ผลงานของผู้เขียน:SB และ YEK คิดและออกแบบโครงสร้างและเนื้อหาของบทวิจารณ์ SB วิเคราะห์ข้อมูลและเขียนต้นฉบับ EEM, MS, HB, NM, LK และ YEK มีส่วนร่วมในการเขียน—ตรวจทานและแก้ไข YEK ดูแลโครงการ ผู้เขียนทุกคนได้อ่านและยอมรับต้นฉบับฉบับที่จัดพิมพ์แล้ว

Glycoside ของ cistanche ยังสามารถเพิ่มกิจกรรมของ SOD ในเนื้อเยื่อหัวใจและตับ และลดปริมาณของ lipofuscin และ MDA ในแต่ละเนื้อเยื่อได้อย่างมีประสิทธิภาพ กำจัดอนุมูลออกซิเจนที่ทำปฏิกิริยาต่างๆ (OH-, H₂O₂ ฯลฯ) ได้อย่างมีประสิทธิภาพ และป้องกันความเสียหายของ DNA ที่เกิดขึ้น โดย OH-อนุมูล Cistanche phenylethanoid glycosides มีความสามารถในการกำจัดอนุมูลอิสระที่แข็งแกร่ง ความสามารถในการลดที่สูงกว่าวิตามินซี ปรับปรุงกิจกรรมของ SOD ในการระงับสเปิร์ม ลดปริมาณของ MDA และมีผลป้องกันบางอย่างต่อการทำงานของเยื่อหุ้มสเปิร์ม โพลีแซคคาไรด์ของ Cistanche สามารถเสริมการทำงานของ SOD และ GSH-Px ในเม็ดเลือดแดงและเนื้อเยื่อปอดของหนูทดลองที่ชราภาพซึ่งเกิดจาก D-galactose รวมทั้งลดปริมาณ MDA และคอลลาเจนในปอดและพลาสมา และเพิ่มเนื้อหาของอีลาสติน ส่งผลดีต่อ DPPH, ยืดเวลาการขาดออกซิเจนในหนูชรา, ปรับปรุงกิจกรรมของ SOD ในซีรั่ม, และชะลอการเสื่อมทางสรีรวิทยาของปอดในหนูชราทดลองที่มีความเสื่อมทางสัณฐานวิทยาของเซลล์, การทดลองแสดงให้เห็นว่า Cistanche มีความสามารถในการต้านอนุมูลอิสระที่ดี และมีศักยภาพในการเป็นยาป้องกันและรักษาโรคชราทางผิวหนัง ในขณะเดียวกัน echinacoside ใน Cistanche มีความสามารถที่สำคัญในการกำจัดอนุมูลอิสระ DPPH และมีความสามารถในการกำจัดชนิดของออกซิเจนที่ทำปฏิกิริยาและป้องกันการเสื่อมสลายของคอลลาเจนที่เกิดจากอนุมูลอิสระ และยังมีผลการซ่อมแซมที่ดีต่อความเสียหายของแอนไอออนจากอนุมูลอิสระของไทมีน

คลิกที่ประโยชน์ของยาเม็ด Cistanche

【สำหรับข้อมูลเพิ่มเติม:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

เงินทุน:งานวิจัยนี้ได้รับทุนสนับสนุนจาก OCP Phosboucraa Foundation, Laâyoune, Morocco, Grant No. PR008

คำชี้แจงของคณะกรรมการพิจารณาสถาบัน:ไม่สามารถใช้ได้.

คำชี้แจงความยินยอมที่ได้รับการบอกกล่าว:ไม่สามารถใช้ได้.

คำชี้แจงความพร้อมใช้งานของข้อมูล:การแบ่งปันข้อมูลใช้ไม่ได้กับบทความนี้เนื่องจากไม่มีการสร้างหรือวิเคราะห์ชุดข้อมูลในระหว่างการศึกษาปัจจุบัน

ผลประโยชน์ทับซ้อน:ผู้เขียนประกาศว่างานวิจัยนี้ดำเนินการโดยไม่มีความสัมพันธ์ทางการค้าหรือการเงินที่อาจตีความได้ว่าเป็นผลประโยชน์ทับซ้อนที่อาจเกิดขึ้น

อ้างอิง

1. เทคโนโลยีเซลล์พืช—หุ้นส่วนของคุณในการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพืช การประยุกต์ใช้เทคโนโลยีเซลล์พืชในอุตสาหกรรมเครื่องสำอาง มีจำหน่ายทางออนไลน์:

2. การวิจัยลำดับความสำคัญ สารสกัดจากพืชมีขนาดตลาดแตะ 22.49 พันล้านเหรียญสหรัฐภายในปี 2573

3. การวิจัยลำดับความสำคัญ สารสกัดจากพืชมีขนาดตลาดมูลค่าประมาณ 22.49 พันล้านเหรียญสหรัฐภายในปี 2573

4. เทรฮาน เอส.; มิชเนียก-โคห์น บี; Beri, K. เซลล์ต้นกำเนิดจากพืชในเครื่องสำอาง: แนวโน้มปัจจุบันและทิศทางในอนาคต อนาคตวิทย์. อพ.2560 น.3 สศ.226. [ครอสรีฟ] [PubMed]

5. Georgiev, V.; สลาฟ อ.; Vasileva, I.; Pavlov, A. การเพาะเลี้ยงเซลล์พืชเป็นเทคโนโลยีใหม่สำหรับการผลิตส่วนผสมเครื่องสำอางที่ออกฤทธิ์ อังกฤษ วิทยาศาสตร์ชีวิต 2018, 18, 779–798. [ครอสรีฟ] [PubMed]

6. เอสปิโนซา-ลีล แคลิฟอร์เนีย; ปวนเต-การ์ซา, แคลิฟอร์เนีย; García-Lara, S. การเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพืชในหลอดทดลอง: หมายถึงการผลิตสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพ แพลนตา 2018, 248, 1–18. [ครอสรีฟ] [PubMed]

7. Namdeo, เอจี; Ingawale, DK Ashwagandha: ความก้าวหน้าในแนวทางเทคโนโลยีชีวภาพของพืชสำหรับการขยายพันธุ์และการผลิตสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพ เจ. เอธโนฟาร์มาคอล. 2021, 271, 113709 [CrossRef]

8. ปาร์ราโด ซี; Mercado-Saenz, S.; เปเรซ-ดาโว, อ.; กิลาแบร์เต, วาย.; กอนซาเลซ, ส.; Juarranz, A. ปัจจัยกดดันด้านสิ่งแวดล้อมต่ออายุผิว ข้อมูลเชิงลึกของกลไก ด้านหน้า. ฟาร์มาคอล 2019, 10, 759 [CrossRef]

9. เปเรซ-เอส0. ยูเซฟ เอช.; อัลฮัจญ์ ม.; Sharma, S. กายวิภาคศาสตร์, ผิวหนัง (ผิวหนัง), หนังกำพร้า; StatPearls Publishing: Treasure Island, FL, USA, 2017.

11. ชิน, J.-W.; ควอน, S.-H.; ชอย, J.-Y.; นา, J.-I.; หือ ค.-ฮ.; ชอย, H.-R.; พาร์ค, เค.-ซี. กลไกระดับโมเลกุลของการแก่ของผิวหนังและแนวทางการชะลอวัย ภายใน เจ โมล วิทย์ 2019, 20, 2126 [CrossRef]

12. มิชาลักษณ์ ม.; เพียร์ซัค ม.; Kr˛ecisz, B.; Suliga, E. สารออกฤทธิ์ทางชีวภาพเพื่อสุขภาพผิว: บทวิจารณ์ สารอาหาร 2021, 13, 203. [CrossRef]

13. โคบายาชิ ท.; ริคาร์โด้-กอนซาเลซ RR ; Moro, K. Skin-Resident Innate Lymphoid Cells–Cutaneous Innate Guardians and Regulators. เทรนด์อิมมูนอล. 2020, 41, 100–112. [ครอสรีฟ]

14. นีลเส็น, MM; อารีล, อี.; ซาฟารี, อี.; Mojsoska, บี; เจนเซ่น, เอช; Prabhala, BK สถานะปัจจุบันของ SLC และ ABC Trans-porters ในผิวหนังและความสัมพันธ์กับสารเมตาโบไลต์ในเหงื่อและโรคผิวหนัง โปรตีโอม 2021, 9, 23. [CrossRef]

15. วัง เอเอส; Dreesen, O. Biomarkers ของการชราภาพของเซลล์และอายุของผิวหนัง ด้านหน้า. เจเนท. 2018, 9, 247. [CrossRef] [PubMed]

16. บอนเต้ เอฟ.; กิราร์ด, ด.; Archambault, J.-C.; Desmoulière, A. การเปลี่ยนแปลงของผิวหนังในช่วงอายุ ในชีวเคมีและชีววิทยาของเซลล์แห่งวัย: วิทยาศาสตร์คลินิกส่วนที่ II; Springer: เบอร์ลิน/ไฮเดลเบิร์ก เยอรมนี 2019; เล่มที่ 91 หน้า 249–280

17. รินเนอร์ธาเลอร์ ม.; บิชอฟ เจ; สตรูเบล, เอ็มเค ; ทรอสต์, อ.; Richter, K. ความเครียดออกซิเดทีฟในผิวหนังมนุษย์ที่มีอายุมากขึ้น สารชีวโมเลกุล 2015, 5, 545–589. [ครอสรีฟ] [PubMed]

18. ซามาร์รอน อ.; ลอร์ริโอ เอส; กอนซาเลซ, เอส; Juarranz, Á. Fernblock ป้องกันความเสียหายของเซลล์ผิวหนังที่เกิดจากรังสีที่มองเห็นได้และรังสีอินฟราเรด ภายใน เจ โมล วิทย์ 2018, 19, 2250 [CrossRef]

19. คัมเมเยอร์ อ.; Luiten, R. เหตุการณ์ออกซิเดชันและอายุของผิวหนัง อายุ Res รายได้ 2015, 21, 16–29 [ครอสรีฟ] [PubMed]

20. คริสเตนเซ็น แอล; Suggs, A.; Baron, E. รังสีอัลตราไวโอเลตโฟโตไบโอโลจีในโรคผิวหนัง ในแสงอัลตราไวโอเลตในสุขภาพของมนุษย์ โรค และสิ่งแวดล้อม; Springer: เบอร์ลิน/ไฮเดลเบิร์ก เยอรมนี 2017; เล่มที่ 996 หน้า 89–104

21. สมติยา, ม.; อลูโก, RE; เทวา, ท.; Moreno-Rojas, JM ประโยชน์ด้านสุขภาพที่เป็นไปได้ของส่วนประกอบที่ออกฤทธิ์ทางชีวภาพที่ได้จากอาหารจากพืช: ภาพรวม อาหาร 2021, 10, 839 [CrossRef]

22. บาคริม, WB; Nurcahyanti, เอดีอาร์ ; Dmirieh, ม.; มาห์, ฉัน.; เอลกามาล, AM; เอล เรย์, แมสซาชูเซตส์; ขยิบตา ม.; Sobeh, M. การทำโปรไฟล์ไฟโตเคมิคอลของสารสกัดจากใบของ Ximenia Americana Var. Caffra และสารต้านอนุมูลอิสระ ต้านแบคทีเรีย และกิจกรรมต่อต้านริ้วรอยในหลอดทดลองและใน Caenorhabditis Elegans: แนวทางเวชสำอางและผิวหนัง ออกไซด์ ยา เซลล์ ลองเยฟ 2022, 2022, 3486257. [CrossRef]

23. Zhao, Y.; วู, วาย.; Wang, M. สารออกฤทธิ์ทางชีวภาพจากพืช 30. Handb. เคมีอาหาร. 2558, 967, 967–1008.

24. อบีราธเน, EDNS; นาม พ.; หวาง เอ็กซ์; Ahn โครงสร้าง ประสิทธิภาพ กลไก และการใช้งานของสารต้านอนุมูลอิสระจากพืชและสัตว์ของ DU: บทวิจารณ์ สารต้านอนุมูลอิสระ 2022, 11, 1025 [CrossRef]

25. Smetanska, I. การผลิตโพลีฟีนอลและสารต้านอนุมูลอิสระอย่างยั่งยืนโดยพืชในหลอดทดลอง ในการประมวลผลทางชีวภาพของพืชในหลอดทดลองระบบ; Springer: เบอร์ลิน/ไฮเดลเบิร์ก เยอรมนี 2018; หน้า 225–269.

26. Namdeo, A. การดึงเซลล์พืชเพื่อผลิตสารทุติยภูมิ: บทวิจารณ์ Pharmacogn Rev. 2007, 1, 69–79.

27. จอร์จีฟ มิชิแกน; เวเบอร์ เจ; Maciuk, A. กระบวนการทางชีวภาพของการเพาะเลี้ยงเซลล์พืชเพื่อการผลิตสารประกอบเป้าหมายจำนวนมาก แอป ไมโครไบโอล. เทคโนโลยีชีวภาพ 2552, 83, 809–823. [ครอสรีฟ]

28. วัง ซิดนีย์; เฉิน, C.-T.; Sciarappa, W.; วัง ไซ ; Camp, MJ Fruit Quality, ความสามารถในการต้านอนุมูลอิสระ และปริมาณฟลาโวนอยด์ของบลูเบอร์รี่ที่ปลูกแบบออร์แกนิคและตามอัตภาพ เจ. อกริก. เคมีอาหาร. 2551, 56, 5788–5794. [ครอสรีฟ] [PubMed]

29. Roberts, SC การผลิตและวิศวกรรมของ Terpenoids ในการเพาะเลี้ยงเซลล์พืช ณัฐ. เคมี ไบโอล 2550, 3, 387–395. [ครอสรีฟ] [PubMed]

30. โคยาโก-ครูซ, อี.; คอเรล ม.; Stinco, ซม. ; เฮอร์นันซ์, ด.; โมเรียนา, อ.; Meléndez-Martínez, AJ ผลของการชลประทานที่ขาดการควบคุมต่อพารามิเตอร์คุณภาพ, แคโรทีนอยด์และฟีนอลของพันธุ์มะเขือเทศที่หลากหลาย (Solanum Lycopersicum L.) ความละเอียดของอาหาร ภายใน 2560, 96, 72–83. [ครอสรีฟ] [PubMed]

31. อัลเกซาร์ บี; โรดริโก, เอ็มเจ ; ลาโด เจ; Zacarías, L. การศึกษาเปรียบเทียบทางสรีรวิทยาและการถอดเสียงของการสังเคราะห์แคโรทีนอยด์ในส้มโอขาวและแดง (Citrus Paradisi Macf.) ทรีเจเน็ท. จีโนม 2013, 9, 1257–1269 [ครอสรีฟ]

32. คู, แคนซัส; ลี ซิส ; ออย, CW; ฟู, X.; แม้ว, เอ็กซ์; หลิง TC; แสดง PL ความก้าวหน้าล่าสุดใน Biorefinery ของ Astaxanthin จาก Haematococcus Pluvialis ไบโอเรสซอร์. เทคโนโลยี 2019, 288, 121606. [CrossRef]

33. อิเกรจา วอชิงตัน; ไมอา องค์การอาหารและยา; โลเปส, เอเอส ; Chisté, RC การผลิตเทคโนโลยีชีวภาพของแคโรทีนอยด์โดยใช้สารตั้งต้นต้นทุนต่ำได้รับอิทธิพลจากพารามิเตอร์การเพาะปลูก: บทวิจารณ์ ภายใน เจ โมล วิทย์ 2021, 22, 8819 [CrossRef] [PubMed]

34. กีโด, เอส.; เดฟิเยอ, ด.; Douat-Casassus, C.; Pouységu, L. โพลีฟีนอลจากพืช: คุณสมบัติทางเคมี กิจกรรมทางชีวภาพ และการสังเคราะห์ แองจี้. เคมี ภายใน เอ็ด 2554, 50, 586–621. [ครอสรีฟ]

35. บราก้า, อ.; Ferreira, P.; โอลิเวรา, เจ; โรชา, ฉัน.; Faria, N. การผลิต Resveratrol ที่แตกต่างกันในโฮสต์ของแบคทีเรีย: สถานะปัจจุบันและมุมมอง. เวิลด์ เจ. ไมโครไบโอล. เทคโนโลยีชีวภาพ 2018, 34, 1–11. [ครอสรีฟ]

36. บีคไวล์เดอร์ เจ; โวลส์วินเคิล, ร.; ยองเกอร์, เอช; ฮอลล์ อาร์; เดอวอส ซีอาร์; Bovy, A. การผลิต Resveratrol ในจุลินทรีย์ชนิดรีคอมบิแนนท์. แอป สิ่งแวดล้อม. ไมโครไบโอล. 2549, 72, 5670–5672. [ครอสรีฟ]

37. ลี่, ม.; ชไนเดอร์ เค; คริสเตนเซ็น ม.; โบโรดินา ฉัน; Nielsen, J. ยีสต์วิศวกรรมสำหรับการผลิตสารต้านอนุมูลอิสระ Stilbenoid ในระดับสูง วิทย์ ตัวแทน 2016, 6, 1–8. [ครอสรีฟ]

38. กัสปาร์ ป.; ดัดนิก, อ.; เนเวส เออาร์ ; Föster, J. Engineering Lactococcus Lactis สำหรับการผลิต Stilbene ในรายงานการประชุมนานาชาติเรื่องโพลิฟีนอลครั้งที่ 28 ประจำปี 2559 กรุงเวียนนา ประเทศออสเตรีย 11 กรกฎาคม 2559; DTU เดนมาร์ก: Kongens Lyngby เดนมาร์ก 2559

39. คาลล์สเชียร์, N.; Vogt, ม.; สเตนเซล อ.; Gätgens เจ; บอต, ม.; Marienhagen, J. การสร้างสายพันธุ์ Corynebacterium Glutamicum Platform สำหรับการผลิต Stilbenes และ (2S)-Flavanones เมตาบ อังกฤษ 2559, 38, 47–55. [ครอสรีฟ] [PubMed]

40. เทียน, บี; Liu, J. Resveratrol: การทบทวนแหล่งที่มาของพืช การสังเคราะห์ ความคงตัว การดัดแปลง และการประยุกต์ใช้อาหาร เจ.วิทย์. อาหารเกษตร. 2020, 100, 1392–1404. [ครอสรีฟ] [PubMed]

41. หยาง ย.; ลิน, ย.; หลี่, แอล; ลินฮาร์ด อาร์เจ ; Yan, Y. ควบคุมการเผาผลาญ Malonyl-CoA ผ่าน RNA Antisense สังเคราะห์สำหรับการสังเคราะห์ทางชีวภาพขั้นสูงของผลิตภัณฑ์ธรรมชาติ เมตาบ อังกฤษ 2015, 29, 217–226. [ครอสรีฟ]

42. มิราส-โมเรโน่ บี; Pedreño, M.Á.; Romero, LA ฤทธิ์ทางชีวภาพและการดูดซึมของไฟโตอีนและกลยุทธ์ในการปรับปรุงการผลิต ไฟโตเคม. รายได้ 2019, 18, 359–376 [ครอสรีฟ]

43. รามิเรซ-เอสตราด้า, เค; วิดัล-ลิมอน, เอช; อีดัลโก, D.; โมยาโน, อี.; Golenioswki, ม.; คูซิโด, RM; Palazon, J. Elicitation กลยุทธ์ที่มีประสิทธิภาพสำหรับการผลิตทางเทคโนโลยีชีวภาพของสารประกอบมูลค่าเพิ่มที่ออกฤทธิ์ทางชีวภาพสูงในโรงงานเซลล์พืช โมเลกุล 2016, 21, 182. [CrossRef]

44. Expósito, O.; บอนฟิล ม.; โมยาโน, อี.; ออนรูเบีย ม.; มีร์จาลิลี, ม.; คูซิโด อาร์; Palazon, J. การผลิตทางเทคโนโลยีชีวภาพของ Taxol และ Taxoids ที่เกี่ยวข้อง: สถานะปัจจุบันและอนาคต ยาต้านมะเร็ง Med. เคมี อดีต. สกุลเงิน ยา Chem.-สารต้านมะเร็ง 2009, 9, 109–121 [ครอสรีฟ]

45. มัตสึบาระ, เค; กิทานิ เอส; โยชิโอกะ, ที; โมริโมโตะ, ที; ฟูจิตะ, วาย.; Yamada, Y. การเพาะเลี้ยงเซลล์ Coptis Japonica ที่มีความหนาแน่นสูงช่วยเพิ่มการผลิต Berberine เจ เคม เทคโนโลยี เทคโนโลยีชีวภาพ 2532, 46, 61–69. [ครอสรีฟ]

46. ​​Chattopadhyay, S.; ศรีวาสตาวา, อลาสกา; โภชวานี, SS; Bisaria, VS การผลิต Podophyllotoxin โดยการเพาะเลี้ยงเซลล์พืชของ Podophyllum Hexandrum ในเครื่องปฏิกรณ์ชีวภาพ เจ. ไบโอไซ. ไบโอเอ็ง. 2545, 93, 215–220. [ครอสรีฟ]

47. เกา เอช.; Xu, J.; หลิว เอ็กซ์; หลิว บี; เติ้ง X. ผลกระทบของแสงต่อการผลิตแคโรทีนอยด์และการแสดงออกของยีนแคโรทีนอยด์ในแคลลัสส้มของสี่จีโนไทป์ แอคต้าฟิสิโอล. ปลูก. 2554, 33, 2485–2492. [ครอสรีฟ]

48. บูรณสุดา, ว.; รานี ด.; มัลละ อ.; กอบตระกูล, พ.; วิมล มั่งคั่ง, S. Insights in Antioxidant Activities and Anti-Skin-Aging Potential of Callus Extract from Centella Asiatica (L.). วิทย์ ตัวแทน 2021, 11, 1–16 [ครอสรีฟ]

49. กิคอฟสกา, แมสซาชูเซตส์; Chmielewska, ม.; Włodarczyk, A.; Studzi ´nska-Sroka, E.; ˙ซูชอว์สกี้, เจ.; สโตชมาล, อ.; Kotwicka, ม.; Thiem, B. ผลของสารสกัด Pentacyclic Triterpenoids-Rich Callus ของ Chaenomeles Japonica (Thunb.) Lindl. Ex Spach on Viability, Morphology and Proliferation of Normal Human Skin Fibroblasts. โมเลกุล 2018, 23, 3009 [CrossRef] [PubMed]

50. Hseu, Y.-C.; โคริวี ม.; ลิน, ฟ.-ย.; ลี่ ม.-ล.; ลิน, ร.-ว.; อู๋ เจ.-เจ.; ยาง H.-L. กรด Trans-Cinnamic ลดการเกิดแสงที่เกิดจากรังสี UVA ผ่านการยับยั้ง AP-1 การเปิดใช้งานและการเหนี่ยวนำของ Nrf2-ยีนสารต้านอนุมูลอิสระที่เป็นสื่อกลางในไฟโบรบลาสต์ของผิวหนังมนุษย์ เจ.เดอร์มาทอล. วิทย์ 2018, 90, 123–134. [ครอสรีฟ] [PubMed]

51. อรรถการี, ด.; พันธิ, วี.เค. ; Pangeni, ร.; คิม เอชเจ; Park, JW Preparation, Characterization and Biological Activities of Topical Anti-Aging Ingredients in a Citrus Junos Callus Extract. โมเลกุล 2017, 22, 2198 [CrossRef] [PubMed]

52. ฮง, ย.; ลี เอช; ทราน Q.; บายาร์มังคห์, ซี; โบลด์บาตอร์, D.; ควอน SH; ปาร์ค, เจ; Park, J. ผลประโยชน์ของ Diplectria Barbata (Wall. Ex CB Clarke) Franken et Roos Extract ต่ออายุและสารต้านอนุมูลอิสระในหลอดทดลองและใน Vivo สารพิษ ความละเอียด 2021, 37, 71–83. [ครอสรีฟ]

53. เมนบารี อ.; Bahramnejad, บี; Abuzaripoor, ม.; ชาห์มันซูรี, อี.; Zarei, MA ก่อตั้งแคลลัสและเซลล์แขวนลอยของผลไม้แอปเปิ้ล Granny Smith และฤทธิ์ต้านไทโรซิเนสของสารสกัด วิทย์ ฮอร์ติค. 2021, 286, 110222. [CrossRef]

54. มาชาวา ป.; ลิวดวิตสกา, โอ.; คิเซล เอ; ซิดซิช, อ.; Olszewska, แมสซาชูเซตส์; ˙Zbikowska, HM การประเมินศักยภาพการป้องกันภาพถ่ายของสารสกัดจากใบมะกอกที่ได้มาตรฐานทางพฤกษเคมี (Olea Europaea L.) ในไฟโบรบลาสต์ผิวหนังมนุษย์ที่ฉายรังสี UVA โมเลกุล 2022, 27, 5144. [CrossRef]

55. ลี เอช; ฮง, ย.; ทราน Q.; โช, เอช.; คิม ม.; คิม ซี; ควอน SH; ปาร์ค เอส; ปาร์ค, เจ; Park, J. บทบาทใหม่สำหรับ Ginsenoside RG3 ในการต่อต้านริ้วรอยผ่านการทำงานของไมโทคอนเดรียในไฟโบรบลาสต์ผิวหนังมนุษย์ที่ฉายรังสีอัลตราไวโอเลต เจ. โสม Res. 2019, 43, 431–441. [ครอสรีฟ]

56. ลี เอช; ฮง, ย.; ควอน SH; ปาร์ค, เจ; Park, J. ผลการต่อต้านริ้วรอยของ Piper Cambodiaum P. Fourn สารสกัดจากเซลล์ไฟโบรบลาสต์ผิวหนังมนุษย์ปกติและแบบจำลองการรักษาบาดแผลในหนู คลิน. Interv. หมดอายุ 2016, 11, 1017

57. รานี ด.; บูรณสุดา, ว.; กอบตระกูล, พ.; เดช เอกนามกุล, ว.; วิมล มั่งคั่ง, S. Elicitation of Pueraria Candollei Var. Mirifica Suspension Cells มีศักยภาพในการต้านอนุมูลอิสระ ซึ่งแสดงถึงฤทธิ์ในการต่อต้านริ้วรอย ลัทธิอวัยวะเนื้อเยื่อเซลล์พืช PCTOC 2564, 145, 29–41. [ครอสรีฟ]

58. คิม เอชเจ; Park, JW กิจกรรมต่อต้านวัยของ Pyrus Pyrifolia Var Culta Plant Callus Extract ทรอป. เจ. ฟาร์มา. ความละเอียด 2017, 16, 1579–1588. [ครอสรีฟ]

59. คิม, H.-R.; คิม เอส; จี้, อีวาย; คิม เอสเจ ; อาห์น วอชิงตัน ; จอง, S.-I.; Yu, K.-Y.; คิม สว.; คิม, S.-Y. ผลของสารสกัด Tiarella Polyphylla D. Don Callus ต่อการถ่ายภาพในเซลล์ Hs68 ของหนังหุ้มปลายลึงค์ของมนุษย์ ณัฐ. แยง. ชุมชน 2021, 16, 1934578X211016970. [ครอสรีฟ]

60. ชาลาเกรี, ช.; ธนันจายา, ส.; Raghavendra, P.; มาร์, LS; บาบู, ยู; Varma, SR ทดแทนส่วนของพืชด้วยสารสกัดจากเซลล์แคลลัส: กรณีศึกษาของ Woodfordia Fruticosa Kurz ซึ่งเป็นส่วนผสมที่มีศักยภาพในสูตรการดูแลผิว ส. อัฟ เจ. บอต. 2019, 123, 351–360. [ครอสรีฟ]

61. Zhao พี; อลัม เอ็มบี ; ลี เอส.-เอช. การป้องกันรังสี UVB-Induced Photoaging โดย Fuzhuan-Brick Tea Aqueous Extract via MAPKs/Nrf2- Mediated Down-Regulation of MMP-1 สารอาหาร 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

62. Hseu, Y.-C.; ไจ่, Y.-C.; Huang, P.-J.; โอ๊ย T.-T.; โคริวี ม.; Hsu, L.-S.; ช้าง, S.-H.; อู๋, ซีอาร์-อาร์; ยาง H.-L. ผลการปกป้องผิวหนังของลูซิโดนจากลินเดรา อีริโทรคาร์ปาผ่านการเหนี่ยวนำ Nrf2-ยีนต้านอนุมูลอิสระที่เป็นสื่อกลางในเคราติโนไซต์ผิวหนังมนุษย์ที่ฉายรังสี UVA เจ. ฟังก์ชัน. อาหาร 2015, 12, 303–318. [ครอสรีฟ]

63.โช, วก.; คิม, H.-I.; คิม, ส.-ย.; ซอ, ฮ.; เพลง, เจ; คิม เจ; ชิน ดีเอส; โจ, ย.; ชอย เอช; Lee, JH ผลการต่อต้านริ้วรอยของสารสกัด Leontopodium Alpinum (Edelweiss) Callus Culture ผ่านการทำโปรไฟล์ถอดเสียง ยีน 2020, 11, 230 [CrossRef]

64. วิชิต, ว.; สวรรค์ น. กิจกรรมต่อต้านอนุมูลอิสระและชะลอความแก่ของแคลลัสจากข้าวสามสายพันธุ์. เครื่องสำอาง 2022, 9, 79. [CrossRef]

65.คุณัชนา, พ.; จริศรา ปุรินทร์, ว.; จุฬาโรจน์มนตรี, แอล; วัฒนพิทยกุล, SK ศักยภาพของสารสกัดจากผลไม้ Amla (Phyllanthus Emblica L.) เพื่อปกป้อง Keratinocytes ของผิวหนังจากการอักเสบและการตายของเซลล์หลังการฉายรังสี UVB สารต้านอนุมูลอิสระ 2021, 10, 703. [CrossRef]

66. ฟาร์ราส, อ.; มิตรจันส์ ม.; แม็กกี้ เอฟ; Caprioli, G.; Vinardell ส. ส. ; López, V. Polypodium Vulgare L. (Polypodiaceae) เป็นแหล่งของสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพ: โปรไฟล์โพลีฟีนอล, ความเป็นพิษต่อเซลล์และคุณสมบัติการป้องกันเซลล์ในเซลล์ต่างๆ ด้านหน้า. ฟาร์มาคอล 2021, 12, 727528 [CrossRef]

67. พาร์ค, เยอรมนี; อธิการี, ด.; Pangeni, ร.; พันธิ, วี.เค. ; คิม เอชเจ; Park การเตรียม JW และลักษณะของสารสกัดแคลลัสจาก Pyrus Pyrifolia และการตรวจสอบผลกระทบต่อการฟื้นฟูผิว เครื่องสำอาง 2018, 5, 71. [CrossRef]

68. โสเบห์ ม.; Petruk, G.; ออสมัน เอส; เอล เรย์, แมสซาชูเซตส์; อิมบิมโบ พี; มอนติ, DM; Wink, M. Isolation of Myricitrin และ 3,5-Di-O-Methyl Gossypetin จาก Syzygium Samarangense และการประเมินการมีส่วนร่วมของพวกเขาในการปกป้อง Keratinocytes จากความเครียดออกซิเดทีฟผ่านการเปิดใช้งาน Nrf-2 Pathway โมเลกุล 2019, 24, 1839 [CrossRef]

69. ซาฮิด แคนาดา; จาฟาร์, เฮิร์ตซ์; Hakiman, M. Micropropagation of Ginger (Zingiber Officinale Roscoe)'Bentong'และการประเมินสารทุติยภูมิและกิจกรรมต้านอนุมูลอิสระเมื่อเปรียบเทียบกับพืชที่ขยายพันธุ์ตามปกติ พืช 2021, 10, 630 [CrossRef] [PubMed]

70. จิน ส.; Hyun, TK Ectopic Expression of Production of Anthocyanin Pigment 1 (PAP1) ปรับปรุงคุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระและต่อต้านการสร้างเม็ดสีผิวของโสม (Panax Ginseng CA Meyer) รากขน สารต้านอนุมูลอิสระ 2020, 9, 922 [CrossRef] [PubMed]

71. เสนา, LM; Zappelli, ซี; อาโพน, ฉ.; บาร์บูโลวา, อ.; ติโต, อ.; ลีโอน เอ; โอลิวิเอโร, ที; เฟอร์ราเคน อาร์; Fogliano, V.; Colucci, G. Brassica Rapa Hairy Root Extracts ส่งเสริมการเสื่อมสภาพของผิวโดยการปรับการผลิตและการกระจายเมลานิน เจ.คอสเมท. เดอร์มาทอล. 2018, 17, 246–257. [ครอสรีฟ] [PubMed]

72. เพทรุก ก.; อิลลิอาโน, อ.; เดล จิวดิซ, ร.; ไรโอล่า, อ.; อโมเรซาโน, อ.; ริกาโน, MM; พิคโคลี อาร์; Monti, DM Malvidin และ Cyanidin Derivatives จากผลไม้ Açai (Euterpe Oleracea Mart.) ต่อต้านความเครียดออกซิเดชันที่เกิดจากรังสี UV-A ในเซลล์ไฟโบรบลาสต์ที่เป็นอมตะ เจ.โฟโต้เคม. โฟโตไบออล. ข 2560, 172, 42–51. [ครอสรีฟ] [PubMed]

73. อาโปน, ฉ.; ติโต, อ.; คาโรล่า, อ.; อาร์ซิเอลโล เอส; ทอร์โทร่า, อ.; ฟิลิปปี, ล.; โมลี, I.; Cucchiara, ม.; จิเบอร์โทนี เอส; Chrispeels, MJ ส่วนผสมของเปปไทด์และน้ำตาลที่ได้จากผนังเซลล์ของพืชเพิ่มการป้องกันพืชตอบสนองต่อความเครียด และลดการเปลี่ยนแปลงของโมเลกุลที่เกี่ยวข้องกับอายุในเซลล์ผิวหนังที่เพาะเลี้ยง เจ. ไบโอเทคอล. 2553, 145, 367–376. [ครอสรีฟ]

74. ซัน, ซี; พาร์ค ซิส ; ฮวาง, อี.; จาง ม.; ซอ, SA; หลิน พี; Yi, T. Thymus Vulgaris บรรเทาความเสียหายของผิวหนังที่เกิดจากการฉายรังสี UVB ผ่านการยับยั้ง MAPK/AP-1 และการเปิดใช้งาน Nrf2-ARE ระบบต้านอนุมูลอิสระ เจ เซลล์ โมล ยา 2017, 21, 336–348. [ครอสรีฟ]

75. ติโต, อ.; คาโรล่า, อ.; Bimonte, ม.; บาร์บูโลวา, อ.; อาร์ซิเอลโล เอส; เดอ ลอเรนติส, เอฟ.; โมลี, I.; ฮิลล์ เจ; จิเบอร์โทนี เอส; Colucci, G. สารสกัดจากสเต็มเซลล์มะเขือเทศ มีสารต้านอนุมูลอิสระและปัจจัยการคีเลตโลหะ ปกป้องเซลล์ผิวจากความเสียหายที่เกิดจากโลหะหนัก ภายใน เจ.คอสเมท. วิทย์ 2554, 33, 543–552. [ครอสรีฟ]

76. เจียว เจ; ไก่, Q.-Y.; วัง, X.; ฉิน Q.-P .; วัง Z.-Y.; หลิว เจ; ฟู่, วาย.-เจ. การดึงไคโตซานของเชื้อ Isatis Tinctoria L. Hairy Root เพื่อเพิ่มผลผลิตของฟลาโวนอยด์และการแสดงออกของยีนและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระที่เกี่ยวข้อง Ind. ผลิตภัณฑ์พืชผล 2018, 124, 28–35. [ครอสรีฟ]

77. อิซาห์ ท.; อุมัร, เอส; มูจิบ, อ.; ชาร์มา ส.ส. ; ราชเสกขรัณ ป.; ซาฟาร์, เอ็น; Frukh, A. เมแทบอลิซึมทุติยภูมิของยาในพืชในหลอดทดลอง: กลยุทธ์ แนวทาง และข้อจำกัดเพื่อให้ได้ผลผลิตที่สูงขึ้น ลัทธิอวัยวะเนื้อเยื่อเซลล์พืช PCTOC 2561, 132, 239–265. [ครอสรีฟ]

78. ลี เค-เจ; ปาร์ค, ย.; คิม, J.-Y.; จอง, ที.-เค.; หยุน, K.-S.; แป๊ก, ก.-ย.; ปาร์ค, S.-Y. การผลิตสารชีวมวลและสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพจากการเพาะเลี้ยงรากที่แปลกประหลาดของ Polygonum multiflorum โดยใช้เครื่องปฏิกรณ์ชีวภาพแบบ Air-Lift เจ. แพลนท์ ไบโอเทคอล. 2558, 42, 34–42. [ครอสรีฟ]

79. ชาร์มา พี; แพดห์ เอช.; Shrivastava, N. Hairy Root Cultures: ระบบชีวภาพที่เหมาะสมสำหรับการศึกษาเส้นทางเมแทบอลิซึมทุติยภูมิในพืช อังกฤษ วิทยาศาสตร์ชีวิต 2556, 13, 62–75. [ครอสรีฟ]

80. Grzegorczyk, I.; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. การจัดตั้ง Salvia Officinalis L. Hairy Root Cultures เพื่อผลิตกรดโรสมารินิก Z. Für Naturforschung C 2549, 61, 351–356 [ครอสรีฟ]

81. Weremczuk-Je ˙zyna, I.; Grzegorczyk-Karolak, I.; ฟรีดริช บี; Królicka, A.; Wysoki ´nska, H. รากขนของ Dracocephalum Moldavica: ปริมาณกรด Rosmarinic และศักยภาพในการต้านอนุมูลอิสระ แอคต้าฟิสิโอล. ปลูก. 2556, 35, 2095–2103. [ครอสรีฟ]

82. ศรีวาสตาวา, ส.; คอนแลน, เอ็กซ์เอ; อทิลยา, อ.; Cahill, DM Elite Hairy Roots of Ocimum Basilicum เป็นแหล่งใหม่ของกรดโรสมารินิกและสารต้านอนุมูลอิสระ ลัทธิอวัยวะเนื้อเยื่อเซลล์พืช PCTOC 2559, 126, 19–32. [ครอสรีฟ]

83. เชคาร์ชี ม.; Hajimehdipoor, H.; ซาอิดเนีย, ส.; โกฮาริ, เออาร์ ; Hamedani, MP การศึกษาเปรียบเทียบปริมาณกรด Rosmarinic ในพืชบางชนิดในตระกูล Labiatae เภสัช แม็ก 2555, 8, 37.

84. อโปน, ฉ.; ติโต, อ.; อาร์ซิเอลโล เอส; Carotenuto, G.; Colucci, MG Plant Tissue Cultures เป็นแหล่งที่มาของส่วนผสมสำหรับการดูแลผิว แอนนู Plant Rev. ออนไลน์ 2018, 3, 135–150

85. โอโนะ, เอ็นเอ็น; Tian, ​​L. ความหลากหลายของวัฒนธรรมรากขน: ความเป็นไปได้ที่อุดมสมบูรณ์ วิทย์พืช. 2554, 180, 439–446. [ครอสรีฟ] [PubMed]

86. จิน เอส; บัง ส.; Ahn, M.-A.; ลี เค; คิม, เค; Hyun, TK การผลิตแอนโธไซยานินมากเกินไปในรากขนของโสมช่วยเพิ่มฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ ต้านจุลชีพ และต้านอีลาสเทส เจ. แพลนท์ ไบโอเทคอล. 2021, 48, 100–105. [ครอสรีฟ]

87. บูซรูด์ เอส.; เอล มาอิเดน, อี.; Sobeh, ม.; Devkota, เคพี; บูคซิม, เอช.; Kouisni, L.; El Kharrassi, Y. การขยายพันธุ์ขนาดเล็กของ Opuntia และ Cacti Species อื่น ๆ ผ่านการแพร่กระจายของ Axillary Shoot: การทบทวนอย่างครอบคลุม ด้านหน้า. วิทย์พืช. 2022, 13, 926653 [CrossRef] [PubMed]

88. กอนซาลเวส เอส; Romano, A. การเพาะเลี้ยงลาเวนเดอร์ในหลอดทดลอง (Lavandula spp.) และการผลิตสารทุติยภูมิ เทคโนโลยีชีวภาพ ผู้ช่วย 2556, 31, 166–174. [ครอสรีฟ]

89. โกยาลี เจ; อิกัมเบอร์ดิเยฟ, อ.; Debnath, S. Micropropagation ไม่เพียงส่งผลกระทบต่อลักษณะทางสัณฐานวิทยาของผลไม้บลูเบอร์รี่พันธุ์ Lowbush (Vaccinium Angustifolium Ait.) แต่ยังรวมถึงสรรพคุณทางยาด้วย ใน Proceedings of the International Symposium on Medicinal Plants and Natural Products, Montreal, QC, Canada, 17–19 มิถุนายน 2013; หน้า 137–142.

90.ดาก้า, อ.; ซาอิด เอส; สุไลมาน ม.; อับบาส เอส; Wink, M. การขยายพันธุ์ในหลอดทดลองของพืชสมุนไพร Ziziphora Tenuior L. และการประเมินฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของมัน ซาอุดีอาระเบีย เจ. ไบโอล วิทย์ 2014, 21, 317–323. [ครอสรีฟ] [PubMed]

91. สุเรียมธู, ส.; วาร์เกส อาร์เจ; เบย์ยา ปูเรดดี, อ.; จอห์น เอสเอสที ; Narayanan, R. การผลิตสารต้านอาการซึมเศร้าที่เหนี่ยวนำด้วยแสงในวัฒนธรรมการยิงที่ถูกทำลายของ Hypericum Hookerianum Wight & Arn. (Hypericaceae) ลัทธิอวัยวะเนื้อเยื่อเซลล์พืช PCTOC 2556, 115, 169–178.

92. Grzegorczyk, I.; มัตโคว์สกี้, อ.; Wysoki ´nska, H. กิจกรรมต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดจากในหลอดทดลองของ Salvia Officinalis L. Food Chem. 2550, 104, 536–541. [ครอสรีฟ]

93. อัล คาทีบ ดับบลิว; ฮุสเซน อี.; โควตา, ล.; Alu'datt, ม.; อัล-ชารา, บี; Abu-Zaiton, A. การขยายพันธุ์ในหลอดทดลองและการวิเคราะห์ลักษณะของเนื้อหาฟีนอลพร้อมกับสารต้านอนุมูลอิสระและฤทธิ์ต้านจุลชีพของ Cichorium Pumilum Jacq ลัทธิอวัยวะเนื้อเยื่อเซลล์พืช PCTOC 2555, 110, 103–110. [ครอสรีฟ]

94. เรห์แมน ร.; Chaudhary, ม.; Khawar, K.; ลู, G.; แมนแนน อ.; Zia, M. การขยายพันธุ์ในหลอดทดลองของ Caralluma tuberculata และการประเมินศักยภาพของสารต้านอนุมูลอิสระ Biologia (บราซิล) 2014, 69, 341–349 [ครอสรีฟ]

95. อับดุลฮาฟิซ เอฟ.; โมฮัมเหม็ด, อ.; คายัต, ฉ.; ซาคาเรีย เอส; ฮัมซาห์, ซ.; เรดดี้ ปามูรู, ร.; กุนดาลา, พีบี; Reduan, MFH Micropropagation of Alocasia Longiloba Miq and Comparative Antioxidant Properties of Ethanolic Extracts of the Field-Grow Plant, in Vitro Propagated and in Vitro-Derived Callus. โรงงาน 2020, 9, 816 [CrossRef]

96. อิเคอุจิ ม.; Sugimoto, K.; Iwase, A. Plant Callus: กลไกการเหนี่ยวนำและการกดขี่ เซลล์พืช 2013, 25, 3159–3173. [ครอสรีฟ]

97 Fehér, A. Callus, Dedifferentiation, Totipotency, Somatic Embryogenesis: คำเหล่านี้มีความหมายอย่างไรในยุคของชีววิทยาพืชระดับโมเลกุล ด้านหน้า. วิทย์พืช. 2019, 10, 536 [CrossRef]

98. Abdulhafiz, F. เทคโนโลยีการเพาะเลี้ยงเซลล์พืช: ทางเลือกที่มีแนวโน้มในการผลิตสารทุติยภูมิที่มีมูลค่าสูง อาหรับ. เจ เคม 2022, 15, 104161 [CrossRef]

99. ดาล โทโซ ร.; Melandri, F. เทคโนโลยีการเพาะเลี้ยงเซลล์พืช: แหล่งส่วนผสมใหม่ แคร์ 2010, 28, 35–38.

100. Fremont, F. การเพาะเลี้ยงเซลล์: แนวทางนวัตกรรมสำหรับการผลิตสารออกฤทธิ์ของพืช; Russell Publishing Ltd.: Brasted สหราชอาณาจักร 2018

101. Gao, W.-Y.; วังเจ; หลี่ เจ; Wang, Q. การผลิตสารชีวมวลและสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพจากการเพาะเลี้ยงเซลล์แขวนลอยของ Panax Quinquefolium L. และ Glycyrrhiza Uralensis Fisch ในการผลิตสารชีวมวลและสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพโดยใช้เทคโนโลยีเครื่องปฏิกรณ์ชีวภาพ Springer: เบอร์ลิน/ไฮเดลเบิร์ก เยอรมนี 2014; หน้า 143–164.

102. บาเกรี เอฟ; ทาห์วิเลียน อาร์; คาริมี, น.; ชลาบี, ม.; Azami, M. Shikonin การผลิตโดยการเพาะเลี้ยงแคลลัสของ Onosma Bulbotrichom เป็นส่วนผสมทางเภสัชกรรม อิหร่าน. เจ. ฟาร์มา. ความละเอียด IJPR 2018, 17, 495 [PubMed]

103. กั๋ว ส.; ชาย, ส.; เกา ว.; หลิว เอช; จาง แอล; Xiao, P. การผลิตฟลาโวนอยด์และโพลีแซคคาไรด์โดยการเพิ่ม Elicitor ในกระบวนการเพาะเลี้ยงระดับเซลล์ที่แตกต่างกันของ Glycyrrhiza Uralensis Fisch แอคต้าฟิสิโอล. ปลูก. 2556, 35, 679–686. [ครอสรีฟ]

104. วัง QJ; เจิ้ง หจก.; สีมา, YH; หยวน HY; Wang, JW Methyl Jasmonate กระตุ้น 20-การผลิต Hydroxyecdysone ในเซลล์แขวนลอยของ 'Achyranthes Bidentata' พืช Omics 2013, 6, 116–120

105. บิมอนเต้ ม.; ติโต, อ.; คาโรล่า, อ.; บาร์บูโลวา, อ.; อาโพน, ฉ.; Colucci, G.; Cucchiara, ม.; Hill, J. Dolichos Cell Culture Extract เพื่อป้องกันความเสียหายจากรังสียูวี Cosmet Toilet 2014, 129, 46–56.

106. อิมพาราโต, G.; คาเซล, ซี; Scamardella, S.; อูร์ซิอูโอโล เอฟ; Bimonte, ม.; อาโพน, ฉ.; Colucci, G.; Netti, P. นวนิยายวิศวกรรมชั้นหนังแท้สำหรับการวิจัยความเสียหายจากแสงในหลอดทดลอง เจ. ทิชชู่ Eng. รีเจน ยา 2017, 11, 2276–2285. [ครอสรีฟ] [PubMed]

107. เวอร์ทูอานี เอส; เบเกลลี, อี.; สกาแลมบรา, อี; Malisardi, G.; โคเปตตี เอส; โทโซ, RD; Baldisserotto, อ.; Manfredini, S. การศึกษากิจกรรมและความคงตัวของ Verbascoside ซึ่งเป็นสารต้านอนุมูลอิสระชนิดใหม่ ในสูตรเฉพาะของเครื่องสำอางและเภสัชกรรม โมเลกุล 2011, 16, 7068–7080 [ครอสรีฟ]

108. บิมอนเต้ ม.; คาโรล่า, อ.; ติโต, อ.; บาร์บูโลวา, อ.; คารุชชี, เอฟ; Apone, F. Coffea Bengalensis สำหรับการต่อต้านริ้วรอยและการปรับสีผิว เครื่องสำอาง. ห้องน้ำ. 2554, 126, 644–650.

109. ยู, ว.; หมิง, Q.; หลิน บี; เราะห์มาน, เค; เจิ้ง, C.-J.; ฮัน, ต.; Qin, L. วัฒนธรรมการระงับเซลล์พืชสมุนไพร: การประยุกต์ใช้ทางเภสัชกรรมและกลยุทธ์ที่ให้ผลตอบแทนสูงสำหรับสารทุติยภูมิที่ต้องการ คริ. รายได้เทคโนโลยีชีวภาพ 2559, 36, 215–232. [ครอสรีฟ]

110. แบนาส น.; García-Viguera, C.; Moreno, DA Elicitation: เครื่องมือสำหรับการเสริมองค์ประกอบทางชีวภาพของอาหาร โมเลกุล 2014, 19, 13541–13563 [ครอสรีฟ]

111. วาสคอนซูเอโล่ อ.; Boland, R. ลักษณะทางโมเลกุลของระยะเริ่มต้นของการกระตุ้นสารทุติยภูมิในพืช วิทย์พืช. 2550, 172, 861–875. [ครอสรีฟ]

112. ฮัลเดอร์ ม.; ซาร์การ์ เอส; Jha, S. Elicitation: เครื่องมือทางเทคโนโลยีชีวภาพสำหรับการผลิตขั้นสูงของสารทุติยภูมิในวัฒนธรรมรากขน อังกฤษ วิทยาศาสตร์ชีวิต 2019, 19, 880–895. [ครอสรีฟ] [PubMed]

113. อุสมาน เอช.; อัลลาห์, แมสซาชูเซตส์; ม.ค. เอช; Siddiquah, อ.; Drouet, เอส; อันจุม, ส.; Giglioli-Guviarc'h, N.; ฮาโน่ ซี; Abbasi, BH ผลเชิงโต้ตอบของแสงสีเดียวสเปกตรัมกว้างต่อการผลิตสารพฤกษเคมี สารต้านอนุมูลอิสระ และกิจกรรมทางชีวภาพของการเพาะเลี้ยงแคลลัส Solanum Xanthocarpum โมเลกุล 2020, 25, 2201 [CrossRef] [PubMed]

114. ดาเลสซานโดร อาร์; โดซิโม, ที.; Graziani, G.; D'Amelia, V.; เดอ พัลมา, ม.; Cappetta, อี; Tucci, M. Abiotic เน้นการกระตุ้นให้เกิดประสิทธิผลของ Cardoon Calli ในฐานะโรงงานชีวภาพสำหรับการผลิตเมตาโบไลต์เฉพาะทาง สารต้านอนุมูลอิสระ 2022, 11, 1041 [CrossRef] [PubMed]

115. เฉิน ร.; หลี่ Q.; ตาล เอช.; เฉิน เจ; เซียว, ย.; แม่อาร์; เกา เอส; เซอร์เบ, พี; เฉิน ว.; Zhang, L. Gene-to-Metabolite Network สำหรับการสังเคราะห์ทางชีวภาพของ Lignans ใน MeJA-Elicited Isatis Indigotica Hairy Root Cultures ด้านหน้า. วิทย์พืช. 2015, 6, 952 [CrossRef]

116.เหวิน ท.; เฮา, ย.-จ.; อัน, X.-L.; อา.-ด.; ลี่, ย.-ร.; เฉิน เอ็กซ์; เปียว, X.-C.; เหลียน ม.-ล. การปรับปรุงการสะสมสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพในเซลล์เพาะเลี้ยงของกระดูกอ่อน Orostachys A. Bor. ผ่านการสกัดด้วยกรดซาลิไซลิกและผลของสารสกัดจากเซลล์ต่อฤทธิ์ทางชีวภาพ Ind. ผลิตภัณฑ์พืชผล 2019, 139, 111570 [CrossRef]

117. อัล คายรี, เจเอ็ม ; Naik, PM การผลิตสารชีวมวลและสารประกอบฟีนอลทางเภสัชกรรมที่เหนี่ยวนำโดย Elicitor ในการเพาะเลี้ยงเซลล์แขวนลอยของอินทผลัม (Phoenix Dactylifera L.) โมเลกุล 2020, 25, 4669. [CrossRef]

118. ดูรัน, MDL; ซาบาลา, กฟน.; Londoño การเพิ่มประสิทธิภาพ GAC ของการผลิตฟลาโวนอยด์ในการเพาะเลี้ยงเซลล์พืชของ Thevetia Peruviana ที่ดึงออกมาด้วย Methyl Jasmonate และ Salicylic Acid บราซ โค้ง. ไบโอล เทคโนโลยี 2021, 64, e21210022. [ครอสรีฟ]

119.ว.วงศ์วิชา; ทานากะ เอช; โชยามะ, วาย; Putalun, W. Methyl Jasmonate Elicitation ช่วยเพิ่มการผลิต Glycyrrhizin ใน Glycyrrhiza Inflata Hairy Roots Cultures Z. Für Naturforschung C 2011, 66, 423–428. [ครอสรีฟ]

120. โชจา เอเอ; ชีรัค, ซี; กันเจลี, อ.; Cheniany, M. การกระตุ้นการสะสมของสารประกอบฟีนอลิกและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระในการเพาะเลี้ยงในหลอดทดลองของ Salvia Tebesana Bunge ในการตอบสนองต่อ Nano-TiO2 และ Methyl Jasmonate Elicitors ลัทธิอวัยวะเนื้อเยื่อเซลล์พืช PCTOC 2022, 149, 423–440. [ครอสรีฟ]

121. พิไล แสงสุรีย์, ว.; สมบูรณ์, ต.; ทองลายล้อม, ป.; แก้วราชา, ป.; วงษา, ต.; คงบังเกิด อ.; Limmongkon, A. การเพิ่มประสิทธิภาพของสารประกอบ Stilbene และฤทธิ์ต้านการอักเสบของ Methyl Jasmonate และ Cyclodextrin Elicited Peanut Hairy Root Culture ลัทธิอวัยวะเนื้อเยื่อเซลล์พืช PCTOC 2561, 132, 165–179. [ครอสรีฟ]

122. Ayoola-Oresanya, IO; โซนิบาเร แมสซาชูเซตส์; Gueye บี; แอบเบอร์ตัน มอนแทนา; Morlock, GE การดึงเมตาโบไลท์ของสารต้านอนุมูลอิสระในสายพันธุ์ Musa ในการเพาะเลี้ยงหลอดทดลองโดยใช้ซูโครส อุณหภูมิ และกรด Jasmonic ลัทธิอวัยวะเนื้อเยื่อเซลล์พืช PCTOC 2021, 146, 225–236. [ครอสรีฟ]

123. โมสวัสดิ์ น.; กอลการ์ พี; ยูเซฟาร์ด, ม.; Javed, R. การปรับการเจริญเติบโตของแคลลัสและเมตาโบไลต์ทุติยภูมิในไทมัสชนิดต่างๆ และ Zataria Multiflora Micropropagated ภายใต้ความเครียดของอนุภาคนาโน ZnO เทคโนโลยีชีวภาพ แอป ชีวเคมี 2019, 66, 316–322. [ครอสรีฟ] [PubMed]

124. อาลี, อ.; โมฮัมหมัด เอส; ข่าน แม่; ราชา NI; อารีฟ ม.; คามิล อ.; Mashwani, Z.-R. อนุภาคนาโนเงินที่เพาะเลี้ยงแคลลัสในหลอดทดลองเพื่อการสะสมของสารชีวมวลและสารทุติยภูมิใน Caralluma Tuberculata อาร์ทิฟ Cells Nanomedicine Biotechnol. 2019, 47, 715–724. [ครอสรีฟ] [PubMed]

125. จุง, I.-M.; ราชกุมาร, G.; Thiruvengadam, M. ผลของอนุภาคนาโนเงินต่อการผลิตสารประกอบฟีนอลิกและกิจกรรมทางชีวภาพในวัฒนธรรมรากขนของ Cucumis anguria แอคต้าไบโอล. แขวน. 2018, 69, 97–109. [ครอสรีฟ]

126. จาเวด ร.; โมฮาเหม็ด เอ.; Yucesan, B.; Gürel, E.; เคาซาร์ อาร์; อนุภาคนาโน Zia, M. CuO มีอิทธิพลอย่างมากในการเพาะเลี้ยงในหลอดทดลอง สตีวิออลไกลโคไซด์และกิจกรรมต้านอนุมูลอิสระของหญ้าหวาน rebaudiana Bertoni ลัทธิอวัยวะเนื้อเยื่อเซลล์พืช PCTOC 2017, 131, 611–620. [ครอสรีฟ]

127. ซิโกเนียนู, IG; อัสเตเต, CE; Sabliov, CM Nanoparticles with Entrapped -Tocopherol: Synthesis, Characterization and Controlled Release. นาโนเทคโนโลยี 2008, 19, 105606 [CrossRef] [PubMed]

128. โครลิคก้า, อ.; โลจโควสกา, อี.; Staniszewska, I.; มาลินสกี้ อี.; Szafranek, J. การจำแนกสารทุติยภูมิในหลอดทดลองของ Ammi Majus ที่รักษาด้วย Elicitors ในการดำเนินการประชุมวิชาการนานาชาติ IV เรื่อง In Vitro Culture and Horticultural Breeding, Tampere, ฟินแลนด์, 2–7 กรกฎาคม 2543; หน้า 255–258.

129. ฟาซาล ฮ.; อับบาซี, BH; อาหมัด, น.; อาลี ม.; ชูใจต์ อาลี, เอส.; ขัน ​​น.; Wei, D.-Q. การผลิตอย่างยั่งยืนของสารชีวมวลและสารทุติยภูมิที่สำคัญทางอุตสาหกรรมในการเพาะเลี้ยงเซลล์ของ Selfheal (Prunella Vulgaris L.) ที่ได้จากอนุภาคนาโนเงินและทอง อาร์ทิฟ Cells Nanomedicine Biotechnol. 2562, 47, 2553–2561. [ครอสรีฟ] [PubMed]

130. หยาน Q.; หู, Z.; ตาล อาร์เอ็กซ์; Wu, J. การผลิตและการกู้คืน Diterpenoid Tanshinones อย่างมีประสิทธิภาพในการเพาะเลี้ยงรากขนของ Salvia Miltiorrhiza ด้วยการดูดซับในแหล่งกำเนิด การกระตุ้น และการทำงานกึ่งต่อเนื่อง เจ. ไบโอเทคอล. 2548, 119, 416–424. [ครอสรีฟ]

131. Shakeran, Z.; คีย์ฮานฟาร์ ม.; Ghanadian, M. Biotic Elicitation สำหรับการผลิต Scopolamine โดย Hairy Root Cultures of Datura Metel โมล ไบโอล ความละเอียด ชุมชน 2017, 6, 169.

132. ลู ม.; หว่อง เอช.; Teng, W. ผลของการกระตุ้นให้เกิดการผลิตซาโปนินในการเพาะเลี้ยงเซลล์ของ Panax Ginseng เซลล์พืช Rep. 2001, 20, 674–677. [ครอสรีฟ]

133. แชมส์-อาร์ดากานี ม.; เหมมาติ, ส.; Mohagheghzadeh, A. ผลของ Elicitors ต่อการเพิ่มประสิทธิภาพของการสังเคราะห์ทางชีวภาพของ Podophyllotoxin ในวัฒนธรรมแขวนลอยของ Linum Album ดารุ เจ. ฟาร์มา. วิทย์ 2548, 13, 56–60.

134. Palazón, J.; คูซิโด, RM; บอนฟิล ม.; มัลลอล, อ.; โมยาโน, อี.; โมราเลส ซี; Piñol, MT Elicitation of Panax Ginseng Transformed Root Phenotypes for the Improved Ginsenoside Production. Physiol พืช ชีวเคมี 2546, 41, 1019–1025. [ครอสรีฟ]

135. เมอร์ธี, ฮาวาย; ลี, อี.-เจ.; แป๊ก, K.-Y. การผลิตสารทุติยภูมิจากการเพาะเลี้ยงเซลล์และอวัยวะ: กลยุทธ์และแนวทางการปรับปรุงชีวมวลและการสะสมสารเมตาโบไลท์ ลัทธิอวัยวะเนื้อเยื่อเซลล์พืช PCTOC 2014, 118, 1–16. [ครอสรีฟ]

136. จาวิด อ.; กัมเป้ น.; เจลาน่า เอฟ; György, Z. การเพิ่มการสะสมของ Rosavins ใน Rhodiola Rosea L. พืชที่ปลูกในหลอดทดลองโดยการให้อาหารสารตั้งต้น พืชไร่นา 2564, 11, 2531 [CrossRef]

137. อาห์มาเดียน ชัสมี เอ็น.; ชารีฟี ม.; Behmanesh, M. Lignan Enhancement in Hairy Root Cultures of Linum Album โดยใช้ Coniferaldehyde และ Methylenedioxycinnamic Acid เตรียม ชีวเคมี เทคโนโลยีชีวภาพ 2559, 46, 454–460. [ครอสรีฟ]

138. คาร์ปปิเนน เค.; ฮกกะเน็น เจ; โทโลเนน, อ.; มัตติลา เอส; Hohtola, A. การสังเคราะห์ทางชีวภาพของ Hyperforin และ Adhyperforin จากสารตั้งต้นของกรดอะมิโนในวัฒนธรรมหน่อของ Hypericum Perforatum พฤกษเคมี 2550, 68, 1038–1045 [ครอสรีฟ]

139. จอง ซี-เอส; เมอร์ธี เอชเอ็น ; ฮาห์น, อี.-เจ.; แป๊ก, K.-Y. ปรับปรุงการผลิต Ginsenosides ในวัฒนธรรมแขวนลอยของโสมโดยกลยุทธ์การเติมเต็มปานกลาง เจ. ไบโอไซ. ไบโอเอ็ง. 2551, 105, 288–291. [ครอสรีฟ]

140. วู, C.-H.; เมอร์ธี เอชเอ็น ; ฮาห์น, อี.-เจ.; แป๊ก, K.-Y. ปรับปรุงการผลิตอนุพันธ์ของกรดคาเฟอีนในสารแขวนลอย Echinacea Purpurea โดยกลยุทธ์การเติมแบบปานกลาง โค้ง. ฟาร์มา ความละเอียด 2550, 30, 945–949. [ครอสรีฟ]

141. วังซี; อู๋ เจ; Mei, X. ปรับปรุงการผลิตและการปล่อย Taxol ใน Taxus ChinensisCell Suspension Cultures ด้วยตัวทำละลายอินทรีย์ที่เลือกและการป้อนน้ำตาลซูโครส เทคโนโลยีชีวภาพ โปรแกรม 2544, 17, 89–94. [ครอสรีฟ]

142. ยาดาฟ, ด.; แทนเวียร์ อ.; มัลวิยา, น.; Yadav, S. ภาพรวมและหลักการของวิศวกรรมชีวภาพ: ไดรเวอร์ของเทคโนโลยี Omics ในสาขาเทคโนโลยี Omics และวิศวกรรมชีวภาพ; เอลส์เวียร์: อัมสเตอร์ดัม เนเธอร์แลนด์ 2018; หน้า 3–23.

143. กอนซาลเวส เอส; Romano, A. การผลิตสารทุติยภูมิของพืชโดยใช้เครื่องมือเทคโนโลยีชีวภาพ ที่สอง. Metab.-แหล่งที่มา Appl. 2018, 5, 81–99.

144. วาสเกซ, SM; อบาสคาล GGW; ลีล, CE; คาร์ดิโน, จอร์เจีย; Lara, SG การประยุกต์ใช้วิศวกรรมการเผาผลาญเพื่อเพิ่มเนื้อหาของอัลคาลอยด์ในพืชสมุนไพร เมตาบ อังกฤษ ชุมชน 2022, 14, e00194. [ครอสรีฟ] [PubMed]

145. เวอร์ปูร์ต, ร.; คอนติน, อ.; Memelink, J. เทคโนโลยีชีวภาพสำหรับการผลิตสารทุติยภูมิของพืช ไฟโตเคม. รายได้ 2002, 1, 13–25 [ครอสรีฟ]

146. Oksman-Caldentey, K.-M.; Arroo, R. กฎระเบียบของเมแทบอลิซึมของ Tropane Alkaloid ในพืชและการเพาะเลี้ยงเซลล์พืช ในวิศวกรรมเมตาบอลิซึมของเมแทบอลิซึมทุติยภูมิของพืช; สปริงเกอร์: เบอร์ลิน/ไฮเดลเบิร์ก เยอรมนี 2543; หน้า 253–281.

147. จง, J.-J. การเพาะเลี้ยงเซลล์พืชเพื่อผลิต Paclitaxel และ Taxane อื่นๆ เจ. ไบโอไซ. ไบโอเอ็ง. 2545, 94, 591–599. [ครอสรีฟ] [PubMed]

148. ซิงห์ บี; Sharma, RA สารทุติยภูมิของพืชสมุนไพร ชุดเล่มที่ 4: คุณสมบัติทางเภสัชวิทยาทางชาติพันธุ์ กิจกรรมทางชีวภาพ และกลยุทธ์การผลิต; John Wiley & Sons: Hoboken, นิวเจอร์ซีย์, สหรัฐอเมริกา, 2020; ISBN 3-527-34732-1

149. กาลิห์ ประชาสัมพันธ์; Esyanti, RR ผลของการตรึงต่อการเจริญเติบโตของเซลล์และเนื้อหาอัลคาลอยด์ในการเพาะเลี้ยงเซลล์รวมของ Eurycoma Longifolia Jack Int J Chem Env. Biol Sci 2014, 2, 90–93.

150. จาง พ.; โจว ว.; วังพี; วัง, ล.; Tang, M. การเพิ่มประสิทธิภาพการผลิตไคโตซาเนสโดยการตรึงเซลล์ของ Gongronella Sp. จจ. บราซ เจ.ไมโครไบโอล. 2556, 44, 189–195. [ครอสรีฟ] [PubMed]

151.ด.เปรมเจษ; Tachibana, S. การผลิต Podophyllotoxin โดยการเพาะเลี้ยงเซลล์ตรึงของ Juniperus Chinensis ปาก. J Biol Sci 2004, 7, 1130–1134

152.ม.วานิสรี; ลี, C.-Y.; ลอ, ส.-ฉ.; นาลาเวด, เอสเอ็ม; หลิน, ไซย่า; ไช่, H.-S. การศึกษาการผลิตสารทุติยภูมิที่สำคัญบางชนิดจากพืชสมุนไพรโดยการเพาะเลี้ยงเนื้อเยื่อพืช บอท บูล อะคาเดมี ซิน 2004, 45, 1–22.

153. ฮุสเซน MS; ฟารีด เอส; อันซารี เอส; เราะห์มาน, แมสซาชูเซตส์; อาหมัด, IZ; Saeed, M. แนวทางปัจจุบันสู่การผลิตสารทุติยภูมิจากพืช เจ. ฟาร์มา. วิทย์ชีวภาพ. 2012, 4, 10. [ครอสรีฟ]

154. มาลิก ส.; ฮอสเซน มีร์จาลิลี, ม.; เฟตต์-เนโต เอจี; มาซซาเฟรา พี; Bonfill, M. อาศัยอยู่ระหว่างสองโลก: ระบบวัฒนธรรมสองเฟสสำหรับการผลิตสารทุติยภูมิของพืช คริ. รายได้เทคโนโลยีชีวภาพ 2013, 33, 1–22. [ครอสรีฟ]

155. ลีพาร์สันส์ CW; Shuler, ML ผลกระทบของ Ajmalicine Spiking และระยะเวลาการเติมเรซินต่อการผลิต Indole Alkaloids จากการเพาะเลี้ยงเซลล์ Catharanthus Roseus เทคโนโลยีชีวภาพ ไบโอเอ็ง. 2545, 79, 408–415. [ครอสรีฟ]

156. โคมาไรอาห์ ป.; รามกฤษณะ, ส.; เรดดานนา พี; Kishor, PK ปรับปรุงการผลิตของ Plumbagin ในเซลล์ตรึงของ Plumbago Rosea โดยการกระตุ้นและการดูดซับในแหล่งกำเนิด เจ. ไบโอเทคอล. 2546, 101, 181–187. [ครอสรีฟ]

157. Klvana, M.; เลโกรส อาร์; Jolicoeur, M. In Situ, กลยุทธ์การสกัดส่งผลต่อฟลักซ์การผลิต Benzophenanthridine Alkaloid ในวัฒนธรรมแขวนลอยของ Eschscholtzia Californica เทคโนโลยีชีวภาพ ไบโอเอ็ง. 2548, 89, 280–289. [ครอสรีฟ] [PubMed]

158. เกา, ม.-บ.; จาง ดับเบิลยู; Ruan, C. ปรับปรุงการผลิต Taxuyunnanine C อย่างมีนัยสำคัญในการเพาะเลี้ยงเซลล์แขวนลอยของ Taxus Chinensis โดยกระบวนการเข้มข้นของการดึงซ้ำ การให้อาหารซูโครส และการดูดซับในแหล่งกำเนิด เวิลด์ เจ. ไมโครไบโอล. เทคโนโลยีชีวภาพ 2554, 27, 2271–2279. [ครอสรีฟ]

159. เชียง, ล.; อับดุลลาห์ แมสซาชูเซตส์ ปรับปรุงการผลิตแอนทราควิโนนจากการเพาะเลี้ยงเซลล์แขวนลอยโมรินดาเอลลิปติกาที่บำบัดด้วยตัวดูดซับในกลยุทธ์สื่อการผลิต กระบวนการไบโอเคมี 2550, 42, 757–763. [ครอสรีฟ]

ข้อจำกัดความรับผิดชอบ/หมายเหตุของผู้จัดพิมพ์:ถ้อยแถลง ความคิดเห็น และข้อมูลที่มีอยู่ในสิ่งพิมพ์ทั้งหมดเป็นเพียงของผู้แต่งและผู้ร่วมให้ข้อมูลเท่านั้น ไม่ใช่ของ MDPI และ/หรือบรรณาธิการ MDPI และ/หรือบรรณาธิการขอปฏิเสธความรับผิดชอบต่อการบาดเจ็บต่อบุคคลหรือทรัพย์สินอันเป็นผลมาจากแนวคิด วิธีการ คำสั่ง หรือผลิตภัณฑ์ใดๆ ที่อ้างถึงในเนื้อหา

【สำหรับข้อมูลเพิ่มเติม:george.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】