Acylated phenylethanoid glycosides, echinacoside และ acteoside จาก Cistanche tubulosa ช่วยเพิ่มความทนทานต่อกลูโคสในหนู
Mar 16, 2022
สำหรับข้อมูลเพิ่มเติม:ali.ma@wecistanche.com
เชิงนามธรรม
ฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์,เอ็กไคนาโคไซด์(1) และแอคทีโอไซด์(2) องค์ประกอบหลักในลำต้นของCistanche tubulosa(Orobanchaceae) ยับยั้งการเพิ่มระดับน้ำตาลในเลือดภายหลังตอนกลางวันในหนูที่ได้รับแป้งในปริมาณ 250–500 มก./กก. PO สารประกอบเหล่านี้ (1 และ 2) ยังช่วยเพิ่มความทนทานต่อกลูโคสในหนูที่ได้รับแป้งหลังจาก 2 สัปดาห์ของการบริหารอย่างต่อเนื่องในปริมาณของ 125 และ/หรือ 250 มก./กก./วัน โดยไม่ทำให้น้ำหนักตัวหรือการบริโภคอาหารเปลี่ยนแปลงอย่างมีนัยสำคัญ นอกจากนี้องค์ประกอบหลายอย่างจากCistanche tubulosaซึ่งรวมถึง 1 (IC50=3.1 lM), 2 (1.2 lM), isoacteoside (3, 4.6 lM), 20-acetylacteoside (4, 0.071 lM),tubulosides A (5, 8.8 lM) และ B (9, 4.0 lM), syringalide A3-OaL-rhamnopyranoside (10, 1.1 lM), campneoside I (13, 0.53 lM) และ kankanoside J1 (14, 9.3 lM) แสดงให้เห็นฤทธิ์ยับยั้งเลนส์ aldose reductase ของหนู โดยเฉพาะอย่างยิ่ง ศักยภาพของสารประกอบ 4 มีความคล้ายคลึงกับของ epalrestat (0.072 lM) ซึ่งเป็นตัวยับยั้ง aldose reductaseinhibitor
คีย์เวิร์ด เอ็กไคนาโคไซด์, แอคทีโอไซด์, ผลการปรับปรุงความทนทานต่อกลูโคส, สารยับยั้ง Aldose reductase,Cistanche tubulosa
คลิกเพื่อดูประโยชน์และผลข้างเคียงของ Cistanche tubulosa และผลิตภัณฑ์ Cistanche
บทนำ
ฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์(PhGs) เป็นสารประกอบฟีนอลชนิดหนึ่งที่มีโครงสร้าง b-glucopyranoside ซึ่งมีมอยอิตีไฮดรอกซีฟีนิลเอทิลเป็นอะไกลโคน สารประกอบเหล่านี้มักประกอบด้วยหมู่แทนที่ เช่น กรดอะโรมาติก (เช่น กรดซินนามิก กรดคูมาริก กรดคาเฟอีน กรดเฟรูลิก กรดไอโซเฟรูลิก ฯลฯ) และ/หรือน้ำตาลชนิดต่างๆ (เช่น แรมโนส ไซโลส อะไพโอส อาราบิโนส เป็นต้น) ที่ติดอยู่กับกากกลูโคสที่ตกค้างผ่านเอสเทอร์หรือไกลโคซิดิกลิงค์ ตามลำดับ แม้ว่า PhGs จะกระจายอยู่ทั่วไปในอาณาจักรพืช แต่ส่วนใหญ่พบในวงศ์ Scrophulariaceae, Oleaceae, Plantaginaceae, Lamiaceae และ Orobnchaceae family [1–3]เอ็กไคนาโคไซด์(1) [4, 5]และแอคทีโอไซด์(2 เรียกอีกอย่างว่า verbascoside, kusaginin, andorobanchin) [6–9] เป็นตัวแทนของ PhGs ที่ได้รับการศึกษามาเป็นอย่างดี และได้รับรายงานว่ามีคุณสมบัติออกฤทธิ์ทางชีวภาพที่สำคัญหลายอย่าง เช่น ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ ปกป้องระบบประสาท การกำจัดอนุมูลอิสระไนตริกออกไซด์ ต้านตับ และโรคกระดูกพรุน [1–3, 10–14].
ก่อนหน้านี้ เราได้รายงานการระบุและคุณสมบัติทางชีวภาพขององค์ประกอบจากลำต้นของCistanche tubulosa(Schrenk) R. Wight (Orobanchaceae) [15–19], ส่วนประกอบหลักคือ 1 และ 2 เราเปิดเผยว่า PhGs เหล่านี้แสดงให้เห็นถึงกิจกรรมของ vasorelaxant ในหลอดเลือดแดงใหญ่ที่ทรวงอกที่แยกได้ซึ่งหดตัวโดย noradrenaline [15] ลำต้นของCistanche tubulosa(Kanka-nikujuyou ในภาษาญี่ปุ่น) มีการใช้ตามประเพณีในพื้นที่ทิเบตเพื่อส่งเสริมการไหลเวียนโลหิต [20, 21] และการค้นพบนี้ให้หลักฐานทางวิทยาศาสตร์สำหรับการใช้แบบดั้งเดิมของCistanche tubulosa.
การศึกษาต่อเนื่องเกี่ยวกับคุณสมบัติออกฤทธิ์ทางชีวภาพของวัสดุจากพืชนี้เปิดเผยว่า PhGs หลักเหล่านี้มีฤทธิ์ลดน้ำตาลในเลือดและปรับปรุงความทนทานต่อกลูโคสในหนูที่ได้รับสารในแป้ง นอกจากนี้ PhGs บางตัวที่แยกได้จากCistanche tubulosa(1–18) พบว่ามีฤทธิ์ยับยั้งโพเทนทอลโดสรีดักเตส
เอ็กไคนาโคไซด์ในCistanche tubulosa
ผลลัพธ์และการอภิปราย
ก่อนหน้านี้ [15] เราได้รายงานคุณสมบัติการแยกและออกฤทธิ์ทางชีวภาพของส่วนประกอบของสารสกัดเมทานอลของลำต้นแห้งจากCistanche tubulosaซึ่งรวมถึง 1, 2, ไอโซแอคทีโอไซด์ (3), 20-อะซีติแลคติโอไซด์ (4), ทูบูโลไซด์ A (5) และ B (9) และซาลิโดรไซด์ (18) Wiedemanninoside C (6), kankanosides H1(7) and H2 (8) syringalide A 30-OaL-rhamnopyranoside(10), kankanoside I (11), cistantubuloside A (12), campneoside I (13) และ kankanosides J1 (14), J2 (15), K1 (16) และ K2 (17) ถูกแยกเพิ่มเติมจากต้นสดของวัสดุเดียวกัน [16, 17] (รูปที่ 1)
ขั้นแรก ได้ตรวจสอบผลกระทบของ PhGs หลัก (1 และ 2) ต่อการเพิ่มขึ้นของระดับน้ำตาลในเลือดในตอนกลางวันในหนูที่ได้รับแป้ง กิจกรรมของทั้ง 1 และ 2 ในขนาด 250–500 มก./กก. po มีนัยสำคัญ (ตารางที่ 1) ในการทดลองนี้ ตัวยับยั้งเอ-กลูโคซิเดสในลำไส้คืออะคาร์โบส ซึ่งถูกใช้เป็นกลุ่มควบคุมเชิงบวก แสดงการยับยั้งที่สมเหตุสมผล (ตารางที่ 1)
เพื่อตรวจสอบผลของข้อ 1 และ 2 ต่อความทนทานต่อกลูโคส ตรวจระดับน้ำตาลในเลือดในหนูที่ได้รับแป้งหลังจากให้ยาอย่างต่อเนื่อง 2 สัปดาห์ ปริมาณ 125 และ/หรือ 250 มก./กก./วัน โดยทั้ง 1 และ 2 ความทนทานต่อกลูโคสดีขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ (ตารางที่ 2) โดยไม่เปลี่ยนแปลงน้ำหนักตัวหรือการบริโภคอาหารอย่างมีนัยสำคัญ (ไม่แสดงข้อมูล) ผลลัพธ์เหล่านี้ชี้ให้เห็นว่า 1 และ 2 มีประสิทธิภาพในการยับยั้งการเพิ่มระดับกลูโคสภายหลังตอนกลางวันและปรับปรุงความทนทานต่อกลูโคส
เพื่อตรวจสอบรูปแบบการกระทำของกิจกรรมลดน้ำตาลในเลือดเหล่านี้ ได้ตรวจสอบผลของ 1 และ 2 ต่อเอ-กลูโคซิเดสในลำไส้เล็กของหนู มอลตาส และซูคราส พร้อมกันนั้นผลการยับยั้งขององค์ประกอบอื่นๆ(3–18) จากCistanche tubulosaกับเอนไซม์เหล่านี้ถูกตรวจสอบด้วย ก่อนหน้านี้เราระบุเกลือซัลโฟเนียมน้ำตาลบาง ๆ คือซาลาซินอล (สารยับยั้งการเกิดกลูโคซิเดสตามธรรมชาติที่มีศักยภาพมากที่สุดชนิดหนึ่ง; IC50=6.0 และ 1.3 ลิตรโมลาร์ที่ต่อต้านมอลเทสและซูโครส ตามลำดับ) [22–24] ซึ่ง ยังถูกใช้เป็นตัวควบคุมเชิงบวกในการศึกษานี้ 1 (IC50=149และ 174 lM) และ 2 (188 และ 152 lM) แสดงฤทธิ์ยับยั้งเอนไซม์ที่คล้ายกัน (ตารางที่ 3) อย่างไรก็ตาม แอคติวิตีของพวกมันน้อยกว่ากลุ่มควบคุมเชิงบวกอย่างมาก, ซาลาซินอลและอะคาโบส (IC50=6.0 และ 1.3, และ 1.7 และ1.5 ลิตรโมลาร์ ตามลำดับ) เป็นที่น่าสังเกตว่าในบรรดา PhGs ที่แยกได้ 3 (IC50=70.4 และ 152 lM) และ 9(88.2 และ 175 lM) ซึ่งมี trans-caffeoyl moietyat 60- ตำแหน่งของกลูโคราโนซิลชั้นใน ส่วนหนึ่ง ยับยั้งมอลเทสและซูคราสในระดับปานกลาง ในขณะที่เรจิโอไอโซเมอร์ 2 และ 4 ([300 lM) ของพวกมันซึ่งมีคาเฟอีนอยู่ที่ตำแหน่ง 40- พบว่ามีฤทธิ์ต้านเอนไซม์เหล่านี้น้อยลง
ActerosideในCistanche tubulosa
กิจกรรมการยับยั้งของ PhGs ต่อ maltase ในลำไส้ของมนุษย์ยังได้รับการตรวจสอบใน microsomalfraction ด้วยเหตุนี้ จึงพบว่า 1 (IC50=125 lM), 2 (154 lM), 3(117 lM), 5 (63 lM), 9 (139 lM) และ 15 (168 lM) ถูกพบว่าแสดงกิจกรรมนี้ . อย่างไรก็ตาม สารประกอบเหล่านี้มีฤทธิ์น้อยกว่าอะคาร์โบส (15.2 lM) อย่างมาก
ก่อนหน้านี้ เราระบุฟลาโวนอยด์หลายชนิด [25–31], สติลบีนอยด์ [25, 32], อนุพันธ์ของกรดควินิก [30] และเทอร์พีนอยด์ [33] เป็นสารยับยั้งอัลโดสรีดักเตสที่มีศักยภาพ ในงานนี้ ยังได้ตรวจสอบผลการยับยั้งของ PhGs (1-18) onrat lens aldose reductase ที่แยกได้ Aldosereductase เป็นที่ทราบกันดีว่าเป็นเอนไซม์สำคัญที่กระตุ้นการลดน้ำตาลกลูโคสให้เป็นซอร์บิทอลในกระบวนการผลิตโพลิออล ซอร์บิทอลไม่แพร่กระจายอย่างรวดเร็วผ่านเยื่อหุ้มเซลล์ และการสะสมของซอร์บิทอลภายในเซลล์มีส่วนเกี่ยวข้องกับภาวะแทรกซ้อนเรื้อรังของโรคเบาหวาน เช่น ต้อกระจก [25]
ขั้นแรกให้สกัดเมทานอลจากลำต้นสดของCistanche tubulosaพบว่าแสดงให้เห็นการออกฤทธิ์ในการยับยั้งที่มีศักยภาพ (IC{{0}}.8 lg/mL) ในบรรดา PhGs ที่แยกได้ พบกิจกรรมการยับยั้งเลนส์อัลโดสรีดักเตสของหนูด้วย 1 (IC50=3.1 lM), 2 (1.2 lM), 3 (4.6 lM), 4 (0.{{24 }}71 lM), 5 (8.8 lM), 9 (4.0 lM), 10 (1.1 lM), 13 (0.53 lM) และ 14 (9.3 lM) (ตารางที่ 3) สารประกอบ 4, โดยเฉพาะอย่างยิ่ง, แสดงการออกฤทธิ์ที่มีศักยภาพมากที่สุด, ซึ่งเทียบเท่ากับการออกฤทธิ์ของอีพัลเรสแตท (0.0072 lM), ตัวยับยั้งอัลโดส รีดักเตสที่ใช้ทางคลินิก
สรุปแล้ว,เอ็กไคนาโคไซด์(1) และแอคทีโอไซด์(2) เอก PhGs จากต้นกำเนิดของCistanche tubulosaพบว่าสามารถยับยั้งการเพิ่มขึ้นของระดับน้ำตาลในเลือดภายหลังตอนกลางวันในหนูที่ได้รับแป้งในขนาด 250–500 มก./กก. โดย PhGs ทั้งสองชนิดนี้ยังยับยั้งระดับน้ำตาลในเลือดในหนูที่ได้รับแป้งอย่างมีนัยสำคัญหลังจากให้ยา 2 สัปดาห์ที่ขนาด 125 และ/หรือ 250 มก./กก./วัน โดยไม่ทำให้น้ำหนักตัวหรือการบริโภคอาหารเปลี่ยนแปลงอย่างมีนัยสำคัญ ผลลัพธ์เหล่านี้ชี้ให้เห็นว่า 1 และ 2 มีประสิทธิภาพไม่เพียงแต่ในการยับยั้งระดับกลูโคสภายหลังตอนกลางวัน แต่ยังช่วยปรับปรุงความทนทานต่อกลูโคสด้วย อย่างไรก็ตาม กิจกรรมการยับยั้งเอ-กลูโคซิเดสของพวกมันไม่สมควรได้รับความสนใจ ดังนั้นการยับยั้ง a-glucosidase แทบไม่มีส่วนทำให้เกิดฤทธิ์ลดน้ำตาลในเลือด ควรศึกษารูปแบบการดำเนินการโดยละเอียดเพิ่มเติม ในบรรดา PhGs ที่แยกได้ 1–3, 5, 9 และ 15 ยับยั้ง a-glucosidase ในลำไส้ของหนูและมนุษย์ในระดับปานกลาง ตรงกันข้ามกับการยับยั้งในระดับปานกลาง PhGs 1-5, 9, 10, 13 และ 14 สามารถยับยั้งเลนส์หนู aldose reductase ได้อย่างมีประสิทธิภาพ โดยเฉพาะอย่างยิ่ง แอคติวิตีของสารประกอบ 4 มีขนาดใกล้เคียงกับของอีพัลเรสแตท ซึ่งเป็นตัวยับยั้งที่ใช้ทางคลินิก
วิธีทดลอง
วัสดุปลูก
ลำต้นของCistanche tubulosaปลูกที่ Urumqi มณฑล Xinjiang ประเทศจีน ในเดือนกันยายน 2550 วัสดุจากพืชถูกระบุโดยหนึ่งในผู้เขียน (X. Jia ประธานสถาบัน Xinjiang Institute of Chinese Materia Medica และ Ethnodrug) ตัวอย่างใบสำคัญของพืชนี้มีอยู่ในไฟล์ของเรา ห้องปฏิบัติการ.
สัตว์
หนู ddY เพศผู้ (6 หรือ 10 สัปดาห์) ถูกซื้อจาก KiwaLaboratory Animal Co., Ltd., Wakayama, Japan สัตว์เหล่านี้ถูกเลี้ยงไว้ที่อุณหภูมิคงที่ 23 ± 2 องศา จากนั้นจึงป้อนอาหารในห้องปฏิบัติการมาตรฐาน (MF;Oriental Yeast Co., Ltd., Tokyo, Japan) สัตว์ถูกอดอาหารเป็นเวลา 20-24 ชั่วโมงก่อนเริ่มการทดลอง แต่ได้รับอนุญาตให้เข้าถึงน้ำประปาได้ฟรี การทดลองทั้งหมดดำเนินการกับหนูเมาส์ที่มีสติสัมปชัญญะเว้นแต่จะระบุไว้เป็นอย่างอื่น โปรโตคอลการทดลองได้รับการอนุมัติโดยคณะกรรมการวิจัยสัตว์ทดลองที่มหาวิทยาลัยคินกิ
ผลการยับยั้งของ 1 และ 2 ต่อระดับน้ำตาลในเลือดในหนูที่บรรจุแป้ง
ของผสมของแต่ละตัวอย่างทดสอบและแป้ง (1 กรัม/กก.) ที่แขวนลอยในสารละลายอะคาเซีย 5 เปอร์เซ็นต์ (น้ำหนัก/ปริมาตร) (20 มล./กก.) ถูกฉีดให้หนูที่อดอาหาร (6 วัตต์) ตัวอย่างเลือด (โดยประมาณ 0.1 มล.) ถูกเก็บจาก infraorbital venousplexus ภายใต้การระงับความรู้สึกด้วยอีเทอร์ 0.5, 1 และ 2 ชั่วโมงหลังการบริหารช่องปาก เลือดที่เก็บรวบรวมถูกผสมทันทีกับเฮปารินโซเดียม (5 หน่วย/หลอด) หลังจากการปั่นแยกตัวอย่างเลือด ระดับกลูโคสในพลาสมาถูกกำหนดด้วยเอนไซม์โดยการทดสอบ Glucose CII Wako (Wako Pure Chemical Industries Ltd., Osaka, Japan) ลำไส้ใช้ a-glucosidase inhibitor acarbose เป็นสารประกอบ areference
ผลการปรับปรุงความทนทานต่อกลูโคสหลังจาก 2 สัปดาห์การบริหาร 1 และ 2 ในหนูที่บรรจุแป้ง
แต่ละตัวอย่างทดสอบถูกบริหารให้วันละครั้ง (10:00-12:00) เป็นเวลา 2 สัปดาห์ถึง 10-หนูอายุหนึ่งสัปดาห์ที่ได้รับอาหารมาตรฐานในห้องปฏิบัติการ (MF; Oriental Yeast จำกัด.). วัดน้ำหนักตัวทุกวันก่อนให้ตัวอย่างทดสอบ หลังจากการอดอาหารเป็นเวลา 20 ชั่วโมง สารละลายแป้ง (1 กรัม/กก.) ถูกบริหารให้หนูเมาส์ที่ 20 มล./กก. โดยวิธีเดียวกันนี้ เก็บตัวอย่างเลือด (โดยประมาณ 0.1 มล.) และกำหนดระดับกลูโคสในพลาสมาตามที่บรรยายไว้ ข้างบน.
ผลการยับยั้งต่อเอ-กลูโคซิเดสในลำไส้ของหนู
การทดลองดำเนินการตามวิธีการที่อธิบายไว้ในรายงานก่อนหน้าของเราโดยมีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย[23, 24] ดังนั้น เยื่อเมมเบรนเส้นขอบแปรงขนาดเล็กของหนูแรทจึงถูกเตรียมและสารแขวนลอยของพวกมันใน 0.1 Mmaleate buffer (pH 6.0) ถูกใช้เป็นกลูโคซิเดสในลำไส้เล็กของมอลเทสและซูคราส ตัวอย่างทดสอบถูกละลายในไดเมทิลซัลฟอกไซด์ (DMSO) และสารละลายที่เป็นผลลัพธ์ถูกเจือจางด้วยบัฟเฟอร์มาเลเอต 0.1 โมลาร์เพื่อเตรียมสารละลายตัวอย่างทดสอบ (ความเข้มข้นของ DMSO 10 เปอร์เซ็นต์) สารละลายอะซับสเตรตในบัฟเฟอร์มาเลเอต (มอลโตส 74 mM, ซูโครส 74 mM, 50 lL), สารละลายตัวอย่างทดสอบ (25 lL) และสารละลายของเอนไซม์ (25 lL) ถูกผสมที่ 37 C เป็นเวลา 30 นาที จากนั้นให้ความร้อนทันทีโดยการต้ม น้ำเป็นเวลา 2 นาทีเพื่อหยุดปฏิกิริยา ความเข้มข้นของกลูโคสถูกกำหนดโดยวิธีกลูโคสออกซิเดส ความเข้มข้นสุดท้ายของ DMSO ในสารละลายทดสอบเท่ากับ 2.5 เปอร์เซ็นต์ และตรวจพบว่าไม่มีอิทธิพลของ DMSO ต่อกิจกรรมการยับยั้ง ใช้สารยับยั้ง a-glucosidase ในลำไส้ acarbose และ salacinol เป็นสารประกอบอ้างอิง
ผลการยับยั้งมอลเทสในลำไส้ของมนุษย์
ไมโครโซมลำไส้เล็กของมนุษย์ (ชุด MIC318017 ซื้อจาก BIOPREDIC International, Rennes,France) ใน 0.1 M Maleate buffer (pH 6.0) ถูกใช้เพื่อกำหนดกิจกรรมของ a-glucosidase ในลำไส้เล็กของมอลตาส . โดยผ่านขั้นตอนที่คล้ายคลึงกัน ผลของแอคติวิตีการยับยั้งมอลตาเซนถูกวัดตามที่บรรยายไว้ข้างต้น
ผลการยับยั้งต่อเลนส์หนู aldose reductase
การทดลองดำเนินการตามวิธีการที่อธิบายไว้ในรายงานก่อนหน้าของเรา [25–33] โดยมีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย ดังนั้น ของเหลวเหนือตะกอนของเลนส์โฮโมจีเนตของหนูจึงถูกใช้เป็นเอนไซม์แบบหยาบ สารแขวนลอยของเอนไซม์ถูกเจือจางเพื่อผลิตนิโคตินาไมด์ อะดีนีน ไดนิวคลีโอไทด์ ฟอสเฟต (NADP) ประมาณ 2 นาโนโมล/หลุมในปฏิกิริยาต่อไปนี้ ส่วนผสมในการฟักไข่มีบัฟเฟอร์ฟอสเฟต 135 mM (pH 7.0), Li2SO4100 mM, nicotinamide adenine dinucleotidephosphate (NADPH) ที่ลดลง 0.03 mM, DL-glyceraldehyde 1 mMas สารตั้งต้นและ เศษส่วนของเอนไซม์ 20 ล. พร้อมตัวอย่างการทดสอบ ปริมาตรรวม 100 ล. ปฏิกิริยาเริ่มต้นโดยการเติม NADPH ที่ 30 C หลังจาก 30 นาที ปฏิกิริยาหยุดโดยการเพิ่ม 30 lL ของ HCl0.5 M จากนั้น 100 lL ของ NaOH 6 M ที่มี imidazole10 mM ถูกเติม และสารละลายคือ ให้ความร้อนที่ 60 C เป็นเวลา 20 นาทีเพื่อแปลง NADP เป็นผลิตภัณฑ์เรืองแสง วัดการเรืองแสงโดยใช้เครื่องอ่านไมโครเพลทเรืองแสง (SH-9000, CORONA) ที่ความยาวคลื่นกระตุ้น 360 นาโนเมตร และความยาวคลื่นการปล่อย 460 นาโนเมตร ตัวอย่างทดสอบแต่ละตัว ถูกละลายใน DMSO การวัดถูกดำเนินการซ้ำกัน และค่า IC50 ถูกกำหนดแบบกราฟิก epalrestat สารยับยั้ง aldose reductase ถูกใช้เป็นสารประกอบอ้างอิง
สถิติ
ค่าถูกแสดงเป็นค่าเฉลี่ย± SEM สำหรับการวิเคราะห์ทางสถิติ ใช้การวิเคราะห์ความแปรปรวนทางเดียวตามด้วยการทดสอบของ Dunnett การตอบรับ งานนี้ได้รับการสนับสนุนส่วนหนึ่งโดย Grant-in-Aid for Scientific Research โดย Japan Society for the Promotion of Science (JSPS) KAKENHI ให้สิทธิ์หมายเลข 24590153 และ สมาคมการแพทย์ญี่ปุ่น-จีนให้การสนับสนุนทางการเงิน
จาก: 'Acylated phenylethanoid glycosides,เอ็กไคนาโคไซด์, และแอคทีโอไซด์จากCistanche tubulosaปรับปรุงความทนทานต่อกลูโคสในหนูโดย Toshio Morikawa, et al
---J นัท เมด (2014) 68:561–566 DOI 10.1007/s11418-014-0837-9
อ้างอิง
1. Jime´nez C, Riguera R (1994) Phenylethanoid glycosides ในพืช: โครงสร้างและกิจกรรมทางชีวภาพ Nat Prod Rep 11:591–606
2. Fu G, Pang H, Wong YH (2008) phenylethanoid glycosides ที่เกิดขึ้นตามธรรมชาติ: นำไปสู่การรักษาแบบใหม่ Curr Med Chem 15:2592–2613
3. He J, Hu XP, Zeng Y, Li Y, Wu HQ, Qiu RZ, Ma WJ, Li T, Li CY, He ZD (2011) การวิจัยขั้นสูงเกี่ยวกับแอคทีโอไซด์สำหรับเคมีและฤทธิ์ทางชีวภาพ J Asian Nat Prod Res 13:449–464
4. Stoll A, Renz J, Brack A (1950) Isolierung และ konstitution des echinacosids, eines glykosids aus den wurzeln von Echinacea angustifolia DC 6. mitteilung u¨ber antibakterielle stoffe Helv Chim Acta 33:1877–1893
5. Becker H, Hsieh WC, Wylde R, Laffite C, Andary C (1982) โครงสร้างของเอ็กไคนาโคไซด์. Z Naturforsch C: Biosci 37C:351–353
6. Scarpati ML, Dell MF (1963) การแยกจาก Verbascum sinuatum ของกลูโคไซด์ใหม่ 2 ชนิด คือ verbascoside และ isoverbascoside แอน ชิม 53:356–367
7. Birkofer L, Kaiser C, Thomas U (1968) เอสเทอร์น้ำตาล IV.แอคทีโอไซด์และนีโอแอกทีโอไซด์ เอสเทอร์น้ำตาลจาก Syringa vulgaris Z Naturforsch, B: Chem Sci 23:1051–1058
8. Andary C, Wylde R, Laffite C, Privat G, Winternitz F (1982) โครงสร้างของ varbascoside และ orobanchoside, เอสเทอร์น้ำตาลกรดคาเฟอีนจาก Orobanche rapum-genistae ไฟโตเคมี 21:1123–1127
9. Sakurai A, Kato T (1983) ไกลโคไซด์ใหม่ kusaginin ที่แยกได้จาก Clerodendron trichotomum Bull Chem Soc Jpn 56:1573–1574
10. Lee KJ, Woo ER, Choi CY, Shin DW, Lee DG, คุณ HJ, Jeong HG (2004) ผลการป้องกันของแอคทีโอไซด์ต่อความเป็นพิษต่อตับที่เกิดจากคาร์บอนเตตระคลอไรด์ วิทย์ชีวิต 74:1051–1064
11. Jia C, Shi H, Jin W, Zhang K, Jiang Y, Zhao M, Tu P (2009) การเผาผลาญของเอ็กไคนาโคไซด์สารต้านอนุมูลอิสระที่ดีในหนู: การแยกและการระบุสารเมตาโบไลต์ของทางเดินน้ำดี การกำจัด Metab ของยา 37:431–438
12. Jia Y, Guan Q, Guo Y, Du C (2012)เอ็กไคนาโคไซด์กระตุ้นการเพิ่มจำนวนเซลล์และป้องกันการตายของเซลล์ในเซลล์ MODE-K ของเยื่อบุผิวในลำไส้โดยการเพิ่มการควบคุมของการเปลี่ยนการแสดงออกของปัจจัยการเจริญเติบโตb1 เจ Pharmacol วิทย์ 118:99–108
13. Li F, Yang Y, Zhu P, Chen W, Qi D, Shi X, Zhang C, Yang Z, Li P 2012)เอ็กไคนาโคไซด์ส่งเสริมการสร้างกระดูกใหม่โดยการเพิ่มอัตราส่วน OPG/RANKL ในเซลล์ MC3T3-E1 Fitoterapia 83:1443–1450
14. Li F, Yang X, Yang Y, Guo C, Zhang C, Yang Z, Li P (2013) ฤทธิ์ต้านโรคกระดูกพรุนของเอ็กไคนาโคไซด์ในหนูที่ตัดรังไข่ ไฟโตเมดิซีน 20:549–557
15. Yoshikawa M, Matsuda H, Morikawa T, Xie H, Nakamura S, Muraoka O (2006) Phenylethanoid aminoglycosides และ acylated oligosugars ที่มีกิจกรรม vasorelaxant จากCistanche tubulosa. Bioorg Med Chem 14:7468–7475
16. Morikawa T, Pan Y, Ninomiya K, Imura K, Matsuda H, Yoshikawa M, Yuan D, Muraoka O (2010) Acylated phenylethanoid aminoglycosides ที่มีฤทธิ์ป้องกันตับจากพืชทะเลทรายCistanche tubulosa. Bioorg Med Chem 18:1882–1890
17. Pan Y, Morikawa T, Ninomiya K, Imura K, Yuan D, Yoshikawa M, Muraoka O (2010) องค์ประกอบออกฤทธิ์ทางชีวภาพจากยาธรรมชาติของจีน XXXVI. phenylethanoid oligoglycosides ใหม่ 4 ชนิด ได้แก่ kankanosides J1, J2, K1 และ K2 จากลำต้นของCistanche tubulosa. เคมีฟาร์มวัว 58:575–578
18. Xie H, Morikawa T, Matsuda H, Nakamura S, Muraoka O, Yoshikawa M (2006) องค์ประกอบ Monoterpene จากCistanche tubulosa: โครงสร้างทางเคมีของ kankanosides AE และ kankanol เคมีฟาร์มวัว 54:669–675
19. Morikawa T, Pan Y, Ninomiya K, Imura K, Yuan D, Yoshikawa M, Hayakawa T, Muraoka O (2010) Iridoid และ acyclic monoterpene glycosides, kankanosides L, M, N, O และ P จากCistanche tubulosa. เคม ฟาร์ม บูล 58:1403–1407
20. Kobayashi H, Oguchi H, Takizawa N, Miyase T, Ueno A, Usmanghani K, Ahmad M (1987) ฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์ใหม่จากCistanche tubulosa(Schrenk) ฮุก. ฉ. I. เคม ฟาร์ม บูล 35:3309–3314
21. Shimoda H, Tanaka J, Takahara Y, Takemoto K, Shan SJ, Su MH (2009) ผลกระทบจากภาวะไขมันในเลือดต่ำของCistanche tubulosaสารสกัด ซึ่งเป็นยาแผนโบราณของจีนในหนู แอม เจ ชิน เมด 37:1125–1138
22. Yoshikawa M, Morikwa T, Matsuda H, Tanabe G, Muraoka O (2002) โครงสร้างสามมิติแบบสัมบูรณ์ของสารยับยั้ง a-glucosidase ที่มีศักยภาพ salacinol ด้วยโครงสร้างเกลือชั้นในของซัลโฟเนียมซัลเฟตน้ำตาลจาก Salacia reticulata ที่ไม่เหมือนใคร Bioorg Med Chem 10:1547–1554
23. Muraoka O, Morikawa T, Miyake S, Akaki J, Ninomiya K, Yoshikawa M (2010) การวิเคราะห์เชิงปริมาณของสารยับยั้ง a-glucosidase, salacinol และ kotalanol ในสายพันธุ์ Salasia โดยใช้ liquid chromatography-mass spectrometry J Pharm Biomed ก้น 52:770–773
24. Muraoka O, Morikawa T, Miyake S, Akaki J, Ninomiya K, Pongpiriyadacha Y, Yoshikawa M (2011) การวิเคราะห์เชิงปริมาณของ neosalacinol และ neokotalanol อีก 2 ตัวยับยั้ง a-glucosidase ที่มีศักยภาพจาก Salacia species โดย LC-MS ด้วย ion- โครมาโตกราฟีแบบคู่ เจ นัท เมด 65:142–148
25. Matsuda H, Morikawa T, Toguchida I, Yoshikawa M (2002) ข้อกำหนดโครงสร้างของฟลาโวนอยด์และสารประกอบที่เกี่ยวข้องสำหรับฤทธิ์ยับยั้งอัลโดสรีดักเตส เคม ฟาร์ม บูล 50:788–795
26. Yoshikawa M, Morikawa T, Murakami T, Toguchida I, Harima S, Matsuda H (1999) ดอกไม้สมุนไพร I. สารยับยั้ง aldose reductase และ sesquiterpenes ชนิด eudesmane ใหม่สามชนิด ได้แก่ kikkanols A, B และ C จากดอกเบญจมาศ Indicum L. Chem Pharm Bull 47:340–345
27. Matsuda H, Morikawa T, Toguchida I, Harima S, Yoshikawa M (2002) ดอกไม้สมุนไพร หก. โครงสร้างสเตอริโอสัมบูรณ์ของฟลาโวนโนนไกลโคไซด์ใหม่ 2 ชนิดและฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์จากดอกเบญจมาศ Indicum L.: ฤทธิ์ยับยั้งการทำงานของเลนส์อัลโดสรีดักเตสของหนู เคม ฟาร์ม บูล 50:972–975
28. Yoshikawa M, Murakami T, Ishiwada T, Morikawa T, Kagawa M, Higashi Y, Matsuda H (2002) flavonol oligoglycosides ใหม่และโพลีอะคริเลตซูโครสที่มีฤทธิ์ยับยั้ง aldose reductase และการรวมตัวของเกล็ดเลือดจากดอกไม้ของ Prunus mume เจ แนท โปรด 65:1151–1155
29. Matsuda H, Morikawa T, Yoshikawa M (2002) ส่วนประกอบต้านเบาหวานจากยาธรรมชาติหลายชนิด Pure Appl Chem 74:1301–1308
30. Xie H, Wang T, Matsuda H, Morikawa T, Yoshikawa M, Tani T (2005) องค์ประกอบออกฤทธิ์ทางชีวภาพจากยาธรรมชาติของจีน XV. ผลการยับยั้งต่ออัลโดสรีดักเตสและโครงสร้างของซอซซูริโอไซด์เอและบีจากซอซูเรียเมดูซ่า เคมีฟาร์มบูล 53:1416–1422
31. Morikawa T, Xie H, Wang T, Matsuda H, Yoshikawa M (2008) องค์ประกอบออกฤทธิ์ทางชีวภาพจากยาธรรมชาติของจีน XXXII. Aminopeptidase N และสารยับยั้ง aldose reductase จาก Sinocrassula indica: โครงสร้างของ sinocrassosides B4, B5, C1 และ D1–D3 เคม ฟาร์ม บูล 56:1438–1444
32. Morikawa T, Chaipech S, Matsuda H, Hamao M, Umeda Y, Sato H, Tamura H, Kon'i H, Ninomiya K, Yoshikawa M, Pongpiriyadacha Y, Hayakawa T, Muraoka O (2012) oligostilbenoids ต้านเบาหวานและ {{ 2}}เอทิล-4-ฟีนิล-3,4-ไดไฮโดรไอโซคูมารินจากเปลือกของชอร์อา ร็อกซ์เบิร์กฮี Bioorg Med Chem 20:832–840
33 Morikawa T, Kishi A, Pongiriyadacha Y, Matusda H, Yoshikawa M (2003) โครงสร้างของ triterpenes ประเภท friedelane ใหม่และ sesquiterpene ประเภท eudesmane และสารยับยั้ง aldose reductase จาก Salacia Chinensis เจ นัท พร็อด 66:1191–1196
