ส่วนที่ 2 ผลของสารต้านอนุมูลอิสระและสารต้านการแข็งตัวของเลือดของ Phenylpropanoid Glycosides ที่แยกได้จาก Broomrapes (Orobanche Caryophyllacea, Phelipanche Arenaria และ P. Ramosa)
Mar 06, 2022
สำหรับข้อมูลเพิ่มเติมกรุณาติดต่อ:Joanna.jia@wecistanche.com
Cistanche deserticola มีเอฟเฟกต์มากมาย คลิกที่นี่เพื่อทราบข้อมูลเพิ่มเติม
3. ผลลัพธ์และการอภิปราย
สิบคนก่อนหน้านี้แยกจากเราฟีนิลโพรพานอยด์ไกลโคไซด์[8] ซึ่งรวมถึง 2′-O-acetylacteoside, 2′-O-acetylpoliumoside, 3-O-เมทิลโพเดียมไซด์,แอคทีโอไซด์, crenatoside, pheliposide, poliumoside, tubuloside A และ wiedemannioside D ร่วมกับสารสกัด broomrape สามชนิด (Orobanche Caryophyllaceae (OC), Phelipanche are naria (PA) และ P. ramosa (PR)) ได้รับการศึกษาเพื่อบรรเทาการเกิดออกซิเดชัน ความเครียดและคุณสมบัติต้านการแข็งตัวของเลือดในระบบพลาสมาของมนุษย์ โครงสร้างทางเคมีของฟีนิลโพรพานอยด์การทดสอบแสดงไว้ในรูปที่ 1 และอย่างที่เห็น พวกมันทั้งหมดถูกสร้างขึ้นตามรูปแบบที่คล้ายกัน โดยมีหน่วยย่อยที่เหมือนกัน/คล้ายกัน: ไฮดรอกซีไทโรซอล โมโนแซ็กคาไรด์ (กลูโคส แรมโนส และ/หรือไซโลส) และไฮดรอกซีซินนามิก กรด. สารประกอบ PPG ที่ตรวจสอบส่วนใหญ่จะถูกแทนที่ด้วยกรดคาเฟอีน แต่อาจถูกแทนที่ด้วยกรดคูมาริกหรือกรดเฟรูลิก นอกเหนือจากสารประกอบ PPG แต่ละตัวแล้ว สารสกัดบรูมเรปสามชนิด ได้แก่ OC, PA และ PR ซึ่งเป็นส่วนผสมของ PPG หลายตัวและทำหน้าที่เป็นสารตั้งต้นสำหรับการแยกสารประกอบ รวมอยู่ในการศึกษาทางชีววิทยาด้วย อีกเหตุผลหนึ่งในการเลือกสามสายพันธุ์ที่แตกต่างกันคือความแตกต่างอย่างมากในโปรไฟล์พฤกษเคมีในหมู่พวกเขา ดังที่แสดงในรูปที่ 2 การเปรียบเทียบรายละเอียดเพิ่มเติมของสารสกัด OC, PA และ PR รวมถึงข้อมูลเชิงปริมาณ ถูกนำเสนอในตาราง 1.แอคทีโอไซด์เป็นส่วนประกอบหลักของสารสกัด O. Caryophyllaceae (690 มก./กรัม), teniposide และ arena inside โดดเด่นใน P. Arenaria (รวมกัน 550 มก./g) ในขณะที่ poliumoside และอนุพันธ์ของ acetylated เป็นสารที่สำคัญที่สุดใน P. ramosa สารสกัด (รวมกัน 640 มก./กรัม). สารสกัดที่ตรวจสอบยังแตกต่างกันในเนื้อหาโดยรวมของฟีนิลโพรพานอยด์ โดยพบปริมาณสูงสุดใน OC (810 มก./กรัม) ค่า PR ต่ำกว่าเล็กน้อย (795 มก./กรัม) และ PA ต่ำกว่า (685 มก./กรัม) นอกจากนี้ ยังควรสังเกตด้วยว่าการมีอยู่ของ PPG ร่วมกับคาเฟอีนอื่นที่ไม่ใช่ caffeoyl moieties เช่น coumaroyl หรือ feruloyl ถูกตรวจพบในสารสกัด P. ramosa เท่านั้น โดยที่สารประกอบเหล่านี้ประกอบด้วยประมาณหนึ่งในหกของ PPG ทั้งหมด (ประมาณ 120 มก./ ช) (ตารางที่ 1). การศึกษาก่อนหน้านี้เกี่ยวกับฤทธิ์ต้านการเกิดอนุมูลอิสระของฟีนิลโพรพานอยด์ไกลโคไซด์โดยไฮล์มันน์และคณะ [19] และ Jedrejek et al. [8] รวมถึง PPG ที่แตกต่างกันประมาณ 30 รายการเช่นแอคทีโอไซด์ไอโซแอคทีโอไซด์และครีนาโตไซด์ได้เปิดเผยความสัมพันธ์ที่แข็งแกร่งกับโครงสร้างของเอซิลมอยอิตี (กรดฟีนอลิกและไทโรซอล) โดยทั่วไป การดัดแปลงหรือการแทนที่ของ catechol moiety ของหน่วย acyl ส่งผลให้เกิดการลดลงอย่างมีนัยสำคัญในการออกฤทธิ์ของการกำจัดที่ต้านกับชนิดพันธุ์ออกซิเจนที่เกิดปฏิกิริยา (ROS) และอนุมูล DPPH ในการศึกษาปัจจุบัน ได้ตรวจสอบศักยภาพในการต้านสารอนุมูลอิสระในหลอดทดลองของสารสกัดบรูมเรปสามชนิด (OC, PA และ PR) ด้วยการทดสอบ ABTS และ DPPH และเปรียบเทียบผลลัพธ์ทั้งสองอย่างกับกิจกรรมของแต่ละบุคคลฟีนิลโพรพานอยด์ส่วนประกอบที่วัดในการศึกษาก่อนหน้านี้ของเรา [8] ผลลัพธ์ถูกแสดงเป็นค่า Trolox Equivalents (TE) และ IC50 (ตารางที่ 2) โดยทั่วไป สารสกัดทั้งสามเป็นตัวเก็บกวาดที่ดีของทั้งอนุมูล ABTS และ DPPH แต่ยังพบความแตกต่างในกลุ่มตัวอย่างที่ทดสอบ (TE โดยประมาณอยู่ในช่วง 0.5–0.7; 1.0 คือ เทียบเท่ากับ Trolox) ฤทธิ์กำจัดสารต้านอนุมูลอิสระของตัวอย่างอยู่ในลำดับต่อไปนี้: Trolox > OC > PA > PR สารสกัดของ Orobanche Caryophyllaceae (IC50=155–275 µg/mL) มีฤทธิ์มากกว่าสารสกัด Phelipanche ramosa มากกว่า 20 เปอร์เซ็นต์ (IC50=200–320 µg/mL) กิจกรรมการไล่ระดับอนุมูลอิสระสูงสุดที่รายงานของสารสกัด OC สามารถอธิบายได้ด้วยเนื้อหา PPG สูงสุดในตัวอย่างนี้ เช่นเดียวกับอินพุตของแอคทีโอไซด์ส่วนประกอบที่โดดเด่นของมัน ซึ่งจากการวิจัยก่อนหน้านี้ [8,19] เป็นหนึ่งในสารกำจัดอนุมูลอิสระที่แรงที่สุดในบรรดาสารเมแทบอไลต์จากกลุ่มนี้ (TEDPPH=0.87; [4]) อย่างไรก็ตาม เมื่อพิจารณาถึงความสัมพันธ์ซึ่งกันและกันของฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและเนื้อหาของฟีนิลโพรพานอยด์ในการสกัด OC, PA และ PR ไม่พบความสัมพันธ์ง่ายๆ ระหว่างสองปัจจัยนี้ (r < 0.5)="" ซึ่งบ่งชี้ถึงอินพุตที่มีนัยสำคัญของโปรไฟล์เชิงคุณภาพ="">
สารสกัด P. ramosa ซึ่งแม้จะมี PPG ในระดับสูง ({{0}}.8 g/g) ก็มีลักษณะเฉพาะด้วยการออกฤทธิ์ทางชีวภาพที่ต่ำที่สุดในกลุ่มตัวอย่างที่ทดสอบ (TE ~ 0.5) . สารสกัดจาก PR ตามที่กล่าวไว้ข้างต้น เป็นเพียงตัวอย่างเดียวที่มีฟีนิลโพรพานอยด์ที่มีกรดคูมาริกหรือกรดเฟรูลิก ซึ่งเป็นสารที่ไม่มีมอยอิตี B-ring catechol ซึ่งได้รับรายงานว่ามีศักยภาพในการต่อต้านอนุมูลอิสระลดลง สารประกอบ PPG สี่ชนิดที่มีกรดคาเฟอีนดัดแปลง ซึ่งรวมถึง 3-O-เมทิลโพลิยูโมไซด์, ราโมไซด์ A และ wiedemannioside D ที่ทดสอบโดยเราก่อนหน้านี้มีค่า TEDPPH ประมาณ 0.3 [8] ดังนั้น ผลลัพธ์ในปัจจุบันจึงเป็นไปตามและยืนยันผลการทดลองในหลอดทดลองต้านสารอนุมูลอิสระครั้งก่อนเกี่ยวกับฟีนิลโพรพานอยด์ ในฐานะที่เป็นเฉินและคณะ [20] อธิบายไว้ มันเกี่ยวข้องกับความสามารถในการให้ H หรือการคงตัวของเรดิคัลที่มากขึ้นโดยหมู่ฟังก์ชันต่างๆ ของของผสมของสารประกอบ มีการระบุองค์ประกอบโครงสร้างหลายอย่างเป็นการเสริมฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระโดยตรงของโพลีฟีนอล โดยเฉพาะอย่างยิ่งองค์ประกอบที่เกี่ยวข้องกับจำนวนและตำแหน่งของกลุ่มไฮดรอกซิล เป็นที่เชื่อกันว่ากิจกรรมการกำจัดอนุมูลอิสระเพิ่มขึ้นตามจำนวนกลุ่ม –OH ที่เพิ่มขึ้น อย่างไรก็ตาม ตำแหน่งของกลุ่มเหล่านี้ ในโมเลกุล มีผลกระทบมากขึ้นต่อกิจกรรมที่ออกแรง สารประกอบที่มีศักยภาพค่อนข้างคงที่คือสารประกอบที่มีมอยอิตีไดไฮดรอกซี 3,4-มอยอิตีในโครงสร้าง เช่นเดียวกับสารประกอบที่มีหมู่ไฮดรอกซิลมากกว่าสองหมู่ [21] โครงสร้างทางเคมีของสารต้านอนุมูลอิสระช่วยให้เข้าใจกลไกการเกิดปฏิกิริยาต้านอนุมูลอิสระ โลเปซ-มุนเกียและคณะ [22] ตามการคำนวณทฤษฎีฟังก์ชันความหนาแน่น (DFT) ระบุว่ากลไกการต้านอนุมูลอิสระของ PPGs ดำเนินการผ่านการถ่ายโอนอิเล็กตรอนเดี่ยว (SPLET) การสูญเสียโปรตอนตามลำดับ อย่างไรก็ตาม Li et al. [23] ความพยายามที่จะสำรวจกลไกของสารต้านอนุมูลอิสระฟีนอลฟีนิลโพรพานอยด์ สรุปว่า PPGs (แอคทีโอไซด์, ฟอร์ซิโธไซด์บีและโปลิวโมไซด์) อาจเกี่ยวข้องกับหลายวิถีทางในการออกแรงต้านการออกฤทธิ์ เพิ่มบทบาทของน้ำตาลตกค้าง การศึกษาพบว่าสารต้านอนุมูลอิสระจากพืชเป็นตัวปรับการแข็งตัวของเลือดในโรคหลอดเลือดหัวใจที่มีประสิทธิภาพ [24–26] พืชหลายชนิดที่ใช้ในยาแผนโบราณมี PPGs ในระดับที่มีนัยสำคัญ [27,28] นอกจากนี้ PPG ยังเป็นที่รู้กันว่ามีความหลากหลายทางชีวภาพ
กิจกรรมต่างๆ รวมทั้งคุณสมบัติต้านการอักเสบ ต้านไต และต้านตับ [29–33] ในการศึกษาล่าสุดของพวกเขา Jedrejek et al. [8] อธิบายการแยก PPGs จากไม้กวาดไม้กวาดของโปแลนด์สามตัว และประเมินฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของพวกมันโดยการทดสอบ DPPH จากข้อมูลดังกล่าว การศึกษาในปัจจุบันได้ประเมินว่า PPG ที่เลือกสิบชนิดที่แยกได้จากพืชเหล่านี้สามารถลดความเครียดจากปฏิกิริยาออกซิเดชันในพลาสมาของมนุษย์ที่บำบัดด้วยสารออกซิแดนท์ทางชีวภาพที่เข้มข้นหรือไม่ เช่น ตัวให้อนุมูลไฮดรอกซิล H2O2/Fe และปรับคุณสมบัติการแข็งตัวของพลาสมาในหลอดทดลอง คุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระของ ten
PPG ที่แยกได้ถูกกำหนดหาตามพารามิเตอร์ที่เลือกไว้ของความเครียดออกซิเดชัน: ระดับ TBARS เป็นตัวทำเครื่องหมายของลิพิด เปอร์ออกซิเดชัน ร่วมกับระดับกลุ่มคาร์บอนิลและกลุ่มไทออล เป็นตัวทำเครื่องหมายของความเสียหายของโปรตีนออกซิเดชัน ทั้งระดับลิพิดเปอร์ออกซิเดชันในพลาสมาและระดับโปรตีนคาร์โบนิเลชันในพลาสมาที่เกิดจาก H2O2/Fe ลดลงอย่างมีนัยสำคัญเมื่อมีสารประกอบที่ทดสอบแล้วแปดชนิด กล่าวคือ acteoside, crenatoside, 2′ -O-acety lacteoside, pheliposide, arena inside, tubuloside A, poliumoside และ 3- O-methylpolimuoside ที่ความเข้มข้นที่ทดสอบทั้งหมด (1, 5 และ 50 µg/ mL); อย่างไรก็ตาม ไม่พบผลกระทบใด ๆ สำหรับสารประกอบที่ทดสอบสองชนิด กล่าวคือ 2′ -O-อะซีติลโพลิโอโมไซด์และไวเดมานนิโอไซด์ D หรือสารสกัดที่ทดสอบใดๆ ที่ความเข้มข้นใดๆ (1, 5 และ 50 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร) นอกจากนี้ ไม่พบสารประกอบที่ทดสอบหรือสารสกัดที่ผ่านการทดสอบใดๆ ที่จะปกป้องพลาสมาจากการออกซิเดชันของหมู่ไทออลที่เหนี่ยวนำโดย H2O2/Fe ในโปรตีน (รูปที่ 3-5) อย่างไรก็ตาม สารสกัดที่ผ่านการทดสอบอาจเป็นแหล่งที่มาของสารประกอบที่มีคุณสมบัติทางชีวภาพต่างๆ เป็นครั้งแรกที่ผลการศึกษาครั้งนี้ระบุว่า PPG ที่ทดสอบแล้ว 8 ชนิดแสดงให้เห็นถึงศักยภาพในการต้านอนุมูลอิสระในพลาสมาของมนุษย์เมื่อมีออกซิเจนชนิดปฏิกิริยาจากภายนอกโดยการยับยั้งลิพิดเปอร์ออกซิเดชันและโปรตีนคาร์โบนิเลชันในพลาสมาที่บำบัดด้วย H2O2/Fe นอกจากนี้ 2′ -O-acetylpoliumoside และ wiedemannioside D ไม่มีผลกระทบดังกล่าว โดยทั่วไป การค้นพบของเราสอดคล้องกับการทดลอง PPG ในหลอดทดลองครั้งก่อน ไฮล์มันน์และคณะ [19] และ Jedrejek et al. [8] รายงานความสัมพันธ์ระหว่างโครงสร้างทางเคมีของ PPG กับกิจกรรมของ PPG คุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระของ PPGs ดูเหมือนจะเกี่ยวข้องกับโครงสร้างของ acyl moieties เป็นหลัก กล่าวคือ กรดฟีนอลิกและฟีนิลโพรพานอยด์รวมถึงการมีอยู่และ/หรือการดัดแปลงของ catechol moiety ตัวอย่างเช่น พบว่า wiedemannioside D สูญเสียศักยภาพในการต้านอนุมูลอิสระต่อพลาสมาที่บำบัดด้วย H2O2 / Fe หลังจากการแทนที่ของ caffeoyl moiety ด้วย feruloyl moiety การเปลี่ยนแปลงในกระบวนการจับตัวเป็นก้อนมักเกิดจากความเครียดจากปฏิกิริยาออกซิเดชัน การเปลี่ยนแปลงเหล่านี้สามารถปรับเปลี่ยนการทำงานของระบบหัวใจและหลอดเลือดและนำไปสู่การพัฒนาของโรคหัวใจและหลอดเลือด [1] จากสารประกอบจากพืช 10 ชนิดและสารสกัดจากพืช 3 ชนิดที่ทดสอบในการศึกษานี้ ได้แก่ ทูบูโลไซด์ โพลิอุโมไซด์ และ 3-โอ-เมทิลโพลิอูโมไซด์ และสารสกัดที่ผ่านการทดสอบทั้งหมดแสดงให้เห็นว่าสามารถยืดเวลาทรอมบินได้อย่างมีนัยสำคัญที่ความเข้มข้นที่ทดสอบทั้งหมด กล่าวคือ 1, 5 และ 50 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร (รูปที่ 6B) อย่างไรก็ตาม ไม่มีสารสกัดเหล่านี้ หรือสารประกอบที่ทดสอบใดๆ ที่เปลี่ยนแปลง PT หรือ APTT (รูปที่ 6A และ C) ตารางที่ 3 เปรียบเทียบผลของ PPG (5 ไมโครกรัม/มิลลิลิตร) ต่อไบโอมาร์คเกอร์ของความเครียดออกซิเดชันในพลาสมาที่บำบัดด้วย H2O2/Fe และอิทธิพลของพวกมันต่อการแข็งตัวของเลือด PPG ที่ทดสอบแล้วแปดรายการแสดงให้เห็นถึงศักยภาพในการต้านอนุมูลอิสระในพลาสมาของมนุษย์ที่บำบัดเท่านั้น อย่างไรก็ตาม พบว่า PPG ที่ทดสอบแล้ว 3 ชนิดมีคุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระและมีศักยภาพในการต้านการแข็งตัวของเลือด ที่น่าสนใจ ผลลัพธ์ของการทดสอบ DPPH นั้นไม่ตรงกับที่ได้จากแบบจำลองทางชีววิทยาโดยใช้พลาสมาของมนุษย์ที่บำบัดด้วย H2O2/Fe: ศักยภาพในการต้านอนุมูลอิสระของสารสกัดที่ทดสอบอาจถูกปิดกั้นโดยสารประกอบบางชนิดที่มีอยู่ในพลาสมา โดยสรุป การค้นพบของเราในปัจจุบันได้ทำให้เกิดความกระจ่างใหม่เกี่ยวกับศักยภาพในการต้านอนุมูลอิสระและคุณสมบัติในการต้านการแข็งตัวของเลือดของ PPGs ปรากฏว่าโครงสร้างของ PPG โดยเฉพาะอย่างยิ่งการมีอยู่ของ acyl และ catechol moieties นั้นส่วนใหญ่เกี่ยวข้องกับคุณสมบัติของสารต้านอนุมูลอิสระและสารต้านการแข็งตัวของเลือด PPG ที่เลือกอาจมีศักยภาพในการรักษาโรคหัวใจและหลอดเลือดที่เกี่ยวข้องกับความเครียดจากปฏิกิริยาออกซิเดชัน อย่างไรก็ตาม จำเป็นต้องมีการทดลองเพิ่มเติมเพื่อกำหนดความเข้มข้นของสารประกอบเหล่านี้ที่จำเป็นสำหรับแบบจำลองในร่างกาย
แถลงการณ์ความขัดแย้งทางผลประโยชน์
ผู้เขียนประกาศว่าพวกเขาไม่มีการแข่งขันทางการเงินที่เป็นที่รู้จัก
ความสนใจหรือความสัมพันธ์ส่วนตัวที่อาจดูเหมือนมีอิทธิพล
งานที่รายงานในบทความนี้
อ้างอิง
[1] A. Daiber, S. Chlopicki, ทบทวนเภสัชวิทยาของความเครียดออกซิเดชันและความผิดปกติของบุผนังหลอดเลือดในโรคหัวใจและหลอดเลือด: หลักฐานสำหรับการบำบัดด้วยรีดอกซ์, Free Radic ไบโอล. เมดิ. 157 (2020) 15–37. [2] เจ.-เจ. Sauvain, A. Setyan, P. Wild, P. Tacchini, G. Lagger, F. Storti, S. Deslarzes, MJ Guillemin, M. Rossi, M. Riediker, Biomarkers ของความเครียดออกซิเดชันและความสัมพันธ์กับความสามารถในการลดปัสสาวะใน พนักงานซ่อมบำรุงรถบัส จ.ปัตตานี เมดิ. ท็อกซิคอล 6 (2011) 18–23. [3] P. Nowak, B. Olas, B. Wachowicz, ความเครียดจากการออกซิเดชันและการแข็งตัวของเลือด, โพสต์ ไบโอเคมี. 56 (2010) 239–247. [4] M. Martinez-Huelamo, J. Rodriguez-Morato, A. Boronat, R. de la Torre, การปรับ Nrf2 โดยน้ำมันมะกอกและไวน์โพลีฟีนอลและการป้องกันระบบประสาท, สารต้านอนุมูลอิสระ 6 (2017) 73. [5] S. Amor , P. Chalons, V. Aires, D. Delmas, Polyphenol สกัดจากไวน์แดงและองุ่น: ผลกระทบที่อาจเกิดขึ้นกับโรคมะเร็ง, โรค 6 (2018) 1–12. [6] Z. Li, H. Lin, L. Gu, J. Gao, CM Tzeng, Herba Cistanche (Rou Cong-Rong): หนึ่งในของขวัญทางเภสัชกรรมที่ดีที่สุดของการแพทย์แผนจีน, Front. ฟา. 7 (2016) 41–49. [7] Y. Jiang, P.-F. Tu, ทบทวน: การวิเคราะห์องค์ประกอบทางเคมีในสายพันธุ์ Cistanche, J. Chromatogr 1216 (2552) 2513-2522 [8] D. Jedrejek, S. Pawelec, R. Piwowarczyk, L. Precio, A. Stochmal, การระบุและการเกิดขึ้นของ phenylethanoid และ iridoid glycosides ในไม้กวาดโปแลนด์หกชนิด (Orobanche spp. และ Phelipanche spp., Orobanchaceae), Phytochemistry 170 ( 2020), 112189. [9] B. Kontek, D. Jedrejek, W. Oleszek, B. Olas, ฤทธิ์ต้านสารอนุมูลอิสระและสารต้านอนุมูลอิสระในหลอดทดลองของสารสกัดที่ได้จากฮ็อพที่อุดมไปด้วยกรดขมและแซนโทฮูมอล, Ind. Crops Prod. 161 (2021) 1–9. [10] W. Brand-Williams, ME Cuvelier, C. Berset, การใช้วิธีอนุมูลอิสระเพื่อประเมินฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ, Lebensm. วิส เทคโนโลยี 28 (1995) 25–30. [11] JR Whitaker, PE Granum, วิธีการที่แน่นอนสำหรับการกำหนดโปรตีนโดยพิจารณาจากความแตกต่างในการดูดกลืนแสงที่ 235 และ 280 นาโนเมตร, ทางทวารหนัก ไบโอเคมี. 109 (1980) 156–159. [12] B. Wachowicz, Adenine nucleotides ใน thrombocytes ของนก, Cell Biochem ฟังก์ชัน 2 (1984) 167–170. [13] G. Bartosz, Druga twarz tlenu, Warsz. PWN 1 (2008) 7. [14] RL Levine, D. Garland, CN Oliver, A. Amici, I. Climent, AG Lenz, BW Ahu, S. Shaltier, ER Stadtman, การหาปริมาณคาร์บอนิลในโปรตีนดัดแปลงออกซิเดชัน, วิธีการ เอนไซม์. 186 (1990) 464–478. [15] DM Joel, J. Gressel, LJ (Eds.), Musselman, Parasitic Orobanchaceae: Parasitic Mechanisms and Control Strategies, Springer, Heidelberg, Germany, 2013, หน้า 1–10 [16] Y. Ando, M. Steiner, Sulphydryl และกลุ่ม disulfide ของเยื่อหุ้มเกล็ดเลือด: การกำหนดกลุ่มซัลไฟด์, Biochim ชีวฟิสิกส์ แอคตา 311 (1973) 26–37. [17] Y. Ando, M. Steiner, Sulphydryl และกลุ่มไดซัลไฟด์ของเยื่อหุ้มเกล็ดเลือด: การกำหนดกลุ่มซัลไฟริล, Biochim ชีวฟิสิกส์ แอคตา 311 (1973) 38–44. [18] J. Malinowska, J. Kołodziejczyk-Czepas, M. Moniuszko-Szajwaj, I. Kowalska, W. Oleszek, A. Stochmal, B. Olas, เศษส่วนฟีนอลิกจาก Trifolium pallidum และ Trifolium scabrum ส่วนทางอากาศในพลาสมาของมนุษย์ป้องกัน การเปลี่ยนแปลงที่เกิดจาก hyperhomocysteinemia, Food Chem ท็อกซิคอล 50 (2012) 4023–4027. [19] J. Heilmann, I. Calis, H. Kirmizibekmez, W. Schuhly, S. Harput, O. Stiher, กิจกรรมคนเก็บขยะที่รุนแรงของ phenylpropanoid glycosides ใน FMLP กระตุ้น polymorphonuclear leukocytes: ความสัมพันธ์ระหว่างโครงสร้างกับกิจกรรม, Planta Med 66 (2000) 746–748. [20] H. Chen, Y. Zhou, Y. Shao, F. Chen, กรดฟีนอลิกอิสระในน้ำส้มสายชูหมักจากมณฑลซานซี: การเปลี่ยนแปลงระหว่างอายุและกิจกรรมต้านอนุมูลอิสระเสริมฤทธิ์กัน, Int. J. ข้อเสนออาหาร 19 (2015) 1183–1193 [21] CA Rice-Evans, NJ Miller, G. Pagana, ความสัมพันธ์ระหว่างโครงสร้างและสารต้านอนุมูลอิสระของฟลาโวนอยด์และกรดฟีนอลิก, Free Radic ไบโอล. เมดิ. 20 (1996) 933–956. [22] A. Lopez-Munguía, ´ Y. Hernandez-Romero, ´ J. Pedraza-Chaverri, A. Miranda Molina, I. Regla, A. Martínez, E. Castillo, Phenylpropanoid glycoside analogs: การสังเคราะห์ด้วยเอนไซม์, ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและ การศึกษาเชิงทฤษฎีเกี่ยวกับกลไกการกวาดล้างอนุมูลอิสระ PloS One 6 (2011) 20115. [23] X. Li, Y. Xie, K. Li, A. Wu, H. Xie, Q. Guo, P. Xue, Y. Maleshibek, W. Zhao, J. Guo, D. Chen, Antioxidation และ cytoprotection ของ acteoside และอนุพันธ์: การเปรียบเทียบและเคมีเชิงกลไก, Molecules 23 (2018) 498. [24] SE Kulling, HM Rawel, Chokeberry (Aronia melanocarpa) – การทบทวนองค์ประกอบลักษณะเฉพาะและผลกระทบต่อสุขภาพที่อาจเกิดขึ้น Planta Med 74 (2008) 1625–1634. [25] BJ Mc Even, อิทธิพลของอาหารและสารอาหารต่อการทำงานของเกล็ดเลือด, เซมิน. ก้อน. เฮโมสต์ 40 (2008) 214–226. [26] B. Olas, ความหลากหลายของผลเบอร์รี่ที่มีต่อเกล็ดเลือดและบทบาทของเบอร์รี่ฟีนอลในโรคหลอดเลือดหัวใจ, เกล็ดเลือด 5 (2016) 1–10. [27] UB Ismailoglu, I. Saracoglu, US Harput, I. Sahin-Eredemli, ผลของ phenylpropanoid และ iridoid glycosides ต่อการด้อยค่าที่เกิดจากอนุมูลอิสระของการผ่อนคลายที่ขึ้นกับ endothelium ในวงแหวนหลอดเลือดของหนู, J. Ethnopharmacol 79 (2002) 193–197. [28] ZF Bai, Y. Liu, XQ Wang, การตรวจสอบพืชสมุนไพรชาติพันธุ์ Orobanche, Cistanche และ Boschniakia, Zhongguo Zhong Yao Zhi 93 (2014) 4548–4552 [29] K. Hayashi, T. Nagamatsu, M. Ito, H. Yagita, Y. Suzuki, Acteoside ซึ่งเป็นส่วนประกอบของ Stachys sieboldii MIQ อาจเป็นสารต้านไตที่มีแนวโน้ม (3): ผลของ aceteoside ต่อการแสดงออกในเซลล์ โมเลกุลการยึดเกาะ-1 ในไตไตอักเสบจากโกลเมอรูไลในหนูทดลองและเซลล์บุผนังหลอดเลือดที่เพาะเลี้ยง, Jpn. เจ. ฟาร์มาคอล. 70 (1996) 157–168. [30] Q. Xiong, K. Hase, Y. Tezuka, T. Tani, T. Namba, S. Kadota, กิจกรรมป้องกันตับของฟีนิลโพรพานอยด์จากCistanche deserticola, แพลนตา เมด. 64 (1998) 120–125. [31] WF Chiou, LC Lin, CF Chen, Acteoside ปกป้องเซลล์บุผนังหลอดเลือดจากความเครียดออกซิเดชันที่เกิดจากอนุมูลอิสระ J. Pharm เภสัช. 56 (2004) 743–748. [32] S. Sahpaz, N. Garbacki, M. Tits, F. Bailleul, การแยกและฤทธิ์ทางเภสัชวิทยาของ phenylpropanoid esters จาก Marrubium vulgare, J. Ethnopharmacol 79 (2002) 389–392. [33] L. Lie-Chwen, W. Yea-Hwey, H. Yu-Chang, Ch Shiou, L. Kuo-Tong, Ch Yueh-Ching, W. Wen-Yen, S. Yoh-Chiang, ผลการยับยั้ง ของ phenylpropanoid glycosides และ iridoid glucosides ต่อการผลิตอนุมูลอิสระและการแสดงออกของอินทีกริน 2 ตัวในเม็ดเลือดขาวของมนุษย์ J. Pharm ฟา. 58 (2549) 129–135.
