เชิงนามธรรม:แลคโตบาซิลลัสทั้งหมด 20 สายพันธุ์ที่แยกได้จากอินทผลัมหมักได้รับการทดสอบเพื่อหาศักยภาพของโปรไบโอติกโดยเปรียบเทียบความเสถียรของค่า pH ความต้านทานต่อค่า pH ต่ำ และความสามารถในการทนต่อเกลือน้ำดี จากทั้งหมด 20 สายพันธุ์ 3 สายพันธุ์ชื่อ Lactobacillus pentosus KAU001, Lactiplantibacillus pentosus KAU002 และ Lactiplantibacillus plantarum KAU003 มีความทนทานต่อกรดและเกลือน้ำดีสูงและสามารถยึดติดกับผนังลำไส้ได้ นอกจากนี้ ทั้งสามไอโซเลทยังได้รับการทดสอบคุณสมบัติต้านออกซิเดชั่น ต้านเอนไซม์กลูโคซิเดส ลดคอเลสเตอรอล และต้านการอักเสบ ในหมู่พวกมัน สายพันธุ์ KAU001 และ KAU002 ยับยั้ง -กลูโคซิเดส, ลดระดับคอเลสเตอรอล, ยับยั้งการผลิตไนตริกออกไซด์ และแสดงความสามารถในการต้านออกซิเดชันที่สูงกว่าซึ่งดีกว่าสายพันธุ์ KAU003 อย่างมีนัยสำคัญ ทั้งสองสายพันธุ์ยังยับยั้งการปลดปล่อยตัวกลางที่ทำให้เกิดการอักเสบ เช่น TNF- , IL-6 และ IL-10 ที่ถูกกระตุ้นโดย LPS บนมาโครฟาจ RAW 264.7 (p < 0.001) อย่างมีนัยสำคัญ (p < 0.001) ผลลัพธ์บ่งชี้ว่า KAU001 และ KAU002 มีศักยภาพด้านโปรไบโอติกสูงสุด ซึ่งอาจปรับสุขภาพเมตาบอลิซึม และลดไซโตไคน์ที่ก่อให้เกิดการอักเสบเพื่อตอบสนองต่อปฏิกิริยาภูมิแพ้

Glycoside ของ cistanche ยังสามารถเพิ่มกิจกรรมของ SOD ในเนื้อเยื่อหัวใจและตับ และลดปริมาณของ lipofuscin และ MDA ในแต่ละเนื้อเยื่อได้อย่างมีประสิทธิภาพ กำจัดอนุมูลออกซิเจนที่ทำปฏิกิริยาต่างๆ (OH-, H₂O₂ ฯลฯ) ได้อย่างมีประสิทธิภาพ และป้องกันความเสียหายของ DNA ที่เกิดขึ้น โดย OH-อนุมูล Cistanche phenylethanoid glycosides มีความสามารถในการกำจัดอนุมูลอิสระที่แข็งแกร่ง ความสามารถในการลดที่สูงกว่าวิตามินซี ปรับปรุงกิจกรรมของ SOD ในการระงับสเปิร์ม ลดปริมาณของ MDA และมีผลป้องกันบางอย่างต่อการทำงานของเยื่อหุ้มสเปิร์ม โพลีแซคคาไรด์ของ Cistanche สามารถเสริมการทำงานของ SOD และ GSH-Px ในเม็ดเลือดแดงและเนื้อเยื่อปอดของหนูทดลองที่ชราภาพซึ่งเกิดจาก D-galactose รวมทั้งลดปริมาณ MDA และคอลลาเจนในปอดและพลาสมา และเพิ่มเนื้อหาของอีลาสติน ส่งผลดีต่อ DPPH, ยืดเวลาการขาดออกซิเจนในหนูชรา, ปรับปรุงกิจกรรมของ SOD ในซีรั่ม, และชะลอการเสื่อมทางสรีรวิทยาของปอดในหนูชราทดลองที่มีความเสื่อมทางสัณฐานวิทยาของเซลล์, การทดลองแสดงให้เห็นว่า Cistanche มีความสามารถในการต้านอนุมูลอิสระที่ดี และมีศักยภาพในการเป็นยาป้องกันและรักษาโรคชราทางผิวหนัง ในขณะเดียวกัน echinacoside ใน Cistanche มีความสามารถที่สำคัญในการกำจัดอนุมูลอิสระ DPPH และสามารถกำจัดสายพันธุ์ออกซิเจนที่เกิดปฏิกิริยาและป้องกันการเสื่อมสลายของคอลลาเจนที่เกิดจากอนุมูลอิสระ และยังมีผลการซ่อมแซมที่ดีต่อความเสียหายของแอนไอออนจากอนุมูลอิสระของไทมีน

คลิกที่ Cistanche ทำงาน

【สำหรับข้อมูลเพิ่มเติม: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】

คำสำคัญ:อัจวา ; มาดีนะห์ ; โปรไบโอติก; การอักเสบ; อาหาร

1. บทนำ

โปรไบโอติกเป็นผลิตภัณฑ์เสริมอาหารที่ประกอบด้วยสายพันธุ์จุลินทรีย์ที่มีชีวิตซึ่งสามารถตั้งรกรากในทางเดินอาหาร (ถาวรหรือชั่วคราว) เพื่อปรับปรุงสุขภาพของมนุษย์ [1,2] โปรไบโอติกมีประโยชน์เมื่อพืชพื้นเมืองของระบบทางเดินอาหารหยุดชะงัก โปรไบโอติกที่เสริมจากภายนอกอาจไปตั้งรกรากในทางเดินอาหารชั่วคราว และทำให้สมดุลของจุลินทรีย์คงที่ ซึ่งจะคืนค่าการทำงานทางสรีรวิทยาที่สำคัญในที่สุด [1–5] คำว่า "โปรไบโอติก" โดยทั่วไปจำกัดเฉพาะสปีชีส์ที่เป็นของสกุลแลคติกแอซิดแบคทีเรีย (LAB) เช่น Lactobacillus acidophilus, Lactobacillus rhamnosus, Lactobacillus gasseri, Lactobacillus fermentum, Lactobacillus sakei และ Lactobacillus plantarum ในฐานะที่เป็นโปรไบโอติกที่สำคัญเนื่องจากสายพันธุ์- คุณสมบัติเฉพาะที่เป็นประโยชน์ต่อสุขภาพ [6–15]. การวิจัยในปัจจุบันเกี่ยวกับโปรไบโอติกบ่งชี้ว่าสายพันธุ์แบคทีเรียควรตอบสนองความต้องการเฉพาะ รวมถึงความต้านทานต่อความเข้มข้นของกรดและน้ำดีสูง การยึดเกาะและการจัดตั้งในเยื่อบุผิวในลำไส้ การผลิตสารต้านจุลชีพ และการปรับการตอบสนองของภูมิคุ้มกัน [1,9,10,14,16 ,17].

เป็นที่รู้จักสำหรับความสามารถในการหลั่งสารต้านจุลชีพต่างๆ รวมทั้งแบคเทอริโอซิน โปรไบโอติกช่วยอำนวยความสะดวกในการตอบสนองของภูมิคุ้มกันผ่านการหลั่งของ IgA เพื่อต่อสู้กับเชื้อโรคที่อาจเกิดขึ้น ลดอาการแพ้ กระตุ้นเยื่อเมือกในลำไส้ใหญ่ เพิ่มความคงตัวของจุลินทรีย์ในเนื้อเยื่อ และลด การยึดเกาะของเชื้อโรครวมทั้งส่งเสริมการฟื้นตัว [4,5,18–20] แบคทีเรียที่ผลิตโดย L. gasseri เป็นที่รู้จักกันดีที่สุด ซึ่งแก๊ส sericin-A ที่ผลิตโดย L. gasseri LA39 แยกได้จากอุจจาระของทารก [21] มีรายงานว่า Verdenelli et al. ที่แยกเชื้อ L. rhamnosus IMC 501 จากอุจจาระของผู้สูงอายุชาวอิตาลี แสดงการยึดเกาะสูงกับระบบทางเดินอาหารและขัดขวางการเจริญเติบโตของเชื้อโรค โดยเฉพาะ Candida albicans [22] โปรไบโอติกอีกชนิดหนึ่งที่แยกได้จากคูมิสคือ L. casei Zhang ยังพบว่ามีคุณสมบัติต้านทานกรดและเกลือน้ำดีสูง การคงอยู่ของระบบทางเดินอาหาร ฤทธิ์ต้านจุลชีพ รวมถึงคุณสมบัติในการลดคอเลสเตอรอล [23] เนื่องจากมูลค่าการค้าที่กว้างขวางและประโยชน์ต่อสุขภาพที่เกิดจากโปรไบโอติก การแยกอย่างต่อเนื่องและลักษณะของสายพันธุ์ใหม่จึงกลายเป็นแนวโน้มที่เกิดขึ้น เนื่องจากแบคทีเรียที่มีประโยชน์เหล่านี้เป็นการบำบัดทางชีวภาพหลายแง่มุมที่มีศักยภาพมากที่สุด [1,9,10,14,18,24 –31].

การศึกษานี้มีวัตถุประสงค์เพื่อประเมินศักยภาพของโปรไบโอติกของแลคโตบาซิลลัส 20 สายพันธุ์ที่แยกได้จากอินทผลัมหมัก พร้อมทั้งความต้านทานต่อความเข้มข้นของกรดและน้ำดีสูง นอกจากนี้ เชื้อที่แยกได้ได้ถูกตรวจสอบคุณสมบัติการทำงานต่างๆ เช่น การยึดเกาะกับผนังลำไส้ การต้านออกซิเดชัน การยับยั้งการทำงานของเอนไซม์กลูโคซิเดส การลดคอเลสเตอรอล และการต้านการอักเสบ

2. วัสดุและวิธีการ

2.1. การแยกและการจำแนกสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัส

แยกแบคทีเรียกรดแลคติกทั้งหมด 20 สายพันธุ์จากอินทผลัม Ajwa หมักโดยใช้วุ้น BCP (โบรโมครีซอลม่วงแลคโตส) สายพันธุ์นี้เติบโตต่อไปใน MRS agar (de Man, Rogosa และ Sharpe) และสายพันธุ์ที่เพาะเลี้ยงบริสุทธิ์ถูกเก็บไว้ในกลีเซอรอล 60 เปอร์เซ็นต์ (v/v) ที่ −80 ◦C [32] ก่อนการทดลองแต่ละครั้ง กระตุ้นการเพาะเลี้ยงโดยการเพาะเลี้ยงสองครั้งในน้ำซุป MRS ก่อนนำไปใช้ สารลอยเหนือตะกอนที่ปราศจากเซลล์ถูกเตรียมโดยการเพาะเลี้ยง LAB แต่ละตัวที่แยกได้ในน้ำซุป MRS ที่ 37 ◦C เป็นเวลา 24 ชั่วโมง ตามด้วยการหมุนเหวี่ยง (10,000× g เป็นเวลา 10 นาที) และการฆ่าเชื้อด้วยตัวกรอง [7,8,18] สายพันธุ์ที่ไวต่อยาปฏิชีวนะถูกส่งไปยังลำดับยีน 16S rRNA เพื่อระบุตัวตน [8]

2.2. คุณสมบัติของโปรไบโอติกของตัวอย่างที่แยกได้ในระบบทางเดินอาหาร

การอยู่รอดของน้ำย่อยและเกลือน้ำดี:

ความต้านทานของ LAB ที่เลือกแยกได้ต่อน้ำย่อยเทียมและเกลือน้ำดีได้รับการทดสอบตามโปรโตคอลที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ [18] โดยสังเขป มีการเตรียมหัวเชื้อที่มีความเข้มข้นของเซลล์ 2.5 × 108 CFU/มล. ในน้ำย่อยเทียมและเกลือน้ำดี สำหรับน้ำย่อย MRS ได้รับการเสริมด้วยเพปซิน (1,000 หน่วย/มล.) ที่ค่า pH สุดท้ายที่ 3 ในทำนองเดียวกัน น้ำดีเทียมถูกเตรียมโดยการเติมตับอ่อน 5 เปอร์เซ็นต์ใน MRS กับน้ำดีวัว 1 เปอร์เซ็นต์ และปรับค่า pH สุดท้ายเป็น 7

2.3. การยึดเกาะกับ HT-29 เซลล์ในลำไส้ 

เซลล์ HT-29 ถูกใช้เพื่อตรวจสอบความสามารถของ LAB ที่แยกได้ที่เลือกไว้ในการยึดติดกับลำไส้โดยใช้วิธีการที่อธิบายโดย Kim และคณะ [33]. จำนวนเซลล์ที่มีชีวิตถูกกำหนดโดยใช้วิธีสเปรดเพลตบน MRS agar [34]

2.4. การศึกษาในหลอดทดลองของคุณสมบัติเชิงหน้าที่ของสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัส

การกำหนดฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ:

กิจกรรมการต้านอนุมูลอิสระของ LAB ที่แยกได้นั้นถูกกำหนดโดยการประมาณความสามารถในการกำจัดอนุมูลโดยใช้ 2,20 -casino-bis (3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) (ABTS) assay, ferric -การทดสอบการลดพลังงานของสารต้านอนุมูลอิสระ (FRAP) และการทดสอบ 2,2-diphenyl- 1-picrylhydrazyl (DPPH) การทดสอบ ABTS, FRAP และ DPPH ดำเนินการตามวิธีที่อธิบายไว้ในที่อื่น [14,35–37]

2.5. n - การยับยั้งกลูโคซิเดส 

การยับยั้ง -GLU ดำเนินการตามวิธีการที่อธิบายไว้ก่อนหน้านี้ [14,32] โดยใช้ -GLU จาก Saccharomyces cerevisiae (Sigma, St. Louis, MO, USA) โดยมีการดัดแปลงเล็กน้อย [32] โดยสังเขป 25 µL -GLU (0.17 U/mL) และ 50 µL ของโพแทสเซียมฟอสเฟตบัฟเฟอร์ผสมกับ 10 µL ของตัวอย่างทดสอบ ใช้ PBS และ MRS เป็นตัวควบคุม จากนั้น เพิ่ม pNPG 5 มิลลิโมลาร์ตามด้วยการบ่มที่อุณหภูมิ 37 ◦ซ เป็นเวลา 30 นาที ในที่สุด ปฏิกิริยาของเอนไซม์ถูกหยุดโดยการเติม 100 µL ของ 0.2 M Na2CO3 ตรวจสอบค่าการดูดกลืนแสงโดยใช้ไมโครเพลทที่ 405 นาโนเมตร เปอร์เซ็นต์การยับยั้งของ -GLU สำหรับแต่ละสายพันธุ์คำนวณโดยทำตามสมการ (1)

2.6. การกำหนดกิจกรรมลดคอเลสเตอรอล

กิจกรรมการลดคอเลสเตอรอลได้รับการประเมินโดยใช้วิธีการดัดแปลงที่อธิบายโดย Oh et al [35]. ตรวจหาโคเลสเตอรอลที่เหลือโดยใช้ชุดทดสอบโคเลสเตอรอลทั้งหมดตามโปรโตคอลของผู้ผลิต เพื่อทำหน้าที่เป็นตัวควบคุมเชิงลบ ยังได้วิเคราะห์คอเลสเตอรอลในน้ำซุปที่ผ่านการฆ่าเชื้อแล้ว

2.7. ฤทธิ์ต้านการอักเสบของ LAB ที่แยกได้ใน RAW 264.7 Macrophage Cells

ซื้อสายพันธุ์เซลล์มาโครฟาจของหนู RAW 264.7 จากธนาคารเซลล์เกาหลี (โซล ประเทศเกาหลี) และเพาะเลี้ยงใน FBS 10 เปอร์เซ็นต์ด้วยเพนิซิลลินและสเตรปโตมัยซิน 1 เปอร์เซ็นต์ที่ 100 U/mL และ 100 µg/L ตามลำดับ ที่ 37 ◦ C ที่มี CO2 ร้อยละ 5 ในบรรยากาศที่มีความชื้น เซลล์ถูกเพาะเลี้ยงย่อยและชุบที่ 80–90 เปอร์เซ็นต์ เราปฏิบัติต่อเซลล์ RAW 264.7 (1 × 106 เซลล์/มล.) ด้วยความเข้มข้นสองระดับของ LAB (7 หรือ 8 Log CFU/มล.) ในสื่อ DMEM โดยไม่ใช้ยาปฏิชีวนะเป็นเวลา 12 ชั่วโมงก่อนที่จะเปิดเผยเซลล์เป็น 100 ng/mL LPS เป็นเวลา 18 ชั่วโมงเพื่อประเมิน ฤทธิ์ต้านการอักเสบของพวกเขา มีการใช้ยาปฏิชีวนะที่ขาดแคลนปานกลางในการละลายตัวอย่างแบคทีเรีย จากนั้นเติมลงในอาหารเลี้ยงเซลล์โดยตรง การใช้ปฏิกิริยา Griess วัดค่า NO ในเซลล์ที่เหนี่ยวนำโดย LPS PCR แบบเรียลไทม์เชิงปริมาณถูกใช้เพื่อกำหนดการแสดงออกของ mRNA ของ TNF- , IL-6 และ IL-10 ที่ปล่อยออกมา

2.8. การวิเคราะห์ทางสถิติ 

จากการทดลองอิสระที่ดำเนินการเป็นสามเท่า ข้อมูลทั้งหมดจะแสดงเป็นค่าเฉลี่ยบวกส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐาน (SD) การวิเคราะห์ความแปรปรวนทางเดียว (ANOVA) วิเคราะห์ความแตกต่างทางสถิติระหว่างหลายกลุ่มโดยใช้การทดสอบแบบหลายช่วงของดันแคน การทดสอบ t-test ของนักเรียนด้านเดียวที่ไม่มีการจับคู่วิเคราะห์ความแตกต่างทางสถิติระหว่างสองกลุ่ม p-values ​​< 0.05 ถือว่ามีนัยสำคัญทางสถิติ

3. ผลลัพธ์

3.1. การคัดกรองและแยกสายพันธุ์แบคทีเรียจากอินทผลัมอัจวาหมัก

อินทผลัม Ajwa ได้มาจากตลาดท้องถิ่นในเมือง Madinah ประเทศซาอุดีอาระเบีย เมล็ดถูกสกัดและบดเป็นผง จากนั้นนำผงเมล็ดผสมกับอินทผาลัมไร้เมล็ดและน้ำที่ผ่านการฆ่าเชื้อแล้วที่ความเข้มข้นสุดท้าย 5 เปอร์เซ็นต์ แล้วเก็บไว้ในขวดแก้ว ภาชนะบรรจุถูกเก็บไว้ที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 48 ชั่วโมง ตามด้วยการบ่มที่อุณหภูมิ 10 ◦C เป็นเวลา 10 วันเพื่อให้การหมักสมบูรณ์ แบคทีเรียกรดแลคติก (LAB) ทั้งหมด 20 สายพันธุ์ถูกแยกออกจากวันที่หมักโดยใช้วุ้น BCP ตามวิธีการที่รายงานก่อนหน้านี้ [7,18] หลังจากการคัดกรองเบื้องต้น LAB สายพันธุ์ที่เลือกสามสายพันธุ์ถูกระบุเป็น Lactobacillus pentosus KAU001, Lactiplantibacillus pentoses KAU002 และ Lactiplantibacillus plantarum KAU003 และส่งลำดับใน GenBank โดยมีหมายเลขภาคยานุวัติ ON514175, ON514180 และ ON514177 ตามลำดับ

3.2. คุณสมบัติโปรไบโอติกของสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสในระบบทางเดินอาหาร

โปรไบโอติกต้องมีชีวิตอยู่ในระบบทางเดินอาหารเพื่อออกแรงให้เกิดประโยชน์ ดังนั้น เพื่อเป็นอาหารเสริม พวกมันต้องรอดจากการผ่านเกลือน้ำดีสูงและโซนที่อุดมด้วยกรด (pH ต่ำ) ในทางเดินอาหารก่อนที่จะตั้งอาณานิคม ในมนุษย์และสัตว์ส่วนใหญ่ ตับจะสังเคราะห์กรดน้ำดีจากคอเลสเตอรอล เก็บไว้ในถุงน้ำดี และหลั่งกรดน้ำดีไปยังลำไส้เล็กหลังจากรับประทานอาหารที่มีไขมันมาก เพื่อให้มีคุณสมบัติเป็นโปรไบโอติก แบคทีเรียกรดแลคติกชนิดใหม่ต้องสามารถทนต่อเกลือน้ำดีสูงและ pH ต่ำในลำไส้ได้ ผง Oxgall ซึ่งเป็นผลิตภัณฑ์ที่ได้จากน้ำดีของวัว มักใช้แทนน้ำดีของมนุษย์เพื่อวัดความสามารถในการทนต่อน้ำดีของโปรไบโอติก เนื่องจากมีความคล้ายคลึงกับองค์ประกอบของน้ำดีของมนุษย์ แลคโตบาซิลลัสที่แยกได้ทั้งสามสายพันธุ์มีความทนทานสูงต่อค่า pH ที่เป็นกรดที่ไม่เป็นมิตรที่ 30 โดยมีอัตราการรอดชีวิต 92 เปอร์เซ็นต์และ 97 เปอร์เซ็นต์ใน KAU002 และ KAU003 ตามลำดับ (รูปที่ 1) ในทำนองเดียวกัน ที่ความเข้มข้น 1 เปอร์เซ็นต์ของเกลือน้ำดี เชื้อที่แยกได้แสดงอัตราการรอดชีวิตตั้งแต่ 91 เปอร์เซ็นต์ถึง 97.4 เปอร์เซ็นต์หลังจากการฟักตัวเป็นเวลา 6 ชั่วโมง

ทั้งสามไอโซเลทได้รับการทดสอบว่ายึดติดกับ HT-29 เซลล์มะเร็งต่อมน้ำเหลืองในลำไส้ของมนุษย์ซึ่งเป็นข้อกำหนดเบื้องต้นในการตั้งรกรากในลำไส้ของมนุษย์ สายพันธุ์ KAU001 และ KAU002 แสดงความสามารถในการยึดเกาะที่สูงขึ้น (เกิน 80 เปอร์เซ็นต์) ในเซลล์ลำไส้ใหญ่ของมนุษย์ คุณสมบัติต่างๆ เช่น ความทนทานต่อค่า pH ที่เป็นกรดสูงขึ้น ความสามารถในการอยู่รอดในความเข้มข้นของเกลือน้ำดีที่สูงขึ้น และอัตราการยึดเกาะที่สูงขึ้นกับเซลล์ลำไส้ใหญ่ทำให้คุณสมบัติที่แยกได้นี้เป็นสายพันธุ์แบคทีเรียโปรไบโอติกแลคติกแอซิดที่มีศักยภาพ

3.3. กิจกรรมต้านการอักเสบของสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัส

ในการตรวจสอบคุณสมบัติต้านการอักเสบ แอนติเจนทั่วไป—ไลโปโพลีแซคคาไรด์ (LPS)—ถูกนำมาใช้เพื่อกระตุ้นเซลล์มาโครฟาจ RAW 264.7 และเซลล์เหล่านี้ได้รับการฉีดวัคซีนด้วยแลคโตบาซิลลัสที่แยกได้ การทดสอบ MTT ไม่แสดงผลกระทบที่เป็นพิษต่อเซลล์ของแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ต่อเซลล์ RAW 264.7 (ไม่แสดงข้อมูล) แบคทีเรียที่แยกได้ (KAU001 และ KAU002) ที่ความเข้มข้นสองระดับคือ 107 และ 108 CFU/mL ยับยั้งการผลิตไนตริกออกไซด์ (NO) อย่างมีนัยสำคัญเมื่อเปรียบเทียบกับเซลล์ที่กระตุ้นด้วย LPS กลุ่มควบคุม (รูปที่ 2) นอกจากนี้ ปริมาณของการแสดงออกของไซโตไคน์ที่เกิดจากการอักเสบของ TNF- , IL-6 และ IL-10 ใน RAW 264.7 ที่กระตุ้นด้วย LPS ถูกวัดปริมาณโดยใช้ qRT-PCR แลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ KAU001, KAU002 และ KAU003 ลดการแสดงออกของไซโตไคน์ที่ทำให้เกิดการอักเสบอย่างมีนัยสำคัญในลักษณะที่ขึ้นกับความเข้มข้น (รูปที่ 3)

4. การอภิปราย

โพรไบโอติกส์ประกอบด้วยแบคทีเรียกรดแลคติคเป็นส่วนใหญ่ เป็นที่ทราบกันดีว่ามีประโยชน์ต่อสุขภาพโดยเฉพาะต่อโฮสต์ผ่านการล่าอาณานิคมของระบบทางเดินอาหาร [38] เพื่อแสดงผลการรักษาทางชีวภาพดังกล่าว สายพันธุ์โปรไบโอติกควรอยู่รอดได้ผ่านทางระบบทางเดินอาหารและตั้งรกรากในลำไส้เล็กและลำไส้ใหญ่เป็นระยะเวลาที่เพียงพอ [18,38] สายพันธุ์ เช่น KAU001 และ KAU003 มีความทนทานต่อกรดและน้ำดีมากที่สุด และการยึดเกาะกับเซลล์ HT-29 สูงกว่าอย่างมีนัยสำคัญ

LAB บางชนิดที่แยกได้จากซีคัมของไก่แสดงการรอดชีวิตที่จำกัดที่ 60 เปอร์เซ็นต์ถึง 80 เปอร์เซ็นต์หลังจากสัมผัสกับสภาพแวดล้อมที่เป็นกรดที่มีค่า pH 2–2.5 เป็นเวลา 3 ชั่วโมง [2,4,39–41] ในทางตรงกันข้าม อัตราการรอดชีวิตสูงถึงร้อยละ 92.75~97.26 ในการศึกษานี้ กลไกการป้องกันตามธรรมชาติของมนุษย์ต่อเชื้อโรคในลำไส้คือการผลิตกรดไฮโดรคลอริกซึ่งช่วยลดค่า pH ในกระเพาะอาหาร ดังนั้นเชื่อว่าสายพันธุ์ที่มีความทนทานต่อกรดจะอยู่รอดในการขนส่งผ่านระบบทางเดินอาหารส่วนบน ในขณะที่ในลำไส้เล็กและลำไส้ใหญ่ เกลือน้ำดีที่มีมากยังเป็นเกราะป้องกันไม่ให้แบคทีเรียก่อโรคเกาะติด ดังนั้นการอยู่รอดในน้ำดีจึงถือเป็นปัจจัยสำคัญสำหรับโปรไบโอติกในการตั้งรกรากในลำไส้ [17] กลไกของโปรไบโอติกในการต่อต้านผลเสียของเกลือน้ำดีคือการผลิตเอนไซม์น้ำดีเกลือไฮโดรเลส (BSH) ซึ่งสามารถสลายเกลือน้ำดีที่ควบแน่นได้ ซึ่งจะช่วยลดความเป็นพิษ [23,40] ข้อกำหนดที่สำคัญอีกประการหนึ่งสำหรับสายพันธุ์โปรไบโอติกคือความสามารถในการเกาะติดกับเซลล์เยื่อบุผิวในลำไส้ ซึ่งช่วยให้พวกมันตั้งรกรากในลำไส้ แข่งขันกับเชื้อโรค และมอบผลประโยชน์ให้กับโฮสต์ [42,43] ในบรรดาสายพันธุ์ทั้งหมดที่ทดสอบ KAU001, KAU002 และ KAU003 แสดงให้เห็นถึงความสามารถสูงในการอยู่รอดของระบบทางเดินอาหารและการยึดเกาะกับเซลล์ลำไส้ใหญ่ โดยจัดให้พวกมันเป็นโปรไบโอติกที่มีศักยภาพ

พบว่า KAU001 และ KAU002 มีศักยภาพในการต้านอนุมูลอิสระอย่างมีนัยสำคัญ โดยเฉพาะ KAU001 ผลลัพธ์เหล่านี้สนับสนุนว่า LAB ทั้งสองสายพันธุ์มีประสิทธิภาพสูงในการกำจัดอนุมูลเปอร์ออกซิล โปรไบโอติกที่มีศักยภาพในการต้านอนุมูลอิสระสูงอาจช่วยลดความเสียหายจากปฏิกิริยาออกซิเดชันที่เกิดจากอนุมูลอิสระ ซึ่งจะเป็นการส่งเสริมประโยชน์ต่อสุขภาพ เช่น ชะลอการแก่ของเซลล์ เนื่องจากกระบวนการชรามีความเกี่ยวข้องอย่างมากกับความเครียดจากปฏิกิริยาออกซิเดชันที่สะสม นอกจากนี้ KAU001 และ KAU002 ยังยับยั้งการทำงานของเอนไซม์กลูโคซิเดส ซึ่งเป็นหนึ่งในปัจจัยสำคัญที่ทำให้เกิดโรคเมตาบอลิซึม เช่น เบาหวานและโรคอ้วน

การลดลงของ -กลูโคซิเดสอาจบ่งบอกถึงความสามารถของสายพันธุ์เหล่านี้ในการลดการดูดซึมน้ำตาลในลำไส้ ดังนั้นจึงอาจลดความเสี่ยงต่อโรคเบาหวานได้ นอกจากนี้ สายพันธุ์ทั้งสองยังลดระดับคอเลสเตอรอลลงอย่างมีนัยสำคัญ ซึ่งอาจช่วยลดความเสี่ยงของระดับคอเลสเตอรอลสูงและโรคหัวใจและหลอดเลือด มีการตั้งสมมติฐานว่า BSH ที่ผลิตโดยสายพันธุ์ LAB มีหน้าที่รับผิดชอบคุณสมบัติต้านคอเลสเตอรอลผ่านการแยกเกลือน้ำดี เกลือน้ำดีที่แยกออกจากกันจะถูกลำไส้ดูดซึมกลับได้น้อยลง และพวกมันจะถูกขับออกทางอุจจาระ ดังนั้นการแทนที่เกลือน้ำดีจากคอเลสเตอรอลจะทำให้ระดับคอเลสเตอรอลในเลือดลดลง [30]

ในการตอบสนองต่อการกระตุ้นด้วย LPS ในมาโครฟาจ RAW 264.7 เซลล์จะผลิต NO เพื่อเป็นโมเลกุลป้องกันพิษเพื่อต่อสู้กับเชื้อโรค และสิ่งนี้นำไปสู่การอักเสบ การรักษาด้วยแลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ลดการผลิต NO ในมาโครฟาจที่กระตุ้นแอนติเจน ควบคู่ไปกับการเพิ่มความเข้มข้นของแลคโตบาซิลลัส ในทำนองเดียวกัน ระดับการแสดงออกของ TNF- , IL-6 และ IL-10 ก็ลดลงเช่นกันเมื่อความเข้มข้นของ KAU001 และ KAU002 เพิ่มขึ้น ซึ่งแสดงให้เห็นถึงคุณสมบัติต้านการอักเสบของสายพันธุ์เหล่านี้ ในปฏิกิริยาการแพ้ที่กระตุ้นโดยแอนติเจน เช่น โรคจมูกอักเสบจากภูมิแพ้และผิวหนังอักเสบจากภูมิแพ้ ความรุนแรงของโรคอาจเพิ่มขึ้นเมื่อเวลาผ่านไปด้วยการสัมผัสซ้ำๆ และอาจทำให้เกิดการอักเสบที่ไม่สามารถควบคุมได้ [41] โดยปกติแล้ว ยาต้านการอักเสบ เช่น สเตียรอยด์ จะใช้ในการควบคุมโรคเหล่านี้ อย่างไรก็ตามยามีผลข้างเคียงมากมาย โปรไบโอติกเป็นหนึ่งในทางเลือกที่ปลอดภัยกว่าในการต่อสู้กับปัญหาภูมิไวเกินเหล่านี้ เนื่องจากแบคทีเรียที่เป็นประโยชน์มีคุณสมบัติต้านการอักเสบที่ดีเยี่ยม

5. สรุปผลการวิจัย

โดยสรุป สายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสที่แยกได้จากวันที่หมักพบว่าทั้งสามสายพันธุ์ KAU001 KAU002 และ KAU003 สามารถอยู่รอดได้ในระบบทางเดินอาหารและเกาะติดกับเยื่อบุลำไส้ สายพันธุ์ KAU001 และ KAU002 เป็นโปรไบโอติกที่มีศักยภาพโดยมีผลส่งเสริมสุขภาพที่สำคัญในด้านของสุขภาพเมตาบอลิซึมและปฏิกิริยาภูมิไวเกิน เนื่องจากความสามารถในการออกฤทธิ์ต้านออกซิเดชัน การยับยั้งการทำงานของเอนไซม์กลูโคซิเดส การลดคอเลสเตอรอลและสารต้าน - ผลการอักเสบ สายพันธุ์จากพืชเหล่านี้ควรได้รับการพิจารณาสำหรับลักษณะเฉพาะเพิ่มเติมและการค้าในอุตสาหกรรมอาหารและผลิตภัณฑ์นม

ผลงานของผู้เขียน:การสร้างแนวคิด IAR; วิธีการ AAM AF และ HMA; ซอฟต์แวร์ S.-HY และ IAR; การตรวจสอบ Y.-HP, IAR และ Y.-YH; การวิเคราะห์อย่างเป็นทางการ AAM; สืบสวน สวท.; แหล่งข้อมูล AF, HMA, S.-HY, Y.-HP และ IAR; การจัดการข้อมูล AAM; การเขียน—การเตรียมร่างต้นฉบับ, AAM, IAR และ Y.-YH; การเขียน—การตรวจทานและการแก้ไข Y.-HP, Y.-YH และ IAR; การสร้างภาพ, Y.-HP; การกำกับดูแล IAR; การบริหารโครงการ AAM และ IAR; การได้มาซึ่งเงินทุน, AAM และ HMA ผู้เขียนทุกคนได้อ่านและยอมรับต้นฉบับฉบับที่เผยแพร่แล้ว

เงินทุน: โครงการนี้ได้รับทุนสนับสนุนจากคณบดีฝ่ายวิจัยวิทยาศาสตร์ (DSR) มหาวิทยาลัย King Abdulaziz เมืองเจดดาห์ ภายใต้ทุนสนับสนุนเลขที่ (DF-552-130-1441) ผู้เขียนจึงขอขอบคุณการสนับสนุนด้านเทคนิคและการเงินของ DSR

คำชี้แจงของคณะกรรมการพิจารณาสถาบัน:ไม่สามารถใช้ได้.

คำชี้แจงความยินยอมที่ได้รับการบอกกล่าว:ไม่สามารถใช้ได้.

คำชี้แจงความพร้อมใช้งานของข้อมูล:ข้อมูลที่สร้างขึ้นถูกอ้างถึงในต้นฉบับ

ผลประโยชน์ทับซ้อน:ผู้เขียนประกาศว่าไม่มีความขัดแย้งทางผลประโยชน์

อ้างอิง

1. เซง, Z.; ลู, เจ; ซูโอ, ฉ.; จาง วาย; แม่, H.; Chen, S. การคัดกรองสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสโปรไบโอติกที่มีศักยภาพโดยอิงจากกิจกรรมการยับยั้ง Dipeptidyl Peptidase IV และ -Glucosidase สูง เจ. ฟังก์ชัน. อาหาร 2016, 20, 486–495. [ครอสรีฟ]

2. เรด จี; จัสเจ; เซบุลสกี้, มอนแทนา; McCormick, JK ศักยภาพการใช้โปรไบโอติกในทางคลินิก คลิน. ไมโครไบโอล. รายได้ 2003, 16, 658–672 [ครอสรีฟ]

3. ปาร์เวซ เอส; มาลิก, KA; อาคัง ส.; Kim, HY โปรไบโอติกและผลิตภัณฑ์อาหารหมักมีประโยชน์ต่อสุขภาพ เจ แอพเพิล ไมโครไบโอล. 2549, 100, 1171–1185. [ครอสรีฟ]

4. โมห์ซิน ม.; จาง ซี; Yin, G. ผลของโปรไบโอติกต่อประสิทธิภาพและสุขภาพลำไส้ของไก่เนื้อที่ติด Eimeria tenella วัคซีน 2022, 10, 97. [CrossRef]

5. มาร์ติเนซ, RCR; เบดานี อาร์; Saad หลักฐานทางวิทยาศาสตร์ของ SMI สำหรับผลกระทบต่อสุขภาพที่เกิดจากการบริโภคโปรไบโอติกและพรีไบโอติก: การอัปเดตสำหรับมุมมองปัจจุบันและความท้าทายในอนาคต บร. เจ นัท 2015, 114, 1993–2015. [ครอสรีฟ]

6. ยีราฟฟา จี; Chanishvili, N.; Widyastuti, Y. ความสำคัญของแลคโตบาซิลลัสในเทคโนโลยีชีวภาพด้านอาหารและอาหารสัตว์. ความละเอียด ไมโครไบโอล. 2553, 161, 480–487. [ครอสรีฟ] [PubMed]

7. ค่อนข้าง IA; ซอ, บีเจ; มาร์, วีเจอาร์; ชอย, U.-H.; ชอย, ค.-ฮ.; ลิม, เจ; พาร์ค, วาย.-เอช. ศักยภาพการอนุรักษ์ทางชีวภาพของ Lactobacillus plantarum YML007 และประสิทธิภาพการใช้แทนสารเคมีกันบูดในอาหารสัตว์ วิทย์อาหาร. เทคโนโลยีชีวภาพ 2014, 23, 195–200. [ครอสรีฟ]

8. อาหมัด ค่อนข้าง, I.; ซอ, บีเจ; เรจิช มาร์, วีเจ; ชอย เอ่อ; ชอย, KH; ลิม, JH; Park, การแยก YH และลักษณะของสารประกอบต้านเชื้อราที่มีโปรตีนจาก Lactobacillus plantarum YML007 และการประยุกต์ใช้เป็นสารถนอมอาหาร เล็ต แอป ไมโครไบโอล. 2556, 57, 69–76. [ครอสรีฟ] [PubMed]

9. ค่อนข้าง IA; บัจพาย, วี.เค. ; หึหึหึ ; ฮั่น, ย.-ก.; บาท อีเอ; ลิม, เจ; แป๊ก, ว.ค. ; พาร์ค, วาย.-เอช. สารสกัด Probiotic Lactobacillus sakei ProBio-65 ช่วยแก้ไขความรุนแรงของการอักเสบของผิวหนังที่คล้ายสะเก็ดเงินที่เกิดจาก Imiquimod ในแบบจำลองเมาส์ ด้านหน้า. ไมโครไบโอล. 2018, 9, 1021 [CrossRef]

10. คิม เอช; ค่อนข้าง IA; คิม เอช; คิม เอส; คิม, ท.; จาง เจ; ซอ, เจ; ลิม, เจ; พาร์ค, วาย.-เอช. การทดลองใช้โปรไบโอติกแลคโตบาซิลลัสซาเคอิโปรไบโอติกแบบปกปิดสองทาง-65 สำหรับการป้องกันโรคผิวหนังภูมิแพ้ในสุนัข เจ.ไมโครไบโอล. เทคโนโลยีชีวภาพ พ.ศ. 2558 25 พ.ศ. 2509–2512 [ครอสรีฟ]

11. ค่อนข้าง IA; ชอย, ส.-ข.; คำลี, ม.ร.ว. ; ฮาคีม, KR; ซาบีร์, JSM; ปาร์ค, ย.-ฮ.; ฮ.,ย.-ย. ผลการรักษาเสริมที่อาจเกิดขึ้นของ Lactobacillus plantarum Probio-88 Postbiotics ต่อ SARS-CoV-2 วัคซีน 2021, 9, 1067 [CrossRef] [PubMed]

12. Taghinezhad-S, S.; Mohseni, อาห์; Bermúdez-Humarán, LG; คาโซลาโร, วี.; คอร์เตส-เปเรซ, NG; คีย์วานี เอช.; Simal-Gandara, J. วัคซีนที่มีโปรไบโอติกอาจให้การป้องกันโรคทางเดินหายใจเฉียบพลันจากโควิด-19 ได้อย่างมีประสิทธิภาพ วัคซีน 2021, 9, 466 [CrossRef] [PubMed]

13. ค่อนข้าง IA; คิม, บี.ซี.; ลิว, L.-C.; ชา, ส.-ข.; ลี, JH; น้ำ, G.-J.; มายัมเดอร์ อาร์; ลิม, เจ; ลิม, ส.-ก.; ซอ, วาย.-เจ.; และอื่น ๆ การบริหารช่องปากของเซลล์ที่มีชีวิตและเซลล์ที่ตายแล้วของ Lactobacillus sakei ProBio65 โรคผิวหนังภูมิแพ้ที่บรรเทาในเด็กและวัยรุ่น: การศึกษาแบบสุ่ม ปกปิดสองทาง และควบคุมด้วยยาหลอก โปรไบโอติกต้านจุลชีพ โปรตีน 2021, 13, 315–326 [ครอสรีฟ] [PubMed]

14. บัจพาย, วีเค; ค่อนข้าง IA; พาร์ค, วาย.-เอช. Exo-Polysaccharide บริสุทธิ์บางส่วนจาก Lactobacillus sakei Probio 65 พร้อมสารต้านอนุมูลอิสระ -Glucosidase และศักยภาพในการยับยั้ง Tyrosinase เจ. ฟู้ดไบโอเคม. 2559, 40, 264–274. [ครอสรีฟ]

15. ค่อนข้าง IA; บัจพาย, วี.เค. ; ชิง LL; มายัมเดอร์ อาร์; น้ำ, G.-J.; อินดูกู, น.; ซิงห์ พี; มาร์, ส.; ฮัจราห์, นิวแฮมป์เชียร์; ซาบีร์, JSM; และอื่น ๆ ผลของผลิตภัณฑ์ที่ออกฤทธิ์ทางชีวภาพ SEL001 จาก Lactobacillus sakei Probio65 ต่อจุลินทรีย์ในลำไส้และผลการต่อต้านลำไส้ใหญ่อักเสบในแบบจำลองหนูเมาส์ลำไส้อักเสบที่เกิดจาก TNBS ซาอุดีอาระเบีย เจ. ไบโอล วิทย์ 2020, 27, 261–270. [ครอสรีฟ]

16. ซีลี เอนสกา, D.; Rzepkowska, A.; ราดาวสกา, อ.; Zieli ´nski, K. การคัดกรองคุณสมบัติโปรไบโอติกในหลอดทดลองของสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสที่แยกได้จากกะหล่ำปลีและแตงกวาหมักแบบดั้งเดิม สกุลเงิน ไมโครไบโอล. 2558, 70, 183–194. [ครอสรีฟ]

17. เบ้า, ย.; จาง วาย; จาง วาย; หลิว วาย; วัง ส.; ดง, เอ็กซ์; วัง ย.; Zhang, H. การคัดกรองคุณสมบัติโปรไบโอติกที่มีศักยภาพของ Lactobacillus fermentum ที่แยกได้จากผลิตภัณฑ์นมแบบดั้งเดิม การควบคุมอาหาร 2010, 21, 695–701. [ครอสรีฟ]

18. ซอ บีเจ; ค่อนข้าง IA; มาร์, วีเจอาร์; ชอย เอ่อ; พระจันทร์, ม.ร.ว. ; ลิม, JH; Park, YH การประเมินเชื้อ Leuconostoc mesenteroides YML003 ในฐานะโปรไบโอติกต่อต้านไวรัสไข้หวัดนกชนิดก่อโรคต่ำ (H9N2) ในไก่ เจ แอพเพิล ไมโครไบโอล. 2555, 113, 163–171. [ครอสรีฟ]

19. โบห์ลูลี เจ; นัมจู ฉัน; Borzoo-Isfahani, M.; ฮอจติ เกอมณี, MA; บาลูช เซฮี, ซี.; Moravejolahkami, AR ผลของโปรไบโอติกต่อความเครียดออกซิเดชันและสถานะการอักเสบในโรคไตโรคเบาหวาน: การทบทวนอย่างเป็นระบบและการวิเคราะห์เมตาดาต้าของการทดลองทางคลินิก เฮลิยอน 2021, 7, e05925. [ครอสรีฟ]

20. เลอ บาร์ซ, ม.; ดาเนียล, น.; วารินทร์, ทีวี; ไนมี เอส; Demers-Mathieu, V.; Pilon, G.; ออดี้ เจ; ลอริน, อี.; รอย ด.; อูร์ดาซี เอ็มซี ; และอื่น ๆ การคัดกรองแบคทีเรียหลายสายพันธุ์ด้วย Vivo ระบุ Lactobacillus rhamnosus Lb102 และ Bififidobacterium animalis ssp. แลคติก Bf141 เป็นโปรไบโอติกที่ปรับปรุงความผิดปกติของการเผาผลาญในรูปแบบเมาส์ของโรคอ้วน FASEB J. 2019, 33, 4921–4935 [ครอสรีฟ]

21. บะ, ท.; โยชิโอกะ, อี.; Itoh, T. ศักยภาพของ Lactobacillus gasseri ที่แยกได้จากอุจจาระของทารกในการผลิตแบคทีเรีย เล็ต แอป ไมโครไบโอล. 2534, 12, 228–231. [ครอสรีฟ]

22. เวอร์เดเนลลี, เอ็มซี; เกลฟีฟี่, เอฟ; ซิลวี่ เอส; Orpianesi, C.; Cecchini, C.; Cresci, A. คุณสมบัติโปรไบโอติกของ Lactobacillus rhamnosus และ Lactobacillus paracasei ที่แยกได้จากอุจจาระของมนุษย์ เออ เจ นัท 2552, 48, 355–363. [ครอสรีฟ] [PubMed]

23. อู๋ ร.; วัง, ล.; วังเจ; หลี่ เอช.; Menghe บี; อู๋ เจ; กู, ม.; Zhang, H. การแยกและการคัดเลือกโปรไบโอติกเบื้องต้นของแลคโตบาซิลลัสจาก Koumiss ในมองโกเลียใน J. ไมโครไบโอลพื้นฐาน. 2552, 49, 318–326. [ครอสรีฟ] [PubMed]

24. อเดโดคุน, EO; ค่อนข้าง IA; บัจพาย, วี.เค. ; ชอย, ค.-ฮ.; พาร์ค, วาย.-เอช. การแยกและศึกษาคุณลักษณะของแบคทีเรียกรดแลกติกจากอาหารหมักดองของไนจีเรียและฤทธิ์ต้านจุลชีพของพวกมัน เจเพียวแอพพลิ ไมโครไบโอล. 2014, 8, 3411–3420.

25. ค่อนข้าง IA; ชอย, ค.-ฮ.; บัจพาย, วี.เค. ; พาร์ค, วาย.-เอช. โหมดการออกฤทธิ์ต้านไวรัสของ Lactobacillus plantarum YML009 ต่อไวรัสไข้หวัดใหญ่ H1n1 บังกลาเทศ J. Pharmacol. 2558, 10, 475–482. [ครอสรีฟ]

26. บัจปาย, วีเค; ฮัน, J.-H.; ค่อนข้าง IA; ปาร์ค ซี; ลิม, เจ; แป๊ก, ว.ค. ; ลี เจ. เอส. ; ยุน, J.-I.; พาร์ค, วาย.-เอช. ลักษณะเฉพาะและศักยภาพในการต้านแบคทีเรียของแบคทีเรียกรดแลคติค Pediococcus pentosaceus 4I1 ที่แยกได้จากปลาน้ำจืด Zacco koreanus ด้านหน้า. ไมโครไบโอล. 2016, 7, 2037 [CrossRef]

27. อเดโดคุน, EO; ค่อนข้าง IA; บัจพาย, วี.เค. ; พาร์ค, วาย.-เอช. ประสิทธิภาพการควบคุมทางชีวภาพของ Lactobacillus fermentum YML014 ต่อราที่อาหารเน่าเสียโดยใช้แบบจำลองมะเขือเทศบด ด้านหน้า. วิทยาศาสตร์ชีวิต 2559, 9, 64–68. [ครอสรีฟ]

28. บัจพาย, วีเค; ค่อนข้าง IA; มายัมเดอร์ อาร์; Alshammari, FH; น้ำ, G.-J.; พาร์ค, วาย.-เอช. ลักษณะเฉพาะและโหมดการออกฤทธิ์ต้านแบคทีเรียของ Lactic Acid Bacterium Leuconostoc mesenteroides HJ69 จากกิมจิ เจ. ฟู้ดไบโอเคม. 2017, 41, e12290. [ครอสรีฟ]

29. บัจพาย, วีเค; จันทรา, V.; คิม, N.-H.; ไร่ ร.; มาร์, ป.; คิม, เค; แอรอน, อ.; คัง เซาท์แคโรไลนา ; มาเฮชวารี ดีเค; นา, ม.; และอื่น ๆ โปรไบโอติกจากผีที่มีสูตรผสม: แนวทางการรักษาแบบใหม่เพื่อต่อต้านไวรัสซิก้า ภัยคุกคามโลกที่กำลังเกิดขึ้นใหม่ คริ. รายได้เทคโนโลยีชีวภาพ 2018, 38, 438–454. [ครอสรีฟ]

30. ปารย์, อ.บ.; ค่อนข้าง IA; อัล-ซาดูน, เอ็มเค ; ฟานาร์ ฮามัด, อ.-ศ. ความสำคัญทางเภสัชกรรมของ Leuconostoc mesenteroides KS-TN11 ที่แยกได้จากปลานิล Oreochromis Niloticus ซาอุดีอาระเบีย จ. 2018, 26, 509–514. [ครอสรีฟ]

31. เกาะ ไวโอมิง; อุตตรา, อุตตร; อาหมัด ร.; ค่อนข้าง IA; พาร์ค, วาย.-เอช. การประเมินศักยภาพโปรไบโอติกและคุณสมบัติต้านน้ำตาลในเลือดสูงของสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสสายพันธุ์ใหม่ที่แยกได้จากน้ำเมล็ดคีเฟอร์ วิทย์อาหาร. เทคโนโลยีชีวภาพ 2018, 27, 1369–1376. [ครอสรีฟ] [PubMed]

32. กุลนาซ อ.; นาดีม เจ; ฮัน, J.-H.; ลิว, L.-C.; ดง เอสเจ ; ปาร์ค, ย.-ฮ.; ค่อนข้าง IA; Hor, YY แลคโตบาซิลลัส sps ในการลดความเสี่ยงของโรคเบาหวานในหนูทดลองที่ได้รับอาหารที่มีไขมันสูงโดยการปรับไมโครไบโอมในลำไส้และยับยั้งเอนไซม์ย่อยอาหารหลักที่เกี่ยวข้องกับโรคเบาหวาน ชีววิทยา 2021, 10, 348 [CrossRef] [PubMed]

33. คิม บีเจ; ฮง, JH; จอง, ยส; Jung, HK การประเมินเชื้อ Bacillus subtilis สองสายพันธุ์ที่แยกได้จากอาหารหมักของเกาหลีเป็นโปรไบโอติกต่อต้านอาการท้องผูกที่เกิดจาก Loperamide ในหนู J. สังคมเกาหลี แอป ไบโอล เคมี 2557, 57, 797–806. [ครอสรีฟ]

34. หยู ซี; Luo, Q.; เซียว, ล.; อาทิตย์, ย.; หลี่ อาร์; อาทิตย์ Z .; Li, X. ลักษณะการเน่าเสียของเบียร์ของเชื้อ Staphylococcus xylosus ที่เพิ่งแยกได้จากคราฟต์เบียร์และศักยภาพในการส่งผลต่อคุณภาพเบียร์ วิทย์อาหาร. นัท 2019, 7, 3950–3957. [ครอสรีฟ]

35. โอ้ NS; ควอน เอชเอส; ลี, ฮาวาย; จุง, JY; ลี, เจนวาย; ลี เคบี ; ชิน, วายเค; เบค เซาท์แคโรไลนา ; ปาร์ค, ม.ร.ว. ; คิม, ย.; และอื่น ๆ ผลการป้องกันของผลิตภัณฑ์ปฏิกิริยา Maillard หมักจากโปรตีนนมในสุขภาพหัวใจและหลอดเลือด เจ. นมวิทย์. 2557, 97, 3300–3313. [ครอสรีฟ]

36. บัจพาย, วีเค; อลัม เอ็มบี ; ฉวน เคที ; ควอน, เค-อาร์; จู, ม.-ก.; ชอย, เอช.-เจ.; ลี เจ. เอส. ; ยุน, J.-I.; มายัมเดอร์ อาร์; ค่อนข้าง IA; และอื่น ๆ ประสิทธิภาพการต้านอนุมูลอิสระและการควบคุม Nrf2-สื่อกลาง H2O-1 การแสดงออกโดย (บวก )-Lariciresinol, Lignan ที่แยกได้จาก Rubia Philippinensis ผ่านการเปิดใช้งาน P38 วิทย์ ตัวแทน 2017, 7, srep46035 [ครอสรีฟ]

37. ยูซุฟ เอส.; อะหมัด, อ.; ขัน ​​น.; แมนซูร์, เอ็น.; Khan, LA ผลของไดอัลลิลไดซัลไฟด์ต่อระบบเอนไซม์ต้านอนุมูลอิสระในสายพันธุ์ Candida สามารถ. เจ.ไมโครไบโอล. 2553, 56, 816–821. [ครอสรีฟ]

38. ชูสโควิซ, เจ.; คอส, บี; โกเรตา เจ; Matoši´c, S. บทบาทของแบคทีเรียกรดแลคติคและบิฟิโดแบคทีเรียในผลสังเคราะห์ เทคโนโลยีการอาหาร. เทคโนโลยีชีวภาพ 2544, 39, 227–235.

39. จิน แอลซี; โฮ, วาย; อับดุลลาห์ เอ็น; Jalaludin, S. ความทนทานต่อกรดและน้ำดีของแลคโตบาซิลลัสที่แยกได้จากลำไส้ไก่ เล็ต แอป ไมโครไบโอล. 2541, 27, 183–185. [ครอสรีฟ]

40. กัว CF; จาง เอส; หยวน, YH; ยู TL; Li, JY การเปรียบเทียบแลคโตบาซิลลัสที่แยกได้จาก Chinese Suan-Tsai และ Koumiss สำหรับคุณสมบัติของโปรไบโอติกและหน้าที่ เจ. ฟังก์ชัน. อาหาร 2015, 12, 294–302. [ครอสรีฟ]

41. โชกรียาซดาน ป.; Kalavathy, ร.; เซียว, ซีซี; อลิธีน, NB; เหลียง เจบี ; จาโรมี MF; Ho, YW การแยกและลักษณะของสายพันธุ์แลคโตบาซิลลัสเป็นโปรไบโอติกที่มีศักยภาพสำหรับไก่ Pertanika J. Trop. เกษตร. วิทย์ 2557, 37, 141–157.

42. อาร์ไจรี, เอเอ; ซูมโปปูลู, G.; คาราทัส, KAG; ซาคาลิดู, อี.; นีชาส, GJE; Panagou, EZ ; Tassou, CC การคัดเลือกแบคทีเรียกรดแลคติคโปรไบโอติกที่มีศักยภาพจากมะกอกหมักโดยการทดสอบในหลอดทดลอง อาหารไมโครไบโอล. 2556, 33, 282–291. [ครอสรีฟ] [PubMed]

43. เลอ โมล VL; แอมเซลเลม อาร์; เซอร์วิน อัล ; โคโคเนียร์ MH แลคโตบาซิลลัส แอซิโดฟิลัส (สายพันธุ์ LB) จากเชื้อจุลินทรีย์ในระบบทางเดินอาหารของมนุษย์ที่อาศัยอยู่ในผู้ใหญ่ ออกแรงต่อต้านความเสียหายจากขอบแปรงที่ส่งเสริมโดยเชื้อ Escherichia coli ในโรคอุจจาระร่วงในเซลล์ที่คล้ายเอนเทอโรไซต์ของมนุษย์ กูท 2002, 50, 803–811. [ครอสรีฟ] [PubMed]

【สำหรับข้อมูลเพิ่มเติม: david.deng@wecistanche.com / WhatApp:86 13632399501】