โปรตีนในไมโตคอนเดรียเผยกลไกที่การออกกำลังกายช่วยให้ความจำ การเรียนรู้ และกิจกรรมการเคลื่อนไหวในหนูโมเดลโรคไข้สมองอักเสบจากการขาดเลือดขาดออกซิเจน ตอนที่ 3

4. วัสดุและวิธีการ

4.1. สัตว์และกลุ่มทดลอง

การศึกษานี้ใช้หนู Sprague-Dawley สามสิบหกตัว สัตว์ได้รับการดูแลที่อุณหภูมิ 22 ± 1°C โดยมีวงจรแสง/ความมืดเป็นเวลา 12 ชั่วโมง และสามารถเข้าถึงอาหารและน้ำได้ฟรี ขั้นตอนการทดลองดำเนินการโดยได้รับอนุมัติจากคณะกรรมการสถาบันจริยธรรมด้านการดูแลและการวิจัยสัตว์ของมหาวิทยาลัยเจิ้งโจว

วงจรความมืดหมายถึงช่วงเวลาที่ผู้คนนอนหลับในเวลากลางคืน และมีความเกี่ยวข้องอย่างใกล้ชิดกับความทรงจำ สำหรับคนส่วนใหญ่ การนอนหลับสบายตลอดทั้งคืนช่วยให้สุขภาพกายและการทำงานของสมองดีขึ้น ในขณะเดียวกัน การนอนหลับก็เกี่ยวข้องกับกระบวนการความจำของสมองด้วย

เมื่อเรานอนหลับ ร่างกายของเราจะเข้าสู่ระยะการนอนหลับที่แตกต่างกัน รวมถึงการนอนหลับแบบเคลื่อนไหวดวงตาอย่างรวดเร็ว (REM) และการนอนหลับแบบไม่เคลื่อนไหวดวงตาอย่างรวดเร็ว (NREM) ขั้นตอนเหล่านี้มีบทบาทสำคัญในการควบคุมการรวมข้อมูลของสมองและการรวมหน่วยความจำ

คนส่วนใหญ่มีประสบการณ์ด้านบวกของการนอนหลับต่อสมาธิและความจำ การวิจัยแสดงให้เห็นว่าการนอนหลับสามารถช่วยให้เรารวบรวมและเสริมสร้างความทรงจำของเรา และยังช่วยเพิ่มความสามารถในการเรียนรู้อีกด้วย ในระหว่างการนอนหลับ สมองจะรวมข้อมูลใหม่เข้ากับความรู้ที่มีอยู่ จึงช่วยเพิ่มความสามารถในการจัดเก็บและใช้หน่วยความจำ

ในทางกลับกัน การนอนหลับไม่เพียงพออาจทำให้สูญเสียความทรงจำและการเรียนรู้ลำบาก การนอนไม่หลับในระยะยาวอาจทำให้เกิดปัญหาต่างๆ ในร่างกายและสมอง ส่งผลต่อชีวิตประจำวันและความสามารถในการทำงาน ดังนั้นกลยุทธ์การนอนหลับที่ถูกต้องและวิถีชีวิตที่สมเหตุสมผลจึงมีความสำคัญอย่างยิ่งต่อการรักษาความทรงจำที่ดี

โดยรวมแล้ว มีความเชื่อมโยงกันระหว่างวงจรความมืดและความทรงจำ การนอนหลับที่เพียงพอสามารถส่งเสริมการรวมข้อมูลของสมองและการรวมหน่วยความจำ ในขณะที่ความผิดปกติของการนอนหลับในระยะยาวอาจส่งผลต่อการทำงานของสมองและความจำ ดังนั้นเราจึงควรใส่ใจกับคุณภาพการนอนหลับในชีวิตประจำวันของเราและรักษาวิถีชีวิตที่มีสุขภาพดีเพื่อสนับสนุนและพัฒนาความจำและความสามารถในการเรียนรู้ของเราอย่างมีประสิทธิภาพ จะเห็นได้ว่าเราต้องปรับปรุงความจำ และ Cistanche Deserticola สามารถปรับปรุงความจำได้อย่างมาก เนื่องจาก Cistanche Deserticola ยังสามารถควบคุมความสมดุลของสารสื่อประสาท เช่น การเพิ่มระดับของอะเซทิลโคลีนและปัจจัยการเจริญเติบโต สารเหล่านี้มีความสำคัญมากต่อความจำและการเรียนรู้ นอกจากนี้ Cistanche Deserticola ยังช่วยเพิ่มการไหลเวียนของเลือดและส่งเสริมการส่งออกซิเจน ซึ่งช่วยให้สมองได้รับสารอาหารและพลังงานที่เพียงพอ ซึ่งจะช่วยปรับปรุงความมีชีวิตชีวาและความอดทนของสมอง

คลิกรู้ 10 วิธีปรับปรุงความจำ

มีความพยายามทุกวิถีทางเพื่อลดจำนวนสัตว์และลดความทุกข์ทรมานของสัตว์ในระหว่างการทดลอง สัตว์ต่างๆ ถูกสุ่มแบ่งออกเป็นสี่กลุ่ม (รูปที่ 8) (1) HIE, NT (กลุ่มภาวะขาดออกซิเจน-ขาดออกซิเจนในเลือดโดยไม่ต้องฝึกออกกำลังกาย) ประกอบด้วยสัตว์ที่ได้รับการจำลองสำหรับโรคไข้สมองอักเสบจากภาวะขาดออกซิเจน-ขาดเลือดในวันที่ 7 หลังคลอด โดยการดมยาสลบลูกสุนัขด้วยไอโซฟลูเรน (การชักนำ 5%, การบำรุงรักษา 1.5%)

จากนั้นหลอดเลือดแดงคาโรติดร่วมด้านซ้ายถูกผูกไว้อย่างถาวร และลูกสุนัขถูกวางบนโซฟาสำหรับพักฟื้นที่อบอุ่นเป็นเวลา 30 นาที ก่อนที่จะถูกย้ายไปยังห้องที่มีภาวะขาดออกซิเจนซึ่งมีการไหลอย่างต่อเนื่องของก๊าซผสมที่เป็นพิษ 92% N2 และ 8% O2 เป็นเวลา 90 นาที จากนั้น กลับคืนสู่กรงจนถึงสัปดาห์ที่ 10 โดยไม่ได้ให้พวกมันออกกำลังกายว่ายน้ำ (2) HIE, T (กลุ่มโรคสมองจากภาวะขาดออกซิเจน-ขาดเลือดพร้อมการฝึกออกกำลังกาย) ประกอบด้วยสัตว์ที่จำลองภาวะโรคสมองจากภาวะขาดออกซิเจน-ขาดเลือดตามใน (1) และกลับคืนสู่กรงจนถึงสัปดาห์ที่ 6 ของชีวิต จากนั้นให้อยู่ภายใต้ 90 นาที ว่ายน้ำออกกำลังกายทุกวันเป็นเวลา 5 วัน โดยพัก 2 วันต่อสัปดาห์เป็นเวลา 4 สัปดาห์ (3) SHAM, NT (กลุ่มควบคุม) รวมสัตว์ที่ไม่ได้รับการรักษาใดๆ แต่ใช้ชีวิตตามปกติในกรงตั้งแต่วันที่ 1 หลังคลอดถึงสัปดาห์ที่ 10 โดยไม่มี การฝึกออกกำลังกาย และ (4) SHAM, T ประกอบด้วยสัตว์ที่ไม่ได้รับการรักษาใดๆ แต่ใช้ชีวิตตามปกติในกรงตั้งแต่วันที่หลังคลอด1 ถึง 6 สัปดาห์ หลังจากนั้นจึงออกกำลังกายว่ายน้ำเป็นเวลา 4 สัปดาห์

จากนั้น สมองของสัตว์จากกลุ่มต่างๆ จะถูกเก็บเกี่ยวและเตรียมพร้อมสำหรับการซับแบบตะวันตก (ฮิปโปแคมปัสและเปลือกสมอง) และอิมมูโนฟลูออเรสเซนต์ (เยื่อหุ้มสมองยนต์)

4.2. กระบวนทัศน์การออกกำลังกาย

สัตว์ต่างๆ ได้รับอาหารและน้ำโดยไม่จำกัด และดูแลรักษาตามวงจร12-สว่าง/มืด พวกเขาแบ่งออกเป็นสองกลุ่ม: สัตว์อยู่ประจำ (HIE, NT และ SHAM, NT) และสัตว์ออกกำลังกาย (HIE, T และ SHAM, T) สัตว์ที่ออกกำลังกายได้รับการฝึกว่ายน้ำหลังจากสัปดาห์ที่ 6 หลังคลอดเป็นเวลา 4 สัปดาห์; ออกกำลังกายว่ายน้ำสัปดาห์ละ 5 วัน พัก 2 วัน ว่ายน้ำครั้งละ 90 นาที สระเติมความลึก 50 ซม. เพื่อป้องกันไม่ให้สัตว์สัมผัสก้นถัง

พวกมันได้รับอนุญาตให้ว่ายน้ำได้อย่างอิสระโดยไม่มีภาระใดๆ เพิ่มเติม และได้รับการกระตุ้นอย่างอ่อนโยนระหว่างการว่ายน้ำ หนูจะถูกทำให้แห้งอย่างระมัดระวังหลังการออกกำลังกาย และกลับคืนสู่กรง

4.3. เวอร์ติก้า! การทดสอบมอเตอร์ขั้วโลก

สัตว์ในแต่ละกลุ่มวางหงายหน้าไว้บนเสาที่ปิดด้วยเทปผ้า (เส้นผ่านศูนย์กลาง 3.0 ซม. และยาว 150 ซม.) ซึ่งจับไว้ในแนวนอน จากนั้นค่อย ๆ ยกขึ้นเป็น ตำแหน่งแนวตั้ง และเวลาที่หนูอยู่บนเสาจะถูกบันทึกไว้สูงสุด 2 นาที (120 วินาที) ในการทดสอบนี้ สัตว์ที่มีความบกพร่องในการเคลื่อนไหวและการทรงตัวจะตกลงมาจากเสา

4.4. การทดสอบเขาวงกตน้ำมอร์ริส (MWM)

หนู (อายุ 10 สัปดาห์) อยู่ภายใต้ MWM หลังจากผ่านเกณฑ์การฝึกออกกำลังกายเป็นเวลา 4 สัปดาห์ (SHAM, 'T และ HlE, T) ข้อมูลเขาวงกตน้ำทั้งหมดถูกบันทึกโดยใช้ระบบติดตามวิดีโอ Panjab SMART (Panlab Howo Biotechnology (Shanghai) Co., Ltd.) (เซี่ยงไฮ้, จีน) MWM ถูกใช้ตามที่อธิบายไว้ใน l32] โดยสรุป หนูใช้สัญญาณภาพที่วางอยู่ที่ขอบสระว่ายน้ำเพื่อไปถึงพื้นที่ที่ซ่อนอยู่และหนีออกจากน้ำ ประเมินการเรียนรู้ตลอด 7 วัน ก่อนการประเมินการเรียนรู้ จะมีการนำหนูเข้าไปในสระที่มีน้ำใสและมีแท่นที่มองเห็นได้ ในระหว่างการฝึกหนูจะได้ทดลองว่ายน้ำเพื่อให้คุ้นเคยกับภารกิจ

ในระหว่างขั้นตอนการเรียนรู้ หนูจะถูกทาด้วยสีดำเพื่อให้ติดตามวิดีโอได้ง่าย และแพลตฟอร์มก็จมอยู่ใต้น้ำ หนูแต่ละตัวได้รับการทดลองสี่ครั้งจากจุดเริ่มต้นที่แตกต่างกัน (ควอแดรนท์) เวลาแฝงหรือเวลาที่ต้องใช้ในการเข้าถึงแพลตฟอร์มจะถูกบันทึกทุกวันโดย Panlab SMART Video Tracking System ในวันสุดท้ายของการทดลอง แท่นถูกถอดออก และหนูแต่ละตัวถูกนำกลับลงไปในน้ำตามจำนวนครั้งที่สัตว์ข้ามตำแหน่งของแท่นที่ซ่อนอยู่ในควอแดรนท์ที่เคยบรรจุแท่น (ควอแดรนท์เป้าหมาย) ไว้ก่อนหน้านี้

4.5. การซับแบบตะวันตก

สุ่มเลือกหนูหกตัวจากแต่ละกลุ่มสำหรับการทดลองระดับโปรตีน โปรตีนถูกสกัดจากฮิบโปแคมปัสและเยื่อหุ้มสมองและทำให้เป็นเนื้อเดียวกันในรีเอเจนต์ของ RIPA (CW2333S, CoWin Biosciences, Cambridge, MA, USA) และแยกออกเป็นโปรตีนนิวเคลียร์ไซโตพลาสซึม ความเข้มข้นของโปรตีนถูกกำหนดโดยใช้การทดสอบ bicinchoninicacid (BCA) (CW0014S, CoWin Biosciences, Cambridge, MA, USA) และโปรตีนทั้งหมด 20 กรัมถูกแยกโดยอิเล็กโตรโฟรีซิสบนเจล SDS-PAGE สากล (CFAS AnyKD PAGE) # PE008 Zhonghui Hecai Bio-pharmaceutical Technology Co., Ltd., มณฑลส่านซี, จีน

จากนั้นโปรตีนจะถูกถ่ายโอนไปยังเยื่อหุ้มโพลีไวนิลดีนฟลูออไรด์ (PVDF) (R1CB12934, Merck Millipore Ltd., (เบอร์ลิงตัน, แมสซาชูเซตส์, สหรัฐอเมริกา) เยื่อหุ้มถูกปิดกั้นเป็นเวลา 2 ชั่วโมงด้วย 5% วัวเซรั่มอัลบูมิน (BSA) (# A8020, Solarbio Life Sciences , ปักกิ่ง, จีน)ที่อุณหภูมิห้องและบ่มด้วยแอนติบอดีปฐมภูมิต่อไปนี้จากเทคโนโลยีการส่งสัญญาณเซลล์ (Danvers, MA, USA): AIF (D39D2, 1:1000), ไซโตโครม C (136F3, 1:1000), แคสเปสที่แยกออก{{ 13}} (Asp175, 1:1000), Smac/Diablo (D553R, 1:1000) และ OPA1 (D7C1A,1:1000)

GAPDH จาก Servicebio, หวู่ฮั่น, จีน (GB11002, 1:2000) และ H3 จาก Proteintech (17168-1-AP, 1:1000) ที่ 4 ◦C ข้ามคืนตามด้วย HRP-conjugated ทุติยภูมิแอนติบอดี SA00001-2 จาก Proteintect การฟักตัว (1:5000) เป็นเวลา 2 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้อง มองเห็นแถบโปรตีนด้วยชุดเคมีเรืองแสงที่ได้รับการปรับปรุง #KF005 จาก Affinity Biosciences และถ่ายภาพด้วยระบบการวิเคราะห์ภาพชีวภาพ (มหาวิทยาลัยเจิ้งโจว เจิ้งโจว จีน) อัตราส่วนของความเข้มของแถบโปรตีนต่อ GAPDH (ไซโตพลาสมิกโปรตีน) และ H3 (โปรตีนนิวเคลียร์) ตามการอ้างอิงภายในถูกกำหนดโดยใช้ ImageJ

4.6. อิมมูโนฟลูออเรสเซนต์

ได้รับเนื้อเยื่อสมองชิ้นโคโรนา {{0}} µm โดยใช้ไมโครโตมเยือกแข็ง (ไลก้า ประเทศเยอรมนี) สำหรับอิมมูโนฟลูออเรสเซนต์ สไลด์ถูกปิดกั้นเป็นเวลา 2 ชั่วโมงด้วย PBS พร้อมด้วยซีรั่มวัวของทารกในครรภ์ 10% (#A8020, Solarbio Life Sciences, ปักกิ่ง, จีน) และ 0.3% Triton ×-100, Amresco 0694, Biosharp, เอสโตเนีย ที่อุณหภูมิห้องและจากนั้น บ่มด้วยแอนติบอดีปฐมภูมิจากเทคโนโลยีการส่งสัญญาณเซลล์ (แดนเวอร์ส, แมสซาชูเซตส์, สหรัฐอเมริกา): แอนติ-AIF, D39D2 (เจือจางที่ 1:400), แอนติ-ไซโตโครม C, 136F3 (เจือจางที่ 1:200), แคสเปสที่ต้านการแยกตัว-3 , Asp175(เจือจาง 1:400), anti-Smac/Diablo, D553R (เจือจาง 1:200) และ anti- OPA1, D7C1A(เจือจาง 1:400) ข้ามคืนที่ 4 ◦C

จากนั้น สไลด์ถูกล้าง 3 ครั้งในแต่ละช่วงเวลา 10 นาทีใน PBS จากนั้นบ่มด้วยแอนติบอดีทุติยภูมิ (ab150077 จาก Abcam, Cambridge Biomedical Campus, Cambridge, UK) เป็นเวลา 2 ชั่วโมงที่อุณหภูมิห้องในที่มืด DAPI,#C0065 จาก Solarbio Life Sciences, ปักกิ่ง, จีน (1:100PBS) ถูกเติมเป็นเวลา 5 นาที และเทออก, ล้างใน PBS เป็นเวลา 3 ครั้ง แต่ละครั้งนาน 5 นาที, แห้ง, เติมสารป้องกันการแข็งตัว (#P0126, Beyotime Biotechnology, เซี่ยงไฮ้, จีน), แก้ว สลิปได้รับการแก้ไขบนสไลด์และเก็บตัวอย่างที่อุณหภูมิ -20 o C เป็นเวลา 2 ชั่วโมงแล้วนำไปถ่ายภาพด้วยกล้องจุลทรรศน์ ภาพเนื้อเยื่อถูกจับโดยใช้กล้องจุลทรรศน์ฟลูออเรสเซนซ์แบบคอนโฟคอล (Ni-U942877, Nikon, โตเกียว, ญี่ปุ่น) และภาพที่เป็นตัวแทน จากนั้นหาปริมาณโปรตีนในคอร์เทกซ์มอเตอร์โดยใช้ FIJI-ImageJ ตามที่อธิบายไว้ใน [33]

4.7. การวิเคราะห์ทางสถิติ

GraphPad Prism เวอร์ชัน 8.0.0 สำหรับ Windows (ซอฟต์แวร์ GraphPad, San Diego, CA, USA) ใช้สำหรับการวิเคราะห์ทั้งหมด การวิเคราะห์ความแปรปรวนแบบทางเดียวที่ตามด้วยการทดสอบหลังการทดสอบของ Dunnett ตามลำดับ ถูกนำมาใช้เพื่อวัดนัยสำคัญทางสถิติ ผลลัพธ์จะแสดงเป็นค่าเฉลี่ย ± SEM และ p < 0.05 ถือว่ามีนัยสำคัญทางสถิติ

5. สรุปผลการวิจัย

การศึกษานี้แสดงให้เห็นว่าการออกกำลังกายว่ายน้ำช่วยปรับปรุงกิจกรรมการเคลื่อนไหว ความจำ และการเรียนรู้ที่เกี่ยวข้องกับ HIE โดยการยับยั้งการตายของเซลล์แบบไมโตคอนเดรียผ่านทาง Cyto.C/cleaved caspase-3 และวิถีการส่งสัญญาณ AIF นอกจากนี้ การแทรกแซงการออกกำลังกายว่ายน้ำยังแสดงให้เห็นการรักษาเสถียรภาพของไมโตคอนเดรียคริสเตและศักยภาพของเยื่อหุ้มเซลล์ ซึ่งแสดงให้เห็นโดยการกลับตัวของ Smac/Diablo และ OPA1 ในหนูที่มี HIE ด้วยเหตุนี้ นี่เป็นรากฐานที่น่าสนใจและเป็นไปได้สำหรับการวิจัยเพิ่มเติมเพื่อถอดรหัสเส้นทางโมเลกุลเพิ่มเติมที่สามารถจัดการเพื่อจัดการ HIE และการขาดดุลผลลัพธ์ได้อย่างมีประสิทธิภาพ ในขณะที่การศึกษาครั้งนี้ประสบความสำเร็จแสดงให้เห็นถึงบทบาทของการออกกำลังกายในการย้อนกลับการขาดดุลเชิงโครงสร้างและการทำงานในไมโตคอนเดรียที่เกิดขึ้น โดย HIE ไม่ได้ใช้วิธีการที่เป็นไปได้ทั้งหมดในการพิจารณาว่าคริสเตของไมโตคอนเดรียมีความเสถียรอย่างไร สิ่งนี้มีความสำคัญสำหรับการวิจัยในอนาคตในหัวข้อนี้

ผลงานของผู้เขียน: แนวความคิด, FG, FP, YW และ CC; การดูแลข้อมูล, FG, FP, YW, HL และ JF; การวิเคราะห์อย่างเป็นทางการ FG, HL และ CC; การได้มาซึ่งเงินทุน CC; การสอบสวน, FG,FP, YW, HL และ JF; ระเบียบวิธี, FG, FP, YW และ CC; การบริหารโครงการ FG, YW และ CC; ทรัพยากร CC; ซอฟต์แวร์, FG, FP, JF และ CC; การกำกับดูแล CC; การตรวจสอบความถูกต้อง, FG, FP, YW, HL และ CC; การสร้างภาพ, FG, FP, YW, HL และ JF; การเขียน–ฉบับร่างต้นฉบับ FG และ YW การเขียน–การตรวจทานและการแก้ไข FG และ HL ผู้เขียนทุกคนได้อ่านและเห็นด้วยกับต้นฉบับที่ตีพิมพ์ในเวอร์ชันที่ตีพิมพ์

เงินทุน: การศึกษานี้ได้รับการสนับสนุนจากโครงการวิจัยวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีของกรมวิทยาศาสตร์และเทคโนโลยีมณฑลเหอหนาน (ทุนหมายเลข 212102310217) และทุนจากกองทุนของมูลนิธิวิทยาศาสตร์ธรรมชาติแห่งชาติของจีน (ทุนหมายเลข 81401015)

คำแถลงของคณะกรรมการพิจารณาประจำสถาบัน: การศึกษานี้ดำเนินการตามแนวทางของคณะกรรมการดูแลสัตว์วิจัยของมหาวิทยาลัยเจิ้งโจว ซูร์บ2022-32

คำชี้แจงความยินยอม: ไม่เกี่ยวข้อง

คำชี้แจงความพร้อมใช้งานของข้อมูล: ไม่เกี่ยวข้อง

ความขัดแย้งทางผลประโยชน์: ผู้เขียนประกาศว่าไม่มีความขัดแย้งทางผลประโยชน์

อ้างอิง

1. หลี่ บ.; คอนเซปซิออน, K.; เม้ง เอ็กซ์.; Zhang, L. ปฏิกิริยาระหว่างสมองและภูมิคุ้มกันในการบาดเจ็บที่สมองขาดออกซิเจนและขาดเลือดปริกำเนิด โครงการ Neurobiol.2017, 159, 50–68. [ครอสอ้างอิง]

2. ดักลาส-เอสโกบาร์ ม.; Weiss, MD Hypoxic-ischemic encephalopathy: บทวิจารณ์สำหรับแพทย์ JAMA กุมาร. 2015, 169, 397–403.[CrossRef] [PubMed]

3. สีดำ RE; เคาเซนส์ ส.; จอห์นสัน เอชแอล; ลอว์น เจ.; รูดาน ฉัน.; บาสซานี ด.; จ๊ะ ป.; แคมป์เบลล์เอช.; วอล์คเกอร์ ซีเอฟ; ซิบูลสกี้ ร.; และคณะ สาเหตุการเสียชีวิตของเด็กในระดับโลก ระดับภูมิภาค และระดับประเทศ พ.ศ. 2551: การวิเคราะห์อย่างเป็นระบบ มีดหมอ 2010, 375, 1969–1987 [ครอสอ้างอิง]

4. จูล เซาท์อีสต์; Ferriero, DM กลยุทธ์การป้องกันระบบประสาททางเภสัชวิทยาในการบาดเจ็บที่สมองของทารกแรกเกิด คลินิก. ปรินาทอล. 2014, 41, 119–131.[CrossRef]

5. จู ค.; โรดริเกซ เจไอ; หลี่ ต.; ซูย.; Sun, Y. บทบาทของปัจจัยที่กระตุ้นการตายของเซลล์ในการบาดเจ็บที่สมองขาดออกซิเจนและขาดเลือดปริกำเนิด ระบบประสาทฟื้นฟู ความละเอียด 2021, 16, 205–213. [CrossRef] [PubMed]

6. ซ่ง ส.-ช.; จี อ.-ส.; โค ไอ.-ก.; ลี ส.-ว.; ซิม ย.-เจ.; คิม ดี.-ย.; ลี เอส.-เจ.; Cho, YS การออกกำลังกายบนลู่วิ่งไฟฟ้าและการออกกำลังกายแบบล้อช่วยปรับปรุงการทำงานของมอเตอร์โดยการยับยั้งการตายของเซลล์ประสาท apoptotic ในหนูที่อักเสบในสมอง เจ. เอ็กเซอร์ค. การฟื้นฟู 2018, 14, 911–919.[CrossRef]

7. เคลลี่ ม.; Darrah, J. การออกกำลังกายทางน้ำสำหรับเด็กที่มีภาวะสมองพิการ นักพัฒนา ยา เด็ก. นิวรอล. 2005, 47, 838–842. [ครอสอ้างอิง]

8. มึลเลอร์ ป.; ดูเดอร์สตัดท์, ย.; เลสมันน์, วี.; Müller, NG Lactate และ BDNF: ผู้ไกล่เกลี่ยหลักของการออกกำลังกายที่ชักนำให้เกิดความยืดหยุ่นของระบบประสาท? คลินิก. ยา 2020, 9, 1136. [CrossRef]

9. อินเทิลโคเฟอร์, แคลิฟอร์เนีย; Cotman, CW การออกกำลังกายต่อต้านการทำงานของ hippocampal ที่ลดลงในวัยชราและโรคอัลไซเมอร์ Neurobiol.Dis. 2556; ในการกด [ครอสอ้างอิง]

10. เรียล ค.; เฟอร์เรรา, อ.; ชาเวส-เคียร์สเตน จี.; ทอร์เรา, อ.; ปิแรส ร.; Britto, L. การปิดล้อมตัวรับ BDNF ขัดขวางผลประโยชน์ของการออกกำลังกายในรูปแบบหนูของโรคพาร์กินสัน ประสาทวิทยาศาสตร์ 2013, 237, 118–129 [ครอสอ้างอิง]

For more information:1950477648nn@gmail.com