยาเสพติด 2019,17, 304. [CrossRef]

6. Gomez-Zavaglia, A.; Prieto Lage, แมสซาชูเซตส์; จิเมเนซ-โลเปซ, C.; เมจูโตะ เจซี; Simal-Gandara, J. ศักยภาพของสาหร่ายในฐานะแหล่งที่มาของส่วนผสมเชิงหน้าที่ของคุณค่าพรีไบโอติกและสารต้านอนุมูลอิสระ สารต้านอนุมูลอิสระ 2019, 8, 406. [CrossRef] [PubMed]

7. Salehi, B.; ชาริฟี-ราด เจ.; เซก้า, เอเอ็มแอล; ปิ่นโต, DCGA; มิชาลัก, ไอ.; Tricone, A.; มิศรา, AP; นิกาม, ม.; แซม, ว.; Martins, N.Current Trends on Seaweeds: การดูองค์ประกอบทางเคมี Phytopharmacology และการประยุกต์ใช้เครื่องสำอาง โมเลกุล2019, 24, 4182. [CrossRef]

8. Ghazali, E.; เร็วๆ นี้ พีซี; มูทัม, DS; Nguyen, B. สุขภาพและเครื่องสำอาง: สำรวจคุณค่าของผู้บริโภคในการซื้อผลิตภัณฑ์ดูแลส่วนบุคคลแบบออร์แกนิก เจ. ขายปลีก. บริโภค เสิร์ฟ 2017, 39, 154–163. [ข้ามอ้างอิง]

9. แอมเบิร์ก N.; Fogarassy, ​​C. พฤติกรรมผู้บริโภคสีเขียวในตลาดเครื่องสำอาง แหล่งข้อมูล 2019, 8, 137. [CrossRef]

10. Pereira, L. Seaweeds เป็นแหล่งของสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพและการบำบัดด้วยการดูแลผิว—Cosmeceuticals, Algotheraphy และ Thalassotherapy เครื่องสำอาง 2018, 5, 68. [CrossRef]

11. มาร์ตินส์ เอ.; วิเอร่า, เอช.; กัสปาร์, เอช.; Santos, S. วางตลาดผลิตภัณฑ์จากธรรมชาติทางทะเลในอุตสาหกรรมยาและเวชสำอาง: เคล็ดลับสู่ความสำเร็จ มี.ค. ยาเสพติด 2014, 12, 1066–1101. [CrossRef] [PubMed]

12. Agatonovic-Kustrin, S.; Morton, D. Cosmeceuticals ที่ได้จากสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพที่พบในสาหร่ายทะเล สมุทรศาสตร์ 2013,1, 106.

13. วัง, H.-MD; เฉิน, C.-C.; Huynh, P.; ช้าง, เจ.-เอส. สำรวจศักยภาพการใช้สาหร่ายในเครื่องสำอาง ไบโอรีซอร์ เทคโนโลยี 2015,184, 355–362. [ข้ามอ้างอิง]

14. Jahan, A.; อาหมัด IZ; ฟาติมา, N.; อันซารี เวอร์จิเนีย; Akhtar, J. Algal สารประกอบออกฤทธิ์ทางชีวภาพในอุตสาหกรรมเวชสำอาง: การทบทวน Phycologia 2017, 56, 410–422 [ข้ามอ้างอิง]

15. โมโรน เจ.; Alfeus, A.; Vasconcelos, V.; Martins, R. การเปิดเผยศักยภาพของไซยาโนแบคทีเรียในเครื่องสำอางและเวชสำอาง—แนวทางออกฤทธิ์ทางชีวภาพแบบใหม่ ความละเอียดของสาหร่าย 2019, 41, 101541. [ข้ามอ้างอิง]

16. Cikoš, A.-M.; Jerkovi'c, I.; โมลนาร์, ม.; ซูบารีค, D.; Joki´c, S. เทรนด์ใหม่สำหรับการใช้งานผลิตภัณฑ์ธรรมชาติจากสาหร่ายขนาดใหญ่ แนท. ความละเอียด 2019, 37, 1–12. [ข้ามอ้างอิง]

17. ทริง TS; ฮิลี พี.; Naughton, DP Anti-collagenase, anti-elastase และฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดจากพืช 21 ชนิด บีเอ็มซีคอมพลีเมนต์ ทางเลือก เมดิ. 2552, 9, 27. [ข้ามอ้างอิง]

18. เจคอบเซ่น ซี.; Sørensen, น.; โฮลท์, SL; อาโกห์ ซีซี; Hermund, แหล่งที่มาของ DB, การสกัด, การแสดงคุณลักษณะ และการประยุกต์ใช้สารต้านอนุมูลอิสระชนิดใหม่จากสาหร่ายทะเล อันนุ. รายได้วิทยาศาสตร์อาหาร. เทคโนโลยี 2019, 10, 541–568. [ข้ามอ้างอิง]

19. Castejón, N.; Señoráns, FJ การสกัดพร้อมกันและการแยกส่วนของโอเมก้า-3 acylglycerols และ glycolipids จากชีวมวลเปียกไมโครอัลกัลของ Nannochloropsis gaditana โดยใช้ของเหลวที่มีแรงดัน ความละเอียดของสาหร่าย 2019, 37, 74–82. [ข้ามอ้างอิง]

20. โมฮาเหม็ด กฟน.; Eissa, AHA สนามไฟฟ้าพัลซิ่งสำหรับเทคโนโลยีการแปรรูปอาหาร โครงสร้าง. ฟังก์ชัน อาหาร Eng. 2012, 11, 275–306.

21. Geada, P.; โรดริเกส, อาร์.; Loureiro, L.; Pereira, R.; เฟอร์นันเดส, บี.; Teixeira, JA; Vasconcelos, V.; Vicente, AA Electrotechnologies นำไปใช้กับเทคโนโลยีชีวภาพ microalgal—การใช้งาน เทคนิค และแนวโน้มในอนาคต ต่ออายุ. ยังชีพประคับประคอง. การหมุนรอบพลังงาน 2018, 94, 656–668.[CrossRef]

22. ปูจารี MM; บาร์บา, เอฟเจ; Aliakbarian, บี.; Donsì, F.; Pataro, G.; ดิแอส ดา; Juliano, P. นวัตกรรมเทคโนโลยีทางเลือกในการสกัดแคโรทีนอยด์จากสาหร่ายขนาดเล็กและสาหร่าย มี.ค. ยา 2016, 14, 214. [CrossRef] [PubMed]

23. Vorobiev, E.; Lebovka, N. 2— การสกัดจากอาหารและวัสดุชีวภาพที่ได้รับการปรับปรุงโดยพลังงานไฟฟ้าพัลซิ่ง ในนวัตกรรมเทคโนโลยีการแปรรูปอาหาร Knoerzer, K. , Juliano, P. , Smithers, G. , Eds.; สำนักพิมพ์ Woodhead: Sawston, UK, 2016; น. 31–56.

24. Käferböck, A.; Smetana, S.; เดอโวส, R.; ชวาร์ซ, C.; Toepfl, S.; Parniakov, O. การสกัดส่วนประกอบที่มีคุณค่าอย่างยั่งยืนจากสาหร่ายเกลียวทองโดยใช้เทคโนโลยีสนามไฟฟ้าแบบพัลซิ่ง ความละเอียดของสาหร่าย 2020, 48, 101914. [ข้ามอ้างอิง]

25. Parniakov, O.; บาร์บา, เอฟเจ; Grimi, N.; มาร์แชล, L.; จูโบ, เอส.; Lebovka, N.; Vorobiev, E. สนามไฟฟ้าพัลซิ่งช่วยสกัดสารประกอบที่มีคุณค่าทางโภชนาการจากสาหร่ายขนาดเล็ก Nannochloropsis spp. โดยใช้ส่วนผสมไบนารีของตัวทำละลายอินทรีย์และน้ำ. อาหารวิทย์. เกิดใหม่ เทคโนโลยี 2015, 27, 79–85. [ข้ามอ้างอิง]

26. Scherer, D.; ครัส, D.; เฟรย์, ว.; มูลเลอร์, จี.; นิค, พี.; Gusbeth, C. การกู้คืนโปรตีนโดยใช้สนามไฟฟ้าแบบพัลซิ่ง (PEF) จาก ChlorellaVulgaris เป็นสื่อกลางโดยกระบวนการของเอนไซม์หลังจากการตายของเซลล์ ความละเอียดของสาหร่าย 2019, 41, 101536. [ข้ามอ้างอิง]

27. Naseri, A.; มาริญโญ่ GS; โฮลท์, SL; บาร์เตลา เจเอ็ม; Jacobsen, C. การสกัดด้วยเอนไซม์ช่วยและการกำหนดคุณลักษณะของโปรตีนจากสาหร่ายสีแดง Palmaria Palmitate ความละเอียดของสาหร่าย 2020, 47, 101849. [ข้ามอ้างอิง]

ข้าม

28. โรบิน เอ.; คาซีร์, ม.; กระสอบ, ม.; อิสราเอล, A.; เฟรย์, ว.; มูลเลอร์, จี.; ลิฟนีย์ YD; Golberg, A. Functional Protein Concentrates ที่สกัดจาก Green Marine Macroalga Ulva sp. โดยสนามไฟฟ้าแรงสูงพัลซิ่งและเครื่องอัดทางกล เอซีเอส ความยั่งยืน เคมี. อังกฤษ.2018, 6, 13696–13705. [ข้ามอ้างอิง]

29. Einarsdóttir, R.; Þórarinsdóttir, แคลิฟอร์เนีย; Aðalbjörnsson, BV; Guðmundsson, M.; Marteinsdóttir, G.; Kristbergsson, K. ผลของพารามิเตอร์การบำบัดด้วยสนามไฟฟ้าช่วยพัลส์ต่อการสกัดน้ำอย่างหยาบของ Laminaria digitata เจ. แอพพ์. ไฟคอล 2564, 33,3287–3296. [ข้ามอ้างอิง]

30. Postma, ประชาสัมพันธ์; Cerezo-Chinarro, O.; อัคเคอร์แมน อาร์เจ; Olivieri, G.; Wijffes, RH; บรันเดนบูร์ก วอชิงตัน; Eppink, MHM Biorefinery ของสาหร่ายขนาดใหญ่ Ulva Lactuca: การสกัดโปรตีนและคาร์โบไฮเดรตโดยการสลายตัวเล็กน้อย เจ. แอพพ์. ไฟคอล 2018, 30, 1281–1293.[ข้ามอ้างอิง]

31. ซบินเดน เอ็มดีเอ; สตอร์ม, BSM; นอร์ด, RD; แครี่, WJ; มัวร์, ดี.; ชิโนเกิล, เอช.; Stagg-Williams, SM สนามไฟฟ้าพัลซิ่ง (PEF) เป็นการปรับสภาพแบบเข้มข้นสำหรับการสกัดไขมันด้วยตัวทำละลายที่เป็นมิตรต่อสิ่งแวดล้อมจากสาหร่ายขนาดเล็ก เทคโนโลยีชีวภาพ เบียง. 2013, 110, 1605–1615.[ข้ามอ้างอิง]

32. ซิลฟ์, ก.; ปาปาคริสตู ฉัน; Wüstner, R.; Sträßner, R.; Schirmer, ม.; Leber, K.; Guo, B.; Interrante, L.; Posten, C.; Frey, W. การสกัดไขมันจาก microalga Auxenochlorella protothecoides แบบเปียกโดยใช้การบำบัดด้วยสนามไฟฟ้าแบบพัลซิ่งและการผสมเอธานอล - เฮกเซน AlgalRes. 2018, 29, 212–222. [ข้ามอ้างอิง]

33. จิตตพันธุ์, ส.; จอนเจริญ, วี.; คุ้มรังษี, ก.; เจริญรัตน์ T. C-phycocyanin สกัดจาก cyanobacteria น้ำจืด 2 ชนิดโดยวิธี freeze-thaw และ pulsed electric field เพื่อปรับปรุงประสิทธิภาพการสกัดและความบริสุทธิ์ ความละเอียดของสาหร่าย 2020, 46, 101789. [ข้ามอ้างอิง]

34. อารีย์ ANA; Agyei, D.; Akanbi, TO การกู้คืนและการใช้ผงสีสาหร่ายในการแปรรูปอาหาร สกุลเงิน ความคิดเห็น อาหารวิทย์.2018, 19, 113–119. [ข้ามอ้างอิง]

35. โนวัคกา, ม.; Tappi, S.; วิกเตอร์, ก.; Rybak, K.; Miszczykowska, A.; Czyzewski, J.; Drozdzal, K.; Witrowa-ราชเชิร์ต, D.; Tylewicz, ยู. ผลกระทบของสนามไฟฟ้าพัลซิ่งต่อการสกัดสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพจากบีทรูท อาหาร 2019, 8, 244. [CrossRef]

36. มาร์ติเนซ เจเอ็ม; เดลโซ, C.; อัลวาเรซ, I.; Raso, J. Pulsed การสกัดสารประกอบที่มีคุณค่าจากจุลินทรีย์โดยใช้สนามไฟฟ้าช่วย Pulsed Comprehend รายได้วิทยาศาสตร์อาหาร. อาหารปลอดภัย 2020, 19, 530–552. [ข้ามอ้างอิง]

37. Pataro, G.; Goettel, ม.; Straessner, R.; กัสเบธ, C.; เฟอร์รารี, จี.; Frey, W. ผลของการรักษา PEF ต่อการสกัดสารประกอบที่มีคุณค่าจาก microalgae C. vulgaris เคมี. อังกฤษ ทรานส์ 2017, 57, 67–72.

38. บรันตัน NP; Luengo, E. สนามไฟฟ้าพัลซิ่งสำหรับการสกัดเมตาโบไลต์ทุติยภูมิจากพืช. ในสนามไฟฟ้าพัลซิ่งสำหรับการสกัดเมตาโบไลต์ทุติยภูมิออกจากพืช Miklavcic, D. , Ed.; Springer International Publishing: Cham, สวิตเซอร์แลนด์, 2017;pp. 1–15.

39. Schiener, P.; สีดำ, KD; สแตนลีย์, มิสซิสซิปปี; Green, DH ความผันแปรตามฤดูกาลในองค์ประกอบทางเคมีของสาหร่ายทะเลLaminaria digitata, Laminaria hyperborea, Saccharina latissima และ Alaria esculenta เจ. แอพพ์. ไฟคอล 2015, 27, 363–373. [ข้ามอ้างอิง]

40. ซัลกาโด LT; Tomazetto, R.; Cinelli, LP; Farina, ม.; Filho, GMA อิทธิพลของสาหร่ายสีน้ำตาล alginates ต่อความสามารถของสารประกอบฟีนอลในการดูดกลืนรังสีอัลตราไวโอเลตในหลอดทดลอง บราซ. เจ. โอเชียโนก. 2550, 55, 145–154. [ข้ามอ้างอิง]

41. Orfanoudaki, M.; Hartmann, A.; คาร์สเทน ยู.; Ganzera, M. การทำโปรไฟล์ทางเคมีของกรดอะมิโนคล้าย mycosporine ในสาหร่ายยี่สิบสามชนิด เจ. ไฟคอล. 2019, 55, 393–403. [ข้ามอ้างอิง]

42. Pangestuti, R.; เซียฮาน EA; คิม, เอส.เค. สารป้องกันแสงที่ได้จากสาหร่ายทะเล มี.ค. ยาเสพติด 2018, 16, 399.[CrossRef] [PubMed]

43. Schneider, G.; ฟิเกโร ฟลอริดา; เวก้า เจ.; ชาเวส, พี.; อัลวาเรซ-โกเมซ, F.; Korbee, N.; Bonomi-Barufi, J. คุณสมบัติการป้องกันแสงของสิ่งมีชีวิตสังเคราะห์แสงในทะเลที่ปลูกในพื้นที่ที่ได้รับรังสีอัลตราไวโอเลตสูง: การใช้งานด้านเวชสำอาง ความละเอียดของสาหร่าย 2020,49, 101956. [ข้ามอ้างอิง]

44. นิชิดะ วาย.; คุมะไก, Y.; มิชิบะ, S.; ยาซุย, เอช.; Kishimura, H. การสกัดอย่างมีประสิทธิภาพและความสามารถในการต้านอนุมูลอิสระของกรด Mycosporine-LikeAmino จาก Red Alga Dulse Palmaria Palmitate ในญี่ปุ่น มี.ค. ยาเสพติด 2020, 18, 502. [CrossRef] [PubMed]

45. Rehm, E.; ดัลกลิช, เอฟ.; Huot, ม.; Matteoli, S.; Archambault, P.; แลมเบิร์ต Girard, S.; Piche, ม.; Lagunas-Morales, J. การเปรียบเทียบเทคนิค LiDAR ในการดูดกลืนแสงและดิฟเฟอเรนเชียลสำหรับการตรวจจับชีวมวลของสาหร่ายด้วยการนำไปใช้กับพื้นผิวอาร์กติก การตรวจจับและตรวจสอบ InOcean X; สมาคมระหว่างประเทศด้านทัศนศาสตร์และโฟโตนิกส์: Bellingham, WA, USA, 2018; เล่ม 10631,หน้า. 106310Z.

46. ​​วังต.; Jonsdottir, R.; Ólafsdóttir, G. สารประกอบฟีนอลิกทั้งหมด, การกำจัดอนุมูลอิสระและการกำจัดโลหะของสารสกัดจากสาหร่ายทะเลไอซ์แลนด์. เคมีอาหาร. 2552, 116, 240–248. [ข้ามอ้างอิง]

47. เบดูซ์, จี.; ฮาร์ดูอิน K.; เบอร์โล, AS; Bourgougnon, N. บทที่สิบสอง—ส่วนประกอบทางชีวภาพจากสาหร่าย: การประยุกต์ใช้เครื่องสำอางและการพัฒนาในอนาคต ในความก้าวหน้าในการวิจัยทางพฤกษศาสตร์; Bourgougnon, N. , เอ็ด.; สื่อวิชาการ: Cambridge, MA, USA, 2014; เล่มที่ 71 หน้า 345–378.

48. โรลดา MY; Marfaing, H.; Desnica, N.; Jónsdóttir, R.; Skjermo, เจ.; รีบอร์ส, C.; Nitschke, U. การเปลี่ยนแปลงของปริมาณโพลีฟีนอลและโลหะหนักของสิ่งมีชีวิตต่อหน่วยพื้นที่ของสาหร่ายที่เก็บเกี่ยวตามธรรมชาติและที่เพาะปลูก: การประเมินความเสี่ยงด้านสุขภาพและความหมายสำหรับการประยุกต์ใช้อาหาร การควบคุมอาหาร 2019, 95, 121–134. [ข้ามอ้างอิง]

49. Ummat, V.; ติวารี BK; ไจสวาล อลาสกา; Condon, K.; การ์เซีย-วาเกโร, ม.; โอโดเฮอร์ตี้ เจ.; โอดอนเนลล์ ซี.; Rajauria, G. การเพิ่มประสิทธิภาพของความถี่อัลตราซาวนด์ เวลาในการสกัดและตัวทำละลายสำหรับการกู้คืนโพลีฟีนอล ฟลอโรแทนนิน และฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระที่เกี่ยวข้องจากสาหร่ายสีน้ำตาล มี.ค. ยาเสพติด 2020, 18, 250. [CrossRef]

50. Afonso, C.; มาทอส เจ.; กวาร์ดา ฉัน.; Gomes-Bispo, A.; โกเมส, อาร์.; คาร์โดโซ, ซี.; Gueifão, S.; เดลกาโด, ฉัน.; โคเอลโญ, ฉัน.; Castanheira, ฉัน.; et al. ศักยภาพทางชีวภาพและคุณค่าทางโภชนาการของ Alaria esculenta และ Saccharina latissima เจ. แอพพ์. ไฟคอล 2021, 33, 501–513. [ข้ามอ้างอิง]

51. โคตัส เจ.; ลีอันโดร, ก.; มอนเตโร, พี.; ปาเชโก้, ดี.; ฟิเกรินญา, A.; กอนซาลเวส, AMM; ดาซิลวา, จีเจ; Pereira, L. สาหร่ายฟีนอล:จากการสกัดสู่การใช้งาน. มี.ค. ยาเสพติด 2020, 18, 384. [CrossRef]

52. ฟ้าสาท, ม.; Khavari-Nejad, RA; นาบาวี เอสเอ็ม; Namjooyan, F. กิจกรรมต้านอนุมูลอิสระ, สารฟีนอลทั้งหมดและเนื้อหาฟลาโวนอยด์ของสาหร่ายสีเขียวที่กินได้บางส่วนจากชายฝั่งทางเหนือของอ่าวเปอร์เซีย IJPR 2014, 13, 163–170. [ผับเมด]

53. มณีวรรณนันท์, ก.; ธีรุมารัน, จี.; เทพ GK; อนันตรามัน, ป.; Balasubramanian, T. องค์ประกอบใกล้เคียงของสาหร่ายกลุ่มต่าง ๆ จากน่านน้ำชายฝั่งเวดาลัย (อ่าวมันนาร์): ชายฝั่งตะวันออกเฉียงใต้ของอินเดีย ตะวันออกกลาง เจ. วิทย์. ความละเอียด 2552, 4, 72–77.

54. Mišurcová, L.; Škrovánková, S.; เสมก, ด.; Ambrožová, J.; Mach ˚u, L. บทที่ 3 - ประโยชน์ด้านสุขภาพของสาหร่ายโพลีแซคคาไรด์ในโภชนาการมนุษย์ ความก้าวหน้าในการวิจัยอาหารและโภชนาการ เฮนรี่ เจ. เอ็ด.; สื่อวิชาการ: Cambridge, MA, USA, 2012; เล่มที่ 66 หน้า 75–145.

55. ลาฟาร์กา, ต.; Acién-Fernández, FG; Garcia-Vaquero, M. เปปไทด์และคาร์โบไฮเดรตที่ออกฤทธิ์ทางชีวภาพจากสาหร่ายสำหรับการใช้งานในอาหาร: การเกิดขึ้นตามธรรมชาติ การแยก การทำให้บริสุทธิ์ และการระบุ ความละเอียดของสาหร่าย 2020, 48, 101909. [ข้ามอ้างอิง]

56. Mutripah, S.; เมนิตา, MDN; คัง, เจ.-วาย.; จอง, G.-T.; ซูซานโต เอบี; ปราโบโว RE; หง, ย.-เค. การผลิตไบโอเอธานอลจากไฮโดรไลเสตของ Palmaria palmata โดยใช้กรดซัลฟิวริกและการหมักด้วยยีสต์ของผู้ผลิตเบียร์ เจ. แอพพ์. ไฟคอล 2014, 26, 687–693.[ข้ามอ้างอิง]

57. โดมิงเกซ, เอช.; Loret, EP Ulva lactuca ที่มาของปัญหาและความมั่งคั่งที่อาจเกิดขึ้น มี.ค. ยาเสพติด 2019, 17, 357. [CrossRef]

58. คิดเกล เจที; แม็กนัสสัน, ม.; เดอ Nys, R.; Glasson, CRK Ulvan: การทบทวนการสกัด องค์ประกอบ และการทำงานอย่างเป็นระบบAlgal Res. 2019, 39, 101422. [ข้ามอ้างอิง]

59. ฮาบีบุลเลาะห์ เอสเอฟเค; Alagarsamy, S.; อาร์นัส, ก.; Jacobsen, C. การสกัดด้วยเอนไซม์ของสารต้านอนุมูลอิสระจากสาหร่ายเดนมาร์กและการกำหนดลักษณะของหลักการออกฤทธิ์ ความละเอียดของสาหร่าย 2564 56 102292 [ข้ามอ้างอิง]

60. หยวน, วาย.; จางเจ.; แฟน, เจ.; คลาร์ก เจ.; เชน, พี.; หลี่, วาย.; Zhang, C. การสกัดสารประกอบฟีนอลิกโดยใช้ไมโครเวฟช่วยจากสาหร่ายสีน้ำตาลสี่ชนิดทางเศรษฐกิจและการประเมินฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและผลการยับยั้งต่อ -อะไมเลส, -กลูโคซิเดส, ไลเปสตับอ่อนและไทโรซิเนส อินเตอร์ ความละเอียดของอาหาร จ. 2018, 113, 288–297. [ข้ามอ้างอิง]

61. โบอา EM; คอนเด อี.; มัวร์ เอ.; Falque, E.; Domínguez, H. คุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระในหลอดทดลองของสารสกัดหยาบและสารประกอบจากสาหร่ายสีน้ำตาล เคมีอาหาร. 2013, 138, 1764–1785. [ข้ามอ้างอิง]

62. Kainama, H.; Fatmawati, S.; ซานโตโซ, ม.; ปาปิลยา PM; Ersam, T. ความสัมพันธ์ของการขจัดอนุมูลอิสระและปริมาณฟีนอลิแคนด์ฟลาโวนอยด์ทั้งหมดของ Garcinia lasoar PAM เภสัช. เคมี. จ. 2020, 53, 1151–1157. [ข้ามอ้างอิง]

63. แดง TT; Van Vuong, คิว; ชไรเดอร์, เอ็มเจ; โบว์เยอร์ เอ็มซี; แวน อัลเทน่า ไอโอวา; Scarlett, CJ Optimization ของเงื่อนไขการสกัดด้วยอัลตราซาวนด์ช่วยสำหรับเนื้อหาฟีนอลและกิจกรรมต้านอนุมูลอิสระของสาหร่าย Hormosira banksii โดยใช้วิธีการตอบสนองพื้นผิว เจ. แอพพ์. ไฟคอล 2017, 29, 3161–3173. [ข้ามอ้างอิง]

64. Couteau, C.; Coiffard, L. บทที่ 14— การประยุกต์ใช้สาหร่ายในเครื่องสำอาง ในสาหร่ายเพื่อสุขภาพและการป้องกันโรค; Fleurence, J., Levine, I. , Eds.; สื่อวิชาการ: ซานดิเอโก, แคลิฟอร์เนีย, สหรัฐอเมริกา, 2016; หน้า 423–441.

65. สึคาฮาระ เค; ทาเคมะ Y.; โมริวากิ, S.; Tsuji, N.; ซูซูกิ วาย.; ฟูจิมูระ, ต.; Imokawa, G. การยับยั้งการคัดเลือกของผิวหนัง FibroblastElastase กระตุ้นการป้องกันที่ขึ้นอยู่กับความเข้มข้นของการเกิดริ้วรอยที่เกิดจากรังสีอัลตราไวโอเลต เจ. อินเวสติก. เดอร์มาทอล 2544,117, 671–677. [ข้ามอ้างอิง]

66. Liyanaarachchi, GD; สมรเศรษฐเคระ, JKRR; มหานามะ, KRR; Hemalal, KDP Tyrosinase, elastase, hyaluronidase, ฤทธิ์ยับยั้งและสารต้านอนุมูลอิสระของพืชสมุนไพรศรีลังกาสำหรับเวชสำอางใหม่ Ind. พืชผล Prod. 2018, 111, 597–605. [ข้ามอ้างอิง]

67. คุปตะ PL; ราชบัต, ม.; โอซ่า, ต.; Trivedi, U.; Sanghvi, G. ความโดดเด่นของผลิตภัณฑ์จุลินทรีย์ในอุตสาหกรรมเครื่องสำอาง แนท. Prod.Bioprospect. 2019, 9, 267–278. [CrossRef] [PubMed]

68. Zolghadri, S.; Bahrami, A.; ฮัสซันข่าน มอนแทนา; Muñoz-Munoz, เจ.; การ์เซีย-โมลินา, เอฟ.; การ์เซีย-คาโนวาส, เอฟ.; Saboury, AA การทบทวนอย่างครอบคลุมเกี่ยวกับสารยับยั้งไทโรซิเนส เจ. เอ็นไซม์ อินฮิบ. เมดิ. 2019, 34, 279–309. [ข้ามอ้างอิง]

69. Couteau, C.; Coiffard, L. Phycocosmetics และเครื่องสำอางทางทะเลอื่น ๆ เครื่องสำอางเฉพาะสูตรโดยใช้ทรัพยากรทางทะเลมี.ค. ยาเสพติด 2020, 18, 322. [CrossRef]

70. ส่าหรี DM; อันวาร์ อี.; ฤทธิ์ของ Arifianti, AE Antioxidant และ tyrosinase inhibitor ของสารสกัดจากเอธานอลของสาหร่ายสีน้ำตาล (Turbinaria conoides) เป็นส่วนผสมที่ให้ความกระจ่าง เภสัช. จ. 2019, 11, 379–382. [ข้ามอ้างอิง]

71. เบรนเนอร์, ม.; การได้ยิน วีเจ บทบาทการป้องกันของเมลานินต่อการทำลายของรังสียูวีในผิวหนังของมนุษย์ โฟโตเคม. โฟโตไบโอล 2551, 84,539–549. [CrossRef] [PubMed]

72. ลี SY; แบค, น.; น้ำ, ที.จี. สารยับยั้งไทโรซิเนสธรรมชาติ กึ่งสังเคราะห์ และสังเคราะห์ เจ. เอ็นไซม์ อินฮิบ. เมดิ. เคมี. 2559, 31,1–13. [CrossRef] [PubMed]

73. Ferreres, F.; โลเปส, จี.; Gil-Izquierdo, A.; Andrade, PB; ซูซา, ค.; มูก้า, ต.; Valentão, P. Phlorotannin สกัดจาก Fucales มีลักษณะเฉพาะโดย HPLC-DAD-ESI-MSn: เข้าใกล้ความสามารถในการยับยั้ง Hyaluronidase และคุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระ มี.ค. ยา 2012, 10, 2766–2781 [CrossRef] [PubMed]

74. Fayad, S.; Nehmé, R.; ผิวแทน, ม.; เลสลิเยร์ อี.; พิชญ์, ค.; Morin, P. Macroalga Padina pavonica สารสกัดจากน้ำที่ได้จากการสกัดด้วยของเหลวด้วยแรงดันและการสกัดด้วยไมโครเวฟช่วยยับยั้งการทำงานของ hyaluronidase ดังที่แสดงโดย capillary electrophoresis.J. โครมาโตก. A 2017, 1497, 19–27. [CrossRef] [PubMed]

75. Athukorala, Y.; คิม, K.-N.; จอน, Y.-J. คุณสมบัติต้านการเพิ่มจำนวนและต้านอนุมูลอิสระของเอนไซม์ไฮโดรไลเสตจากสาหร่ายสีน้ำตาล Ecklonia cava เคมีอาหาร. ท็อกซิคอล 2549, 44, 1065–1074. [ข้ามอ้างอิง]

76. Jiménez-Escrig, A.; Gómez-Ordóñez, E.; Rupérez, P. Brown และสาหร่ายสีแดงเป็นแหล่งที่มีศักยภาพของสารต้านอนุมูลอิสระ nutraceuticals.J. แอปพลิเคชัน ไฟคอล 2555, 24, 1123–1132. [ข้ามอ้างอิง]

77. กรวิตา ร.; ศิริวัฒนา, น.; ลี, K.-W.; Heo, M.-S.; ยอ, I.-K.; ลี, Y.-D.; จอน, Y.-J. การกำจัดชนิดออกซิเจนที่เกิดปฏิกิริยา การหลอมโลหะ พลังงานรีดิวซ์ และคุณสมบัติการยับยั้งลิพิดเปอร์ออกซิเดชันของเศษส่วนตัวทำละลายต่างๆ จาก Hizikia fusiformis.Eur ความละเอียดของอาหาร เทคโนโลยี 2548, 220, 363–371. [ข้ามอ้างอิง]

78. จอร์มาไลเนน, วี.; Honkanen, T. Variation ในการคัดเลือกโดยธรรมชาติสำหรับการเจริญเติบโตและ phlorotannins ในสาหร่ายสีน้ำตาล Fucus vesiculosus.J. วิวัฒนาการ ไบโอล. 2547, 17, 807–820. [CrossRef] [PubMed]

79. Koivikko, R.; โลโปเนน เจ.; Pihlaja, K.; Jormalainen, V. การวิเคราะห์โครมาโตกราฟีของเหลวประสิทธิภาพสูงของ phlorotannins จากสาหร่ายสีน้ำตาล Fucus vesiculosus ไฟโตเคม. ก้น 2550, 18, 326–332. [CrossRef] [PubMed]

80. มาเรเซก, วี.; Mikyška, A.; แฮมเพล, D.; Cejka, P.; นอยเวิร์ธอฟ ˇ á, J.; Malachová, A.; วิธี Cerkal, R. ABTS และ DPPH เป็นเครื่องมือในการศึกษาความสามารถในการต้านอนุมูลอิสระของข้าวบาร์เลย์สปริงและมอลต์ เจ. ซีเรียลวิทย์. 2017, 73, 40–45. [ข้ามอ้างอิง]

81. อัษฎา, ม.; ซูกี้, ม.; Inoue, ม.; นากาโกมิ, K.; Hongo, S.; มูราตะ, K.; Irie, S.; ทาเคอุจิ ต.; Tomizuka, N.; Oka, S. ผลการยับยั้งของกรด Alginic ต่อ Hyaluronidase และการปล่อยฮีสตามีนจาก Mast Cells ไบโอสกี้. เทคโนโลยีชีวภาพ ไบโอเคมี. 1997, 61, 1030–1032.[CrossRef] [PubMed]

82. Mase, T.; ยามาอุจิ, ม.; คาโต้, วาย.; เอซากิ, เอช.; Isshiki, S. Hyaluronidase-Inhibiting Acidic Polysaccharide ที่แยกได้จาก PorphyridiumPurpureum การรวบรวมบทความวิจัยในมหาวิทยาลัย Gakuen ของผู้หญิง Suishan แนท. วิทย์. 2013, 44, 105–113.83. Tolpeznikaite, E.; Bartkevics, V.; Ruzauskas, ม.; Pilkityte, R.; Viskelis, P.; Urbonaviciene, D.; Zavistanaviciute, P.; Zokaityte, E.;Ruibys, R.; Bartkiene, E. การแสดงคุณลักษณะของสารสกัดมาโครและสาหร่ายขนาดเล็กสารประกอบออกฤทธิ์ทางชีวภาพและการเปลี่ยนองค์ประกอบจุลภาคและมาโครจากสาหร่ายเป็นสารสกัด อาหาร 2021, 10, 2226. [CrossRef]

84. โกเมซ ฉัน; Huovinen, P. Morpho-functional patterns and zonation of South Chilean seaweeds: ความสำคัญของลักษณะการสังเคราะห์แสงและชีวภาพทางแสง. มี.ค.ศ. โปรแกรม เซอร์ 2011, 422, 77–91. [ข้ามอ้างอิง]

85. คาร์สเทน ยู.; Wiencke, C. ปัจจัยที่ควบคุมการก่อตัวของกรดอะมิโน Mycosporine ที่ดูดซับรังสียูวีในสาหร่ายสีแดงจากทะเล Alga Palmaria Palmitate จาก Spitsbergen (นอร์เวย์) เจ. แพลนท์. ฟิสิออล 2542, 155, 407–415. [ข้ามอ้างอิง]

86. Ummat, V.; Sivagnanam เอสพี; Rajauria, G.; โอดอนเนลล์ ซี.; Tiwari, BK ก้าวหน้าในเทคนิคก่อนการบำบัดและเทคโนโลยีการสกัดสีเขียวสำหรับออกฤทธิ์ทางชีวภาพจากสาหร่าย เทรนด์อาหารวิทย์. Technol 2021, 110, 90–106. [ข้ามอ้างอิง]

87. บุสเซตต้า, น.; Lanoisellé, J.-L.; Bedel-Cloutour, C.; Vorobiev, E. การสกัดสารที่ละลายได้จากกากองุ่นโดยการปล่อยไฟฟ้าแรงสูงสำหรับการกู้คืนโพลีฟีนอล: ผลของซัลเฟอร์ไดออกไซด์และการบำบัดด้วยความร้อน เจ. ฟู้ด Eng. 2552, 95, 192–198.[ข้ามอ้างอิง]

88. Goettel, M.; อิง, ค.; กัสเบธ, C.; Straessner, R.; Frey, W. Pulsed สนามไฟฟ้าช่วยสกัดของมีค่าภายในเซลล์จากสาหร่ายขนาดเล็ก ความละเอียดของสาหร่าย 2013, 2, 401–408. [ข้ามอ้างอิง]

89. หวาง ป.-อ.; Wu, C.-H.; Gau, S.-Y.; เชียน, S.-Y.; ฮวัง, D.-F. ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและกระตุ้นภูมิคุ้มกันของสารสกัดน้ำร้อนจากสาหร่าย Sargassum epiphyllum เจ.มาร์.วิทย์. เทคโนโลยี 2010, 18, 41–46. [ข้ามอ้างอิง]

90. ซาบีน่า ฟาร์วิน KH; Jacobsen, C. สารประกอบฟีนอลิกและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของสาหร่ายบางชนิดจากชายฝั่งเดนมาร์ก เคมีอาหาร. 2013, 138, 1670–1681. [CrossRef] [PubMed]

91. Godlewska, K.; มิชาลัก, ไอ.; Tuhy, L.; Chojnacka, K. สารกระตุ้นการเจริญเติบโตของพืชโดยใช้วิธีการสกัดสาหร่ายด้วยน้ำแบบต่างๆ ความละเอียด BioMed อินเตอร์ 2559, 2559, 1–11. [CrossRef] [PubMed]

92. จาง คิว; จางเจ.; เชน เจ.; ซิลวา, A.; เดนนิส ดา; Barrow, CJ A Simple 96-วิธีไมโครเพลทแบบดีสำหรับการประมาณปริมาณ TotalPolyphenol ในสาหร่ายทะเล เจ. แอพพ์. ไฟคอล 2549, 18, 445–450. [ข้ามอ้างอิง]

93. Kamtekar, S.; คีร์, วี.; Patil, V. การประมาณปริมาณฟีนอล, ปริมาณฟลาโวนอยด์, สารต้านอนุมูลอิสระและฤทธิ์ยับยั้งอัลฟาอะไมเลสของสูตรโพลีเฮอร์บาลที่วางตลาด เจ. แอพพ์. เภสัช. วิทย์. 2014, 4, 61.

94. เนโต้ อาร์.; Marçal, C.; Queiros, A.; Abreu, ม.; ซิลวา, A.; Cardoso, S. การตรวจคัดกรอง Ulva rigida, Gracilaria sp., Fucus vesiculosus และ Saccharina latissima เป็นส่วนผสมที่ใช้งานได้ อินเตอร์ เจ โมล. วิทย์. 2018, 19, 2987. [ข้ามอ้างอิง]

95. เบนซี่ IF; Strain, JJ ความสามารถในการรีดิวซ์เฟอริกของพลาสม่า (FRAP) เป็นตัววัด "พลังต้านอนุมูลอิสระ": การทดสอบ FRAP ทวาร.Biochem. 2539, 239, 70–76. [ข้ามอ้างอิง]

96. Eun Lee, K.; Bharadwaj, S.; Yadava, U.; Gu Kang, S. การประเมินคาเฟอีนเป็นตัวยับยั้งการต่อต้านคอลลาเจน elastase และ tyrosinaseusing ในซิลิโคและในหลอดทดลอง เจ. เอ็นไซม์ อินฮิบ. เมดิ. เคมี. 2019, 34, 927–936. [CrossRef] [PubMed]