ผลของสารสกัด Cistanche Deserticola ต่อการตอบสนองขององคชาตในหนูที่ถูกตอน

Li Gu, Wen Ting Xiong, Yan Lei Zhuang, Jian Shuang Zhang และ Xin Liu*

ศูนย์วิจัยวิศวกรรมอาหารและสุขภาพของกระทรวงศึกษาธิการแห่งรัฐ มหาวิทยาลัยซุนยัตเซ็น เมืองกวางโจว ประเทศจีน

เชิงนามธรรม

Cistanche Deserticola (CD) ได้รับการพิจารณาว่าเป็นตัวแทนยาชูกำลังในการทำงานของระบบสืบพันธุ์เป็นเวลาหลายพันปี การศึกษาครั้งนี้ได้ทำการศึกษาผลของสารสกัดซีดีต่อการตอบสนองการแข็งตัวขององคชาต หลังการผ่าตัดตอน หนูได้รับการรักษาภายในช่องท้องด้วยสารสกัดซีดี ({{0}}.45, 0.90 และ 1.8 ก./กก.) ทุกวันเป็นเวลาสี่สัปดาห์ วัดการตอบสนองของการแข็งตัวของอวัยวะเพศและทดสอบฮอร์โมนซีรั่มเมื่อสิ้นสุดการทดลอง มีการประเมินว่าเวลาแฝงของการแข็งตัวของอวัยวะเพศนานขึ้นและระยะเวลาการแข็งตัวของอวัยวะเพศสั้นลงอย่างมีนัยสำคัญในหนูที่ตัดตอนเมื่อเปรียบเทียบกับการควบคุมโดยใช้เสแสร้ง อย่างไรก็ตาม สารสกัดซีดีทำให้เวลาในการแข็งตัวของอวัยวะเพศสั้นลงและยืดระยะเวลาการแข็งตัวของอวัยวะเพศให้นานขึ้นเพื่อลดผลกระทบด้านลบของการตัดตอน ที่ปริมาณ 0.9 กรัม/กก. สารสกัดซีดีควบคุมความเข้มข้นของฮอร์โมนลูทิไนซิงในซีรั่มให้อยู่ในระดับปกติในหนูที่ตอน การค้นพบนี้ชี้ให้เห็นว่าซีดีช่วยอำนวยความสะดวกในการตอบสนองการแข็งตัวขององคชาตและปรับระดับฮอร์โมนซีรั่มในระดับหนึ่ง

คลิกผลิตภัณฑ์ยาชูกำลัง cistanche

การแนะนำ

Cistanche Hoffmg. Et Link เป็นสกุลหนึ่งในวงศ์ Orobanchaceae ส่วนใหญ่กระจายพันธุ์ในพื้นที่แห้งแล้งและทะเลทรายในซีกโลกเหนือ เช่น มองโกเลียใน ซินเจียง และเขตปกครองตนเองหนิงเซียะของจีน อิหร่าน อินเดีย มองโกเลีย เป็นต้น สปีชีส์อยู่ในพืชปรสิตยืนต้น ซึ่งโดยทั่วไปจะเกาะติดกับรากของพืชที่ยึดเกาะด้วยทราย เช่น Haloxylox ammo dendron, H. persicum, Kalidium foliated และ Tamarix plants เป็นต้น (Jiang and Tu 2009)

Herba Cistanche ลำต้นของสายพันธุ์ Cistanche ได้รับการพิจารณาว่าเป็นยาชูกำลังชั้นเลิศ และได้รับเกียรติจาก "โสมแห่งทะเลทราย" ในบรรดาสายพันธุ์ Cistanche นั้น Cistanche Deserticola YC MA ได้รับการระบุว่าเป็นแหล่งข้อมูลหลักของ Cistanche (Stefanova et al. 2011) อย่างไรก็ตาม เนื่องจากการเก็บเกี่ยวมากเกินไปในช่วงไม่กี่ปีมานี้ ทรัพยากรธรรมชาติในป่า C. Deserticola (CD) ขาดแคลน ซึ่งถูกรวบรวมเป็นหนึ่งในพืชประเภท II ที่ต้องการการคุ้มครองในประเทศจีน ดังนั้นสายพันธุ์อื่นๆ ของสกุลนี้ เช่น C. salsa และ C. sinensis ยังใช้แทนกันได้ในบางพื้นที่ จากการบันทึกครั้งแรกใน Chinese Material Medica ของ Shen Nong (บทสรุปทางเภสัชวิทยาโบราณ) ซีดีได้รับการพิจารณาว่าทำให้ไตแข็งแรงและกระตุ้น "หยาง" ในการปฏิบัติทางคลินิกภายใต้ทฤษฎีการแพทย์แผนจีน ซึ่งถูกกล่าวหาว่ามีประสิทธิภาพสำหรับการสืบพันธุ์ การพัฒนา และภาวะเจริญพันธุ์ ในขณะเดียวกัน ซีดียังถูกนำไปต้มกับเนื้อแกะ มันฝรั่ง หรือข้าวเพื่อผลิตอาหารบำรุงกำลังเพื่อรักษาความบกพร่องที่เกิดจากความเครียดมากเกินไปเป็นเวลาหลายร้อยปี ซึ่งบ่งชี้ว่าปลอดภัยที่จะรับประทาน (Xiong et al. 2013) อย่างไรก็ตาม การใช้โดยประวัติเหล่านี้ส่วนใหญ่มีอยู่ใน incunabula ของจีน โดยมีข้อมูลทางวิทยาศาสตร์จำกัดที่กล่าวถึงในแง่ของแนวคิดทางเภสัชวิทยาสมัยใหม่

ภาวะหย่อนสมรรถภาพทางเพศ (ED) เป็นภาวะที่มีลักษณะเฉพาะจากการแข็งตัวขององคชาตที่ไม่เพียงพอหรือการแข็งตัวที่ไม่คงอยู่ได้นานเพียงพอในผู้ใหญ่เพศชาย (Cohan and Korenman 2000) เพื่อตอบสนองต่อสารเคมีที่ทันสมัย ​​ซับซ้อน มีความสนใจที่จะค้นหายาที่มีประสิทธิภาพและปลอดภัยจากพืชสำหรับการรักษา ED (Adimoelja 2000) การศึกษาก่อนหน้านี้ (Liu et al. 2009) ระบุว่า CD electuary เร่งการแข็งตัวของอวัยวะเพศในหนูปกติ แต่ไม่มีข้อมูลที่เกี่ยวข้องกับผลกระทบของ CD ต่อการแข็งตัวของอวัยวะเพศ

ในสัตว์ การผ่าตัดตอนด้วย orchiectomy ทั้งสองข้างถือเป็นมาตรฐานของการตัดตอนสำหรับการตรวจสอบ ED (Tombal 2005) ดังนั้น การศึกษาในปัจจุบันจึงดำเนินการเพื่อประเมินผลกระทบที่อาจเกิดขึ้นของ CD ต่อ ED โดยการตรวจสอบเวลาแฝงและระยะเวลาการแข็งตัวของอวัยวะเพศในหนูที่ถูกตัดตอน.

วัสดุและวิธีการ

เคมีภัณฑ์และวัสดุ

Echinacoside (purity >98%) and acteoside (purity >98 เปอร์เซ็นต์ ) ถูกซื้อจากสถาบันแห่งชาติเพื่อการควบคุมอาหารและยา (ปักกิ่ง ประเทศจีน) ซื้อเมทานอลเกรด HPLC จาก Sigma-Aldrich (เซนต์หลุยส์, มิสซูรี่, สหรัฐอเมริกา) ผลิตน้ำบริสุทธิ์โดยใช้ระบบ Millipore Milli-Q Integral 3 และระบบ Q-POD Milli-Q (เบดฟอร์ด แมสซาชูเซตส์ สหรัฐอเมริกา) ลำต้นของ C. Deserticola ซื้อมาจากบริษัท Shenzhen GURU Biology Co., Ltd (มณฑลกวางตุ้ง ประเทศจีน) และบดเป็นผงละเอียดด้วยเครื่องบดผ่านตะแกรงขนาด 60 เมช

การวิเคราะห์ HPLC และการเตรียมวัสดุปลูก

ปริมาณ Echinacoside และ Acteoside ของผงซีดีถูกกำหนดตามวิธีการก่อนหน้าของเรา (Zhao et al. 2011) จากนั้นนำผงแห้งทุกๆ 100 กรัมมาต้มใน 1.5

ลิตร น้ำ 1.5 ชม. เมื่อเย็นลงที่อุณหภูมิห้อง สุราผสมถูกหมุนเหวี่ยงที่ 2,000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 10 นาที (Eppendorf 5810R เยอรมนี) และตะกอนถูกสกัดซ้ำสองครั้งภายใต้สภาวะเดียวกัน ส่วนลอยเหนือตะกอนที่รวมกันถูกทำให้เข้มข้นโดยเครื่องระเหยแบบหมุนสุญญากาศ (Heidolph Laborota 4001-ที่มีประสิทธิภาพ เยอรมนี) ที่ 60 องศา จากนั้นทำให้แห้งเยือกแข็งและให้ผลเป็นผงสารสกัดแห้งประมาณ 42 เปอร์เซ็นต์ เมื่อทำการทดลองกับสัตว์ในภายหลัง สารสกัดแห้งจะถูกละลายในน้ำบริสุทธิ์ที่อุณหภูมิห้อง

สัตว์ทดลอง

หนู Sprague-Dawley เพศผู้ที่โตเต็มวัย (200-220g) ได้มาจากศูนย์สัตว์ทดลองทางยาของมณฑลกวางตุ้ง (กวางโจว สาธารณรัฐประชาชนจีน) เลี้ยงในไตรมาสที่ควบคุมอุณหภูมิด้วย 12-hr light/dark cycles ที่ อุณหภูมิห้อง (22-24 องศา ) และความชื้นคงที่ (40-70 เปอร์เซ็นต์ ) ในห้องปฏิบัติการ SPF (ปลอดเชื้อโรคเฉพาะ) และเลี้ยงตามปริมาณที่กำหนด ขั้นตอนการทดลองเป็นไปตามคำแนะนำของสถาบันสุขภาพแห่งชาติสำหรับการดูแลและการใช้สัตว์ทดลอง

ขั้นตอนการทดลอง

หนึ่งสัปดาห์ก่อนการให้ยา หนู SD เพศผู้จำนวน 50 ตัวได้รับการดมยาสลบด้วยโซเดียมเพนโทบาร์บิทัลทางเยื่อบุช่องท้อง (40 มก./กก.) (Jung et al. 1999) และสุ่มจัดสรรให้กับห้ากลุ่ม: ยกเว้นหนูในกลุ่มที่ผ่าตัดด้วยแสม (Sham ) ส่วนที่เหลือถูกตัดตอนทั้งสองข้างด้วยวิธี scrotal (Anderes 2003, Schlatt et al. 2002) ในขณะเดียวกัน กลุ่มที่บำบัดด้วยซีดีถูกบริหารให้ทางช่องท้องด้วย 0.45 ก./กก. (สารสกัดซีดีขนาดยาต่ำ, LCD บวก Cas), 0.9 กรัม/กก. (ขนาดยาเฉลี่ยของสารสกัดซีดี, MCD บวก Cas) และ 1.8 กรัม/กก. (ขนาดยาสูงของ สารสกัด CD, HCD บวก Cas) สารสกัด CD ตามลำดับ ในขณะที่กลุ่มแสมและตอนถูกบริหารให้ด้วยปริมาณน้ำที่สอดคล้องกันเท่านั้น มีการตรวจวัดน้ำหนักตัวในช่วงเริ่มต้นของขั้นตอนและทุกสัปดาห์ หนูทุกตัวเข้ารับการผ่าตัดผ่านกล้องทันทีหลังจากตายเพื่อเอาออกและชั่งน้ำหนักหลังของอวัยวะต่อไปนี้: ต่อม preputial, ถุงน้ำเชื้อ, ต่อมลูกหมาก และกล้ามเนื้อ levator ani

การวัดการตอบสนองการแข็งตัวของอวัยวะเพศ

สมรรถภาพการแข็งตัวของหนูในแต่ละกลุ่มได้รับการประเมินตามวิธีการก่อนหน้านี้ (Ji et al. 2009, Luo et al. 2006) โดยสังเขป อิเล็กโทรดสองขั้วเหล็กกล้าไร้สนิม (BL420F Data Acquisition & Analysis System, Tme Technology Co., Ltd, Chengdu, PR China) ได้รับการติดตั้งอย่างระมัดระวังบนองคชาติจนกระทั่งมันถูกสร้างขึ้นด้วยชีพจรของการกระตุ้นด้วยไฟฟ้า (5 V) 0.2 ส. เวลาตั้งแต่การกระตุ้นจนถึงการแข็งตัวถูกบันทึกเป็นเวลาแฝงของการแข็งตัวขององคชาต เมื่อสังเกตเห็นการตอบสนองของการแข็งตัวขององคชาต สามารถถอดอิเล็กโทรดออกจากองคชาตได้ และบันทึกระยะเวลาที่องคชาตคงการแข็งตัวไว้เป็นเวลาแข็งตัว

การสุ่มตัวอย่างเลือดและการวิเคราะห์ฮอร์โมนในซีรั่ม

หนูถูกทำให้สลบด้วยโซเดียมเพนโทบาร์บิทัลทางเยื่อบุช่องท้อง (40มก./กก.) (Jung et al. 1999) ตัวอย่างเลือดถูกดึงและจับตัวเป็นก้อนที่ 4 องศาเป็นเวลา 4 ชั่วโมง จากนั้นเก็บซีรัมโดยการปั่นแยกที่ 4000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 5 นาทีที่ 4 องศา (Eppendorf 5810 R เยอรมนี) และเก็บไว้ทันทีที่อุณหภูมิห้องแช่แข็ง -20 องศาจนกว่าจะมีการวิเคราะห์เพิ่มเติม . วัดระดับ LH และ FSH ทั้งหมดโดยใช้ชุดเครื่องมือ radioimmunoassay (RIA) เชิงพาณิชย์ (Beijing North Institute of Biological Technology, ปักกิ่ง, จีน) โดยอ้างอิงตามคำแนะนำของผู้ผลิต (Matsumoto et al. 1986) จากเทคนิคภูมิคุ้มกันกัมมันตภาพรังสีที่แข่งขันได้ ฉัน125-ติดฉลาก LH (หรือ FSH) ในการทดสอบ โดยสังเขป สาร 100µl I125-ที่ติดฉลาก LH (หรือ FSH) ถูกเติมลงในตัวอย่างซีรัม 100µl และบ่มด้วยแอนติบอดีกระต่ายบริสุทธิ์ 100µl ที่ 4 องศา (หรือ 37 องศา) ข้ามคืน จากนั้น สารแยกภูมิคุ้มกันลา-ต้านกระต่ายถูกเติมไปยังสารเชิงซ้อนแอนติเจน-แอนติบอดีและหมุนเหวี่ยง (3500 รอบต่อนาที, 15 นาที) เพื่อแยก 125I- LH ที่จับกับแอนติบอดี (หรือ FSH) ที่จับกับแอนติบอดี หลังจากนั้น กัมมันตภาพรังสีของตะกอนถูกวัดที่เคาน์เตอร์ตรวจภูมิคุ้มกันด้วยคลื่นวิทยุ (DMF-96, Zhongcheng electrical technology development Co., Ltd., Hefei, China) ขีดจำกัดความไวของการทดสอบ LH และ FSH คือ 1.0mIU/ml ทั้งคู่

การวิเคราะห์ทางสถิติ

วิเคราะห์ข้อมูลโดยใช้ซอฟต์แวร์ SPSS เวอร์ชัน 16.0 ค่าแสดงเป็นค่าเฉลี่ย±ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐาน (SD) วิเคราะห์ข้อมูลพาราเมตริกโดยใช้การวิเคราะห์ความแปรปรวนแบบทางเดียว (ANOVA) ตามด้วยการทดสอบ LSD ภายหลัง วิเคราะห์ข้อมูลแบบไม่อิงพารามิเตอร์โดยการทดสอบ Kruskal-Wallis ถือว่าความแตกต่างมีนัยสำคัญทางสถิติหากความน่าจะเป็นของการเบี่ยงเบนน้อยกว่า 0.05

ผลลัพธ์

การวัดปริมาณเอไคนาโคไซด์และแอกทีโอไซด์ของผงซีดี

ปริมาณของ echinacoside และ acteoside ในผงซีดีเท่ากับ 1.27±0.01 เปอร์เซ็นต์ และ 0.52±0.003 เปอร์เซ็นต์ ซึ่งเป็นไปตามข้อกำหนดของเภสัชตำรับจีน โครมาโตแกรม HPLC ของผงซีดีแสดงในรูปที่ 1.

รูปที่ 1

โปรไฟล์โครมาโตกราฟี HPLC ของผง Cistanche Deserticola จุดสูงสุด 1, เอไคนาโคไซด์; จุดสูงสุด 2, แอกทีโอไซด์. แกน X เวลาเก็บรักษา แกน Y หน่วยการดูดกลืนแสง เงื่อนไข HPLC: ระบบ HPLC ของน้ำ (Binary HPLC Pump1525, เครื่องตรวจจับดัชนีการหักเหของแสง 2414, เครื่องตรวจจับโฟโตไดโอดอาร์เรย์ 2996); ระยะคงที่: Symmetry C18(4.6mm×25{{10}} mm, 5 µm, Waters, Milford, MA, USA); เฟสเคลื่อนที่: 0.5 เปอร์เซ็นต์ (V/V) สารละลายกรดอะซิติกในน้ำ (A) และส่วนผสมเมทานอล (B) (0 นาที, A: B=25:75; 10- 30 นาที, A: B{{16 }}: 60; 30 นาที, A: B=0: 100); อัตราการไหล: 1 มล./นาที; ความยาวคลื่นนักสืบ: 330 นาโนเมตร; อุณหภูมิ: 30.

รูปที่ 2

ความล่าช้าในการแข็งตัวขององคชาตและระยะเวลาในหนูที่ถูกตอน ข้อมูลแสดงเป็นค่าเฉลี่ย ± SD (n=10) ##หน้า<0.01 relative to sham-operated group, **p<0.01 relative to castrated group. Abbreviation (below): Sham, sham-operated group; Cas, castration control group; LCD +Cas (0.45g/kg), MCD +Cas (0.9g/kg) and HCD +Cas (1.8g/kg), three groups of CD extract treated in castrated rats

รูปที่ 3

ผลของสารสกัดซีดีต่อความเข้มข้นของ LH ในซีรั่มในหนูที่ตอน ข้อมูลแสดงเป็นค่าเฉลี่ย ± SD (n=10) #หน้า<0.05 relative to sham-operated group, * p<0.05 relative to castrated group.

น้ำหนักตัวและน้ำหนักอวัยวะเสริมสัมพัทธ์

ดังที่แสดงในตารางที่ 1 หนูทุกตัวมีน้ำหนักตัวเริ่มต้นที่ใกล้เคียงกันโดยเพิ่มขึ้นจากวันที่ 1 ถึงวันที่ 28 อย่างไรก็ตาม ค่าเฉลี่ยในกลุ่มที่ตัดตอนเพิ่มขึ้นจาก 216.8±9.2 g เป็น 251.4±12.7, 283.3±15.1, 306.8±15.4 และ 322.2±18.4 ก. รับน้ำหนักได้น้อยกว่าเมื่อเทียบกับชิ้นส่วนที่ทำงานด้วยแสม (p<0.05). There were no statistical differences between the sham group and CD treated group.

รูปที่ 4

ผลของสารสกัดซีดีต่อความเข้มข้นของ FSH ในซีรั่มในหนูที่ตอน ข้อมูลแสดงเป็นค่าเฉลี่ย ±SD (n=10)

ระดับฮอร์โมนเซรั่ม

วิเคราะห์โดยการทดสอบ RIA ความเข้มข้นเฉลี่ยของซีรั่มของ LH ในหนูแรทที่ตัดตอนคือ 2.50±0.34mIU/ml ซึ่งแสดงการเพิ่มขึ้นเมื่อเทียบกับกลุ่มควบคุมที่ดำเนินการหลอก (p<0.05). However, the value descended about 49.2% in the MCD +Cas group relative to that in castrated control (p<0.05) (fig. 3). Shown in fig. 4, no statistical differences were observed among all groups on FSH concentration.

การอภิปราย

ผลลัพธ์ของเราแสดงให้เห็นว่าการตัดอัณฑะช่วยยืดเวลาแฝงในการแข็งตัวขององคชาติอย่างมีนัยสำคัญ และลดระยะเวลาการแข็งตัวของอวัยวะเพศให้สั้นลง โดยอวัยวะส่วนเสริมจะฝ่อลงอย่างเห็นได้ชัด อย่างไรก็ตาม สารสกัดซีดีช่วยอำนวยความสะดวกในการตอบสนองการแข็งตัวขององคชาตและปรับระดับ LH ในซีรั่มในระดับหนึ่งในหนูที่ถูกตอน

การแข็งตัวตามธรรมชาติส่วนใหญ่ถูกกระตุ้นและคงไว้โดยแอนโดรเจนผ่านกลไกระดับเซลล์ โมเลกุล และสรีรวิทยา ซึ่งเกี่ยวข้องกับการคลายตัวของกล้ามเนื้อเรียบโพรงจมูก (Traish et al. 2007, Talha et al. 2007) . ระดับฮอร์โมนเทสโทสเตอโรนที่ไม่เพียงพอนำไปสู่การผ่อนคลายที่ลดลง (McClure 1988) ซึ่งส่งผลให้ผู้ชายอ่อนแอ (Bivalacqua et al. 2000) โดยเฉพาะอย่างยิ่งในหนู ความเข้มข้นของฮอร์โมนเทสโทสเตอโรนในระบบที่หลากหลายอยู่ที่ 10-12 เปอร์เซ็นต์ ซึ่งต่ำกว่าที่การตอบสนองของการแข็งตัวของอวัยวะเพศจะลดลงในลักษณะที่ขึ้นกับขนาดยา (Armagan et al. 2006) ในการศึกษาปัจจุบัน ความเข้มข้นของฮอร์โมนเทสโทสเตอโรนในการไหลเวียนต่ำเกินกว่าขีดจำกัดความไว (0.02ng/ml) ในหนูที่ตัดตอนทั้งหมด (ข้อมูลไม่แสดงในผลลัพธ์) อย่างไรก็ตาม สารสกัดซีดีทำให้เวลาแฝงในการแข็งตัวขององคชาติสั้นลงอย่างมีนัยสำคัญที่ปริมาณ 3 ปริมาณ และเพิ่มระยะเวลาการแข็งตัวของอวัยวะเพศที่ 0.90 ก./กก. และ 1.8 ก./กก. อาจเป็นผลจากผลคล้ายแอนโดรเจนของซีดีที่กล่าวถึงในการศึกษาก่อนหน้านี้ (He et al. 1996a, He et al. 1996b)

อวัยวะเสริมบางอย่าง เช่น ต่อมลูกหมากและถุงน้ำเชื้อขึ้นอยู่กับแอนโดรเจน ดังนั้นการเปลี่ยนแปลงของน้ำหนักอาจสะท้อนถึงการเปลี่ยนแปลงของสถานะต่อมไร้ท่อ (Trisomboon et al. 2007, Jang et al. 2011) มีระดับฮอร์โมนเทสโทสเตอโรนเป็นเกณฑ์ ซึ่งต่ำกว่าที่เมแทบอลิซึมของอวัยวะเหล่านี้ถูกยับยั้ง (Trachtenberg 1985) ได้รับการยืนยันในการศึกษาของเราว่าการตัดตอนทำให้น้ำหนักของอวัยวะสืบพันธุ์เสริมลดลงเนื่องจากการขาดฮอร์โมนเพศชาย

เทสโทสเตอโรนส่วนใหญ่ถูกหลั่งโดยเซลล์อัณฑะเลย์ดิก และควบคุมโดยฮอร์โมนไฮโปฟิสิคัล เช่น ลูทีไนซิงฮอร์โมน (LH) และฮอร์โมนกระตุ้นรูขุมขน (FSH) ซึ่งมีบทบาทสำคัญในการรักษาการทำงานของอวัยวะเพศของสัตว์ตอน (Robert et al. 2{ {6}}04). เนื่องจากแกนของไฮโปทาลามัส-ต่อมใต้สมอง-ต่อมใต้สมอง (HPG) เป็นกลไกควบคุมแบบป้อนกลับแบบวงปิด ระดับฮอร์โมนต่อมใต้สมองที่ต่ำจึงสามารถควบคุมการหลั่งของ LH และ FSH ตามลำดับ (โมราเลส et al. 2004) การศึกษาของเราได้ตรวจสอบว่าระดับ LH ในซีรั่มเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญในหนูที่ตัดตอนแล้วลดลงสู่ระดับปกติด้วยสารสกัด CD ที่ 0.90 g/kg ซึ่งเห็นด้วยกับข้อสรุปก่อนหน้านี้ว่าระดับ LH ที่เพิ่มขึ้นมีความสัมพันธ์กับความเสี่ยงที่สูงขึ้นของการหย่อนสมรรถภาพทางเพศ (Kupelian et al. 2006). ในอัณฑะ LH กระตุ้นการสังเคราะห์และปล่อยฮอร์โมนเพศชาย การควบคุมป้อนกลับค่อนข้างสม่ำเสมอ ในขณะที่ FSH ทำหน้าที่โดยตรงกับเซลล์ Sertoli เพื่อการบำรุงด้วยคอมเพล็กซ์ควบคุมป้อนกลับ (Hellqvist et al. 2008) การค้นพบนี้ให้การสนับสนุนมากขึ้นสำหรับการคาดเดาที่ว่า CD แสดงผลคล้ายแอนโดรเจน ซึ่งอาจเป็นสาเหตุหลักในการลด LH ในซีรั่มมากกว่า FSH

ในการสังเกตในปัจจุบัน อิทธิพลของการตัดตอนต่อการพัฒนาน้ำหนักตัวของหนูตัวผู้มีความคล้ายคลึงกับการค้นพบในการศึกษาก่อนหน้า (Christoffersen et al. 2006) ซึ่งตรงกันข้ามกับผลลัพธ์ในหนูตัวเมีย (Pantaleão et al. 2010) สารสกัดซีดีไม่สามารถเพิ่มน้ำหนักตัวได้อย่างมีนัยสำคัญ ซึ่งอาจเป็นเพราะระยะเวลาการรักษาไม่เพียงพอหรือผลกระทบที่ซับซ้อนต่อสถานะสุขภาพโดยรวม

โดยสรุปแล้ว การตัดอัณฑะช่วยยืดเวลาแฝงในการแข็งตัวขององคชาต และลดระยะเวลาลงอย่างมาก โดย LH ในซีรั่มจะเพิ่มขึ้นและการฝ่อของอวัยวะเสริม

อย่างไรก็ตาม สารสกัดซีดีช่วยอำนวยความสะดวกในการตอบสนองการแข็งตัวขององคชาตโดยการลดเวลาแฝงในการแข็งตัวของอวัยวะเพศและยืดระยะเวลาการแข็งตัวของอวัยวะเพศในหนูที่ถูกตัดตอน ผลกระทบเหล่านี้น่าจะเกิดจากฤทธิ์ที่คล้ายฮอร์โมนแอนโดรเจน ซึ่งได้รับการสนับสนุนโดยการสังเกตว่าสารสกัดจากซีดีทำให้ความเข้มข้นของ LH ในซีรั่มเป็นปกติ โดยเฉพาะที่ปริมาณ 0.90 ก./กก. อย่างไรก็ตาม จำเป็นต้องมีหลักฐานเพิ่มเติมเพื่อแสดงให้เห็นถึงผลกระทบของสารสกัดซีดีต่อภาวะหย่อนสมรรถภาพทางเพศในระดับไฮโปธาลามิกและลิมบิก และควรได้รับความสนใจมากขึ้นกับยาแผนโบราณอันทรงคุณค่านี้ในโลกสมัยใหม่

กิตติกรรมประกาศ

งานนี้ได้รับการสนับสนุนโดยทุนจาก Science and Technology Support by Project in the Xinjiang Uygur Autonomous Region (PR China) (200840102-15)

อ้างอิง

อดิโมเอลยา เอ (2543). ไฟโตเคมิคอลกับความก้าวหน้าของสมุนไพรดั้งเดิมในการจัดการความเสื่อมสมรรถภาพทางเพศ ภายใน เจ. แอนดรอล. 23: 82-84.

อันเดเรส เคแอล (2546). ลักษณะทางชีววิทยาของสารต้านการปลดปล่อยฮอร์โมน gonadotropin โมเลกุลขนาดเล็กที่ออกฤทธิ์ทางปาก (GnRH) โดยใช้หนูที่ถูกตัดตอนและไม่บุบสลาย เจ. ฟาร์มาคอล. ประสบการณ์ เธอ 305: 688-695

Armagan A, Kim NN, Goldstein I และ Traish AM (2549) ความสัมพันธ์ระหว่างการตอบสนองต่อขนาดยาระหว่างฮอร์โมนเพศชายและการแข็งตัวของอวัยวะเพศ: หลักฐานการมีอยู่ของเกณฑ์วิกฤต เจ. แอนดรอล. 27: 517-526.

Bivalacqua TJ, แชมป์ HC, Hellstrom WJ และ Kadowitz PJ (2000) เภสัชบำบัดสำหรับการหย่อนสมรรถภาพทางเพศ แนวโน้ม ฟาร์มาคอล วิทยาศาสตร์, 7: 524-540.

Christoffersen B, Raun K, Svendsen O, Fledelius C และ Golozoubova V (2549) การประเมินหนู Sprague-Dawley เพศผู้ตอนเป็นต้นแบบของโรค metabolic syndrome และเบาหวานชนิดที่ 2 ภายใน เจ. โอเบส., 30: 1288- 1297.

โคฮาน พี และโคเรนแมน เอสจี (2543) ความก้าวหน้าในการแข็งตัวของอวัยวะเพศและการทำงานของฮอร์โมน J. Anti-aging Med., 3: 169-175.

Feldman HA, Goldstein I, Hatzichristou DG, Krane RJ และ McKinlay JB (1994) ความอ่อนแอและความสัมพันธ์ทางการแพทย์และจิตสังคม: ผลการศึกษาผู้สูงอายุในรัฐแมสซาชูเซตส์ เจ. ยูรอล, 151: 54-61.

เขา W, Shu XF, Zong GZ, Shi ML, Xiong YL และ Chen MH (1996b) การศึกษาเกี่ยวกับการเสริมไตและยางที่สนับสนุนการทำงานของ Cistanche Deserticola YC Ma ก่อนและหลังการเตรียม คาง. เจ ชิน แม่ แพทย์ 9: 534-537

เขา W, Zong GZ, Wu GL และ Chen MH (1996a) การสำรวจหาสารออกฤทธิ์ของ Cistanche เกี่ยวกับฤทธิ์คล้ายแอนโดรเจน คาง. เจ ชิน แม่ แพทย์ 9: 564-565

Hellqvist A, Schmitz M และ Borg B (2008) ผลของการตัดตอนและการบำบัดด้วยแอนโดรเจนต่อการแสดงออกของ FSH- และ LH- ในกระดูกสันหลังสามซี่, Gasterosteus aculeatus ความแตกต่างของฟีดแบคที่สื่อกลางการตอบสนองการสุกแก่ช่วงแสง? พล.ต. Endocr., 158: 178-182.

Jang M, Min JW, ใน JG และ Yang DC (2011) ผลของสารสกัดโสมแดงต่อการเคลื่อนไหวของสเปิร์มในหลอดน้ำอสุจิของหนูที่สัมผัสกับเอทานอล ภายใน เจ. ท็อกซิคอล., 30: 435-442.

Ji DB, Ye J, Li CL, Wang YH และ Zhao J (2009) ผลการต่อต้านริ้วรอยของสารสกัด Cordyceps sinensis ไฟโตเทอร์. ความละเอียด 23: 116-122

Jiang Y และ Tu PF (2552). การวิเคราะห์องค์ประกอบทางเคมีในสายพันธุ์ Cistanche เจ. โครมาโตกร์. อ., 1216: 1970-1979.

Jung GW, Kwak JY, Kim IH, Koo MY, Park JI, Yoon S, Jung DG, Jung SI, Kwon HY และ Yoon JH (1999) บทบาทของโกรทแฟคเตอร์ต่อการงอกใหม่ของไนตริกออกไซด์ซินเทส (NOS) ซึ่งมีเส้นประสาทหลังโพรงประสาทอักเสบในหนูแรท ภายใน เจ.อิมพอต. ความละเอียด 11: 227-235

Kupelian V, Shabsigh R, Travison TG, Page ST, Araujo AB และ McKinlay JB (2549) มีความสัมพันธ์ระหว่างฮอร์โมนเพศกับการหย่อนสมรรถภาพทางเพศหรือไม่? ผลลัพธ์จากการศึกษาความชราในเพศชายของรัฐแมสซาชูเซตส์ J. ระบบทางเดินปัสสาวะ,176: 2584-2588.

Liu ZR, Zhang D, Wu HJ, Li YL, Chen SP และ Yang YM (2009) ผลของ Cistanche electuary ต่อการสังเคราะห์ไนตริกออกไซด์และยางบำรุงไต เจ เมด & เภสัช คาง. ขั้นต่ำ 5: 33-34

Luo Q, Li Z, Huang X, Yan J, Zhang S และ Cai YZ (2549) Lycium barbarum polysaccharides: ป้องกันความเสียหายที่เกิดจากความร้อนของอัณฑะของหนู และ H2O2-ที่กระตุ้นความเสียหายของ DNA ในเซลล์อัณฑะของหนู และผลดีต่อพฤติกรรมทางเพศและการสืบพันธุ์ของหนูที่ตัดตอนครึ่งซีก ชีววิทย์.79: 613-621.

มัตสึโมโต้ AM, Karpas AE และ Bremner WJ (1986) การบริหาร chorionic gonadotropin ในมนุษย์แบบเรื้อรังในผู้ชายปกติ: หลักฐานว่าฮอร์โมนกระตุ้นรูขุมขนเป็นสิ่งจำเป็นสำหรับการรักษาการสร้างสเปิร์มปกติเชิงปริมาณในผู้ชาย เจ. คลิน. ต่อมไร้ท่อ Metab.62: 1184-1192

McClure RD (1988) การประเมินต่อมไร้ท่อและการบำบัดภาวะหย่อนสมรรถภาพทางเพศ ยูรอล คลิน. N. Am.,15: 53-64.

โมราเลส A, Buvat J, Gooren LJ, Guay AT, Kaufman JM, Tan HM และ Torres LO (2004) ด้านต่อมไร้ท่อของสมรรถภาพทางเพศในผู้ชาย. เจ. เซ็กซ์เมด., 1: 69-81.

Pantaleão TU, Mousovich F, Rosenthal D, Padrón ÁS, Carvalho DP และ Costa VMCd (2010) ผลของระดับ estradiol และ leptin ในซีรั่มต่อการทำงานของต่อมไทรอยด์ การบริโภคอาหาร และการเพิ่มของน้ำหนักตัวในหนู Wistar เพศเมีย สเตียรอยด์,75: 638-642.Robert WH and Robert EB (2004). การควบคุมฮอร์โมนของการสร้างสเปิร์ม ภายใน เจ. แอนดรอล. 27: 335-342.

Schlatt S, Kim SS และ Gosden R (2545) การสร้างสเปิร์มและสเตียรอยด์เจเนซิสในหนู หนูแฮมสเตอร์ และเนื้อเยื่ออัณฑะของลิงหลังการเก็บรักษาด้วยความเย็น การสืบพันธุ์ 124: 339-346

Stefanova NA, Fursova AZ, Sarsenbaev KN และ Kolosova NG (2011) ผลของ Cistanche Deserticola ต่อพฤติกรรมและสัญญาณของต้อกระจกและจอประสาทตาในหนู OXYS ที่เร่งการชราภาพ เจ. เอธโนฟาร์มาคอล., 138: 624-632.

Talha M, Bilal G, Gökhan T, Arı Z และ Coşkun B (2007) ความสัมพันธ์ของระดับฮอร์โมนเพศกับการหย่อนสมรรถภาพทางเพศ: การทดสอบใดควรทำเป็นประจำ? ยอนเซ แพทย์ ญ. 48:1015

ทอมบัล บี (2548). การตัดตอนที่เหมาะสมกับตัวเร่งปฏิกิริยาฮอร์โมนที่ปลดปล่อยฮอร์โมน luteinizing (LHRH): ระดับฮอร์โมนเทสโทสเตอโรนที่เหมาะสมที่สุดคืออะไร? เออ ยูรอล ภาคผนวก 4: 14-19

Trachtenberg J (1985) ความเข้มข้นของฮอร์โมนเทสโทสเตอโรนที่เหมาะสมที่สุดสำหรับการรักษามะเร็งต่อมลูกหมาก J. ระบบทางเดินปัสสาวะ, 133: 888-890

Traish AM, Goldstein I และ Kim NN (2550) ฮอร์โมนเทสโทสเตอโรนและสมรรถภาพทางเพศ: จากการวิจัยขั้นพื้นฐานสู่กระบวนทัศน์ทางคลินิกใหม่สำหรับการจัดการผู้ชายที่มีภาวะแอนโดรเจนไม่เพียงพอและภาวะหย่อนสมรรถภาพทางเพศ เออ ยูรอล 52: 54-70

Trisomboon H, Watanabe G, Wetchasit P และ Taya K (2550). ผลของการรักษาด้วยสมุนไพรไทย กระชายดำ ใน Hershberger assay โดยใช้หนูที่ยังไม่บรรลุนิติภาวะทุกวัน เจ. สืบพันธุ์. พัฒนา 53: 351- 356

Xiong WT, Gu L, Wang C, Sun HX และ Liu X (2013) ฤทธิ์ต้านน้ำตาลในเลือดสูงและภาวะไขมันในเลือดต่ำของ Cistanche tubulosa ในหนูเมาส์ db/db ที่เป็นเบาหวานชนิดที่ 2 เจ. เอธโนฟาร์มาคอล., 150: 935-945.

Zhao SY, He XY, Jia BG, Peng QY และ Liu X (2011) การผลิตแอกทีโอไซด์จาก Cistanche tubulosa โดยเบต้า-กลูโคซิเดส ปาก. เจ. ฟาร์มา. วิทย์, 24: 135-141.

For more information:1950477648nn@gmail.com