การทำโปรไฟล์เมตาโบไลต์และฤทธิ์ต้านความชราของข้าวโคจิที่หมักด้วยเชื้อรา Aspergillus Oryzae และ Aspergillus Cristatus: การศึกษาเปรียบเทียบ Ⅱ

May 09, 2023

3. การอภิปราย

ส่วนต่างๆ ของข้าว เช่น แกลบ รำ เอ็มบริโอ และเอนโดสเปิร์ม จากผิวถึงด้านใน มีองค์ประกอบทางเคมีต่างกัน (26) โดยเฉพาะในรำข้าวมีส่วนประกอบต่างๆกรดฟีนอลและฟลาโวนอยด์ซึ่งเป็นที่รู้จักในการจัดแสดงฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระนอกจากนี้ ผนังเซลล์ของข้าวยังประกอบด้วยโครงสร้างอะราบิน็อกซีแลนซึ่งประกอบด้วยไซโลส อะราบิโนส กรดเฟรูลิก และกรดเฟรูลิก (27] โดยทั่วไปแล้วผนังเซลล์ของข้าวจะเจาะทะลุได้ยาก และโคจิของข้าวมีข้อได้เปรียบในการซึมผ่านได้ง่ายของ ผนังเซลล์ข้าวโดยเอ็นไซม์ต่างๆ เช่น โปรตีเอสและกลูโคซิเดสจากหัวเชื้อจุลินทรีย์ (24. ดังนั้นข้าวโคอิจึงแสดงระดับที่สูงขึ้นของกิจกรรมการยับยั้งไทโรซิเนสและกิจกรรมต้านอนุมูลอิสระมากกว่าวัตถุดิบเพราะมีสารประกอบที่อุดมด้วยคุณค่า (28.

Cistanche Benefits in depression

คลิกที่นี่เพื่อรับข้อมูลเพิ่มเติมเกี่ยวกับกิจกรรมต้านอนุมูลอิสระของ Cistanche

เราปฏิบัติตามแนวทางเมแทบอโลมิกส์ของข้าวโคจิที่หมักด้วยราเส้นใยที่แตกต่างกันสองชนิด ซึ่งอธิบายความแตกต่างอย่างมีนัยสำคัญในกิจกรรมของเอนไซม์ การผลิตสารเมแทบอไลต์ และฤทธิ์ทางชีวภาพ กิจกรรมของเอ็นไซม์ต่างๆ เช่น a-amylase, &glucosidase และ -glucosidase ที่ผลิตโดย A. cristatus และ A. oryzae ที่ได้รับการฉีดวัคซีนเพิ่มขึ้นตามเวลาที่หมัก (รูปที่ 3) เนื่องจากเอนไซม์เหล่านี้ทำลายโครงสร้าง arabinoxylan กรดฟีนอลหลายชนิดจึงถูกแยกออกจากผนังเซลล์ข้าวในทั้งสองตัวอย่างดังแสดงในรูปที่ 2 กรดฟีนอลิกเหล่านี้เป็นสารต้านอนุมูลอิสระที่มีศักยภาพซึ่งช่วยลดความเครียดจากปฏิกิริยาออกซิเดชั่น 291 ดังนั้นกิจกรรมของสารต้านอนุมูลอิสระและการทดสอบ TPC จึงเพิ่มขึ้นด้วย เพิ่มเวลาการหมักเนื่องจากปริมาณกรดฟีนอลเพิ่มขึ้น (รูปที่ 2 และ 4) โดยเฉพาะอย่างยิ่ง RAC มีปริมาณฟลาโวนอยด์สูงกว่า RAO เนื่องจากมีระดับของ -กลูโคซิเดสที่สูงกว่า ซึ่งจะไฮโดรไลซ์การเชื่อมโยง -ไกลโคซิดิกจากผนังเซลล์ข้าวระหว่าง การเจริญเติบโตของ A. cristatus ในข้าวโคจิ นอกจากจะแยกออกจากผนังเซลล์ข้าวแล้ว - กลูโคซิเดสยังไฮโดรไลซ์รูปแบบฟลาโวนอยด์กลูโคไซด์ให้เป็นรูปแบบอะไกลคอนที่มีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระสูงกว่า 30] รูปแบบฟลาโวนอยด์กลูโคไซด์และรูปแบบ aglycon ที่เพิ่มขึ้นจะเพิ่มกิจกรรมของสารต้านอนุมูลอิสระ เช่น ABTS, DPPH FRAP และ TFC ซึ่งอาจส่งผลต่อฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของ RAC ดังที่แสดงในแผนผังเครือข่ายความสัมพันธ์ (รูปที่ 4) ปรากฏการณ์นี้ยังพบในการศึกษาก่อนหน้านี้ที่แสดงให้เห็นการเปลี่ยนแปลงทางชีวภาพของกลูโคไซด์ไอโซฟลาโวนเป็นอะไกลโคนและรูปแบบที่เพิ่มขึ้นของฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระตามเวลาที่กล่าวถึงในถั่วเหลืองที่หมักด้วย คริสตัส [311.

RAO มีกิจกรรม a-glucosidase ในระดับที่สูงขึ้นซึ่งจะตัดการเชื่อมต่อ a-glycosidic และสร้างกลูโคสในปริมาณที่สูงขึ้นโดยอัตโนมัติ นอกจากข้อเท็จจริงที่ว่ากลูโคสเป็นแหล่งคาร์บอนหลักสำหรับเชื้อราแล้ว ใน RAC ระดับกลูโคสจะลดลงหลังการหมักเพราะมันถูกใช้สำหรับการสังเคราะห์สารทุติยภูมิ เช่น อนุพันธ์ของออโรกเลาซิน ซึ่งเป็นสารประกอบสีที่โดดเด่นซึ่งผลิตโดย A. cristatus ไม่ใช่ A .ออริซเน่. การศึกษาก่อนหน้านี้ได้รายงานว่าอนุพันธ์ของ auroglaucin มีฤทธิ์ใน DPPH และถือว่าเป็นสารต้านอนุมูลอิสระที่มีศักยภาพ [32] นอกจากนี้ ผนังเซลล์ข้าวที่ยุบตัวอาจทำให้เอ็นไซม์ซึมเข้าสู่ส่วนในสุดของข้าวได้ [24] ดังนั้นจึงสามารถสกัดสารเมแทบอไลต์ได้มากขึ้นอย่างอิสระโดยไม่ถูกรบกวนจากผนังด้านนอกของข้าว


ในแผนผังเครือข่ายความสัมพันธ์ระหว่างฤทธิ์ทางชีวภาพและสารเมแทบอไลต์ของทั้ง RAO และ RAC (รูปที่ 4) แนวโน้มทั่วไปคือฟลาโวนอยด์ กรดอินทรีย์ อนุพันธ์ของน้ำตาล และกรดไขมันได้รับการเสนอแนะว่าเป็นปัจจัยสนับสนุนในการออกฤทธิ์ทางชีวภาพ ฟลาโวนอยด์และกรดฟีนอลเป็นสารต้านอนุมูลอิสระที่มีชื่อเสียงและมีข้อดีมากมายเกี่ยวกับหน้าที่ต่างๆ เนื่องจากความสามารถในการบรรเทาความเครียดจากปฏิกิริยาออกซิเดชัน จึงถูกนำมาใช้เพื่อเพิ่มคุณภาพอาหารและชะลอความชราของผิว [33] นอกจากนี้ การศึกษาก่อนหน้านี้ได้รายงานว่ากรดไขมันและสารต้านอนุมูลอิสระสามารถสร้างผลเสริมฤทธิ์กันในการป้องกันและจัดการกับความชราของผิว [34]

ในทางกลับกัน auroglaucin และอนุพันธ์ของ lysophospholipid ทำหน้าที่เป็นผู้สนับสนุนเพิ่มเติมให้กับสารเมตาโบไลต์ใน RAC [35] อนุพันธ์ของ auroglaucin มีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระตามที่ระบุไว้ข้างต้น ดังนั้นเราจึงสันนิษฐานว่าอนุพันธ์ของ auroglaucin มีศักยภาพในการยุติปฏิกิริยาลูกโซ่ของอนุมูลอิสระเพื่อบรรเทาความเครียดของผิวหนัง ยาฮากิและคณะ แสดงให้เห็นว่า lysophospholipids สามารถรักษาความชุ่มชื้นของผิวโดยการเพิ่มการแสดงออกของปัจจัยที่เกี่ยวข้องกับเกราะป้องกันผิวและการทำงานของความชุ่มชื้นในผิวหนัง [36] ความชุ่มชื้นเป็นปัจจัยสำคัญสำหรับผิวที่มีสุขภาพดี เพราะความแห้งกร้านก่อให้เกิดการเสื่อมสภาพของผิว ซึ่งมีลักษณะเป็นความหยาบกร้าน ผิวเป็นขุย และริ้วรอยเล็กๆ [37,38] เราประมาณการว่า auroglaucin และ lysophospholipids มีฤทธิ์ในการต่อต้านริ้วรอยของผิวหนังในขั้นตอนสุดท้ายของการหมักใน RAC ได้ดีกว่าใน RAO Zhao และคณะ แสดงให้เห็นว่าชาอิฐ Fuzhuan ซึ่งมีเชื้อรา A. cristatus ที่โดดเด่นสามารถยับยั้งการถ่ายภาพผ่านการดับ ROS และกระตุ้นการส่งสัญญาณ Nrf2 ที่ลดหลั่น [21] ดังนั้นเราจึงสันนิษฐานว่า RAC มีศักยภาพในการต่อต้านริ้วรอยที่สูงกว่า RAO โดยทำหน้าที่ผ่านทางอ้อม เช่น การปรับสภาพผิวให้ดีขึ้นเพื่อให้มีความชุ่มชื้นและบรรเทาความเครียดจากอนุมูลอิสระ.

Flavonoid (11)

โดยรวมแล้ว เราเชื่อว่ากรดไขมันที่เพิ่มขึ้น กรดฟีโนลิก ฟลาโวนอยด์ ไลโซฟอสโฟลิพิด และไฮโดรควิโนนอาจเพิ่มกิจกรรมต้านอนุมูลอิสระและปรับปรุงการแสดงออกของ RNA ของอีลาสตินและคอลลาเจน รวมทั้งยับยั้งการแสดงออกของ RNA ของ MMP-1 ในตอนท้ายของ การหมัก สารประกอบเหล่านี้แสดงรูปแบบการเปลี่ยนแปลงที่แตกต่างกันในเมแทบอไลต์ตามหัวเชื้อของเชื้อราและส่งผลต่อฤทธิ์ทางชีวภาพต่างๆ การศึกษานี้อธิบายความแตกต่างของเมแทบอลิซึมโดยรวมระหว่างสปีชีส์ต่างๆ ของสกุล Aspergillus เดียวกัน โดยใช้วิธีเมแทบอโลมิกส์ นอกจากนี้ กิจกรรมของเอนไซม์ที่แตกต่างกันมีอิทธิพลต่อการผลิตสารเมแทบอไลต์ที่แตกต่างกัน และกระตุ้นให้เกิดการออกฤทธิ์ทางชีวภาพที่แตกต่างกันใน RAO และ RAC


4. วัสดุและวิธีการ

4.1. เคมีภัณฑ์และรีเอเจนต์

ซื้อเมทานอลเกรดวิเคราะห์ acetonitrile และน้ำจาก Fisher Scientific (Pittsburgh, PA, USA) สารเคมีเกรดรีเอเจนต์ ได้แก่ methoxyamine hydrochloride, pyridine และ N-methyl-N-(trimethylsilyl)-trifluoroacetamide (MSTFA) ได้มาจาก Sigma Chemical Co. (St. Louis, MO, USA) สารเคมีเกรดวิเคราะห์ ได้แก่ กรดอะซิติก 2,2-azinobis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid) diammonium salt (ABTS), Folin–Ciocalteu's phenol, สารละลายฟอร์มาลดีไฮด์, กรดฟอร์มิก, เมทอกซีเอมีนไฮโดรคลอไรด์, พี-ไนโตรฟีนอล, พี-ไนโตรฟีนอล -ดีกลูโคไพราโนไซด์ (p-NPG), โพแทสเซียมเปอร์ซัลเฟต, ไพริดีน, โซเดียมไฮดรอกไซด์, โซเดียมอะซีเตต, แป้ง, N-เมทิล-N-(ไตรเมทิลไซลิล)ไตรฟลูออโรอะซีตาไมด์ (MSTFA), 6- ไฮดรอกซี-2,5,7,8-เตตระเมทิลโครแมน-2-คาร์บอกซิลิกแอซิด (Trolox) และไทโรซีนถูกซื้อจาก Sigma-Aldrich (เซนต์หลุยส์ มิสซูรี สหรัฐอเมริกา) ซื้อโซเดียมคาร์บอเนต โซเดียมไดไฮโดรเจนฟอสเฟต และไดโซเดียมไฮโดรเจนฟอสเฟตจากบริษัท Junsei Chemical Co., Ltd. (โตเกียว ประเทศญี่ปุ่น)

Echinacoside in cistanche

4.2. การเตรียมตัวอย่างและการสกัด

แม่พิมพ์โคจิ A. oryzae KCCM 11372 (ศูนย์วัฒนธรรมจุลินทรีย์แห่งเกาหลี, KCCM; สาธารณรัฐเกาหลี) และ A. cristatus (Aspergillus cristatus Cosmax-GF จากศูนย์ Cosmax BTI R&I; Seongnam, เกาหลี) ถูกนำมาใช้ในการหมักข้าวและฉีดวัคซีนแยกต่างหาก . จุลินทรีย์แต่ละตัวได้รับการบำรุงรักษาบนวุ้นสกัดมอลต์ (สารสกัดจากมอลต์ 20 กรัม กลูโคส 20 กรัม เปปโทน 1 กรัม วุ้น 20 กรัม/ลิตร) ที่ 28 ◦ซ กระบวนการทางชีวภาพของขั้นตอนการหมักสำหรับการผลิตโคจิดัดแปลงมาจาก Lee และคณะ [11]. ตัวอย่างโคจิข้าวที่หมักด้วย A. oryzae และ A. cristatus เก็บเกี่ยวทุก 2 วัน (ตั้งแต่วันที่ 0 ถึงวันที่ 8) และเก็บไว้ที่สภาวะเยือกแข็งลึก (−80 ◦C) จนกว่าจะวิเคราะห์เพิ่มเติม ตัวอย่างทั้งหมดถูกเตรียมด้วยการจำลองแบบทางชีวภาพสองครั้ง

วิธีการสกัดตัวอย่างโคจิจากข้าวดัดแปลงมาจาก Lee และคณะ มีการปรับเปลี่ยนเล็กน้อย [11] โดยสังเขป ตัวอย่างข้าวโคจิแห้งบดบด (5 กรัม) ถูกสกัดโดยการเติมเอทานอลในน้ำ 80 เปอร์เซ็นต์ (40 มล.) และกวนบนเครื่องเขย่าแบบโคจร (200 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 24 ชั่วโมง) ที่อุณหภูมิห้อง หลังจากการปั่นแยกตัวอย่างที่ 10,000 รอบต่อนาทีเป็นเวลา 5 นาทีที่ 4 ◦C ส่วนลอยเหนือตะกอนถูกกรองด้วยตัวกรอง Millex GP 0.22 µm (Merck Millipore, Billerica, MA, USA) สารสกัดตัวอย่างที่ผ่านการกรองถูกทำให้แห้งโดยใช้หัวเร่งสุญญากาศ (ฮานิล โซล เกาหลี) และวัดน้ำหนักแห้งเพื่อประเมินผลผลิตการสกัด


4.3. การวิเคราะห์ GC–TOF–MS

ขั้นตอนการแปรรูปของตัวอย่างข้าวโคจิที่สกัดได้อธิบายโดย Lee และคณะ [11]. การวิเคราะห์ GC–TOF–MS ดำเนินการบน Agilent 7890ระบบ GC (ซานตาคลารา แคลิฟอร์เนีย สหรัฐอเมริกา) กับ Pegasus HT TOF-MS (Leco Corporation, St. Joseph, MI, USA) ก๊าซตัวพา (ฮีเลียม) ใช้กับ RTx-5MS (ความยาว 30 ม. × เส้นผ่านศูนย์กลางภายใน 0.25 มม., J&W Scientific, Folsom, CA, USA) ที่อัตราการไหลคงที่ 1.5 มล./นาที อุณหภูมิของหัวฉีดและแหล่งกำเนิดไอออนถูกรักษาไว้ที่ 250 และ 230 ◦C ตามลำดับ อุณหภูมิเตาอบถูกคงไว้ที่ 75 ◦C เป็นเวลา 2 นาที จากนั้นเพิ่มเป็น 300 ◦C ที่ 15 ◦C/นาที ซึ่งคงไว้เป็นเวลา 3 นาที จากนั้น ฉีดตัวอย่าง 1 µL ด้วยช่วงการสแกนมวล m/z 50–800 การวิเคราะห์ตัวอย่างทั้งหมดดำเนินการด้วยการวิเคราะห์ซ้ำสามชุด


4.4. UHPLC–LTQ–Orbitrap–การวิเคราะห์ MS

ตัวอย่างโคจิจากข้าวที่สกัดได้วิเคราะห์หาสารทุติยภูมิโดยใช้โครมาโตกราฟีของเหลวประสิทธิภาพสูงพิเศษ linear trap quadrupole orbitrap tandem Mass spectrometry (UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS) โดยใช้โปรโตคอลที่อธิบายโดย Kwon และคณะ [39]. แต่ละตัวอย่างถูกแยกโดยใช้คอลัมน์ Phenomenex KINETEX® C18 (ขนาดอนุภาค 100 มม. 2.1 มม. 1.7 ม. Torrance, CA, USA) ช่วงแมสสเปกตรัมและโฟโตไดโอดในโหมดไอออนบวกและลบได้รับการปรับสำหรับ m/z 100−1000 และ 200−600 nm ตามลำดับ


4.5. การประมวลผลข้อมูลและการวิเคราะห์ทางสถิติ

ข้อมูลดิบ GC–TOF–MS และ UHPLC–LTQ–Orbitrap–MS/MS ถูกแปลงเป็นรูปแบบ netCDF (*.cdf) โดยใช้ซอฟต์แวร์ Leco ChromaTOF และ Thermo Xcalibur ตามลำดับ ไฟล์ net CDF (*.cdf) ที่เกี่ยวข้องอยู่ภายใต้ MetAlign (เข้าถึงเมื่อวันที่ 13 กรกฎาคม 2021)) การประมวลผลข้อมูลโดยใช้ซอฟต์แวร์โดยใช้โปรโตคอลที่อธิบายโดย Lee และคณะ [11,24]. ข้อมูลแมสสเปกโตรเมตริกซึ่งเป็นตัวแทนของมวลพีคที่เหมาะสม (m/z) เวลากักเก็บ (นาที) และข้อมูลพื้นที่พีคเป็นตัวแปร ได้รับการประเมินโดยใช้ซอฟต์แวร์ SIMCA-P บวก 120 (Umetrics, Umea, สวีเดน) สำหรับการวิเคราะห์ทางสถิติหลายตัวแปร ก่อนการวิเคราะห์องค์ประกอบหลัก (PCA) การวิเคราะห์จำแนกกำลังสองน้อยที่สุดบางส่วน (PLS-DA) และการวิเคราะห์จำแนกกำลังสองน้อยที่สุดในมุมฉาก (OPLS-DA) ชุดข้อมูลถูกแปลงรูปแบบล็อก และความแปรปรวนหน่วยถูกปรับขนาดเพื่อเปรียบเทียบโคจิข้าว หมักด้วยเชื้อราชนิดต่างๆ PASW Statistics 18 (SPSS, Inc., Chicago, IL, USA) ใช้เพื่อทดสอบความแตกต่างที่มีนัยสำคัญ (p-value ของ < 0.05) โดยการวิเคราะห์ความแปรปรวนแบบทางเดียวและเพื่อคำนวณค่าสัมประสิทธิ์สหสัมพันธ์ สำหรับแผนที่ความสัมพันธ์ แผนที่เครือข่ายความสัมพันธ์ระหว่างเมแทบอไลต์ที่มีค่าสัมประสิทธิ์สหสัมพันธ์ของเพียร์สันสูงกว่า 0.5 และฤทธิ์ทางชีวภาพถูกสร้างขึ้นด้วยซอฟต์แวร์ Cytoscape (https://www.cytoscape.org/ (เข้าถึงเมื่อ 13 กรกฎาคม 2021)) การระบุสารเมแทบอไลต์เบื้องต้นดำเนินการโดยการจับคู่น้ำหนักโมเลกุลและองค์ประกอบของโมเลกุล เวลากักเก็บ ชิ้นส่วนมวล

รูปแบบและการดูดกลืนแสงของข้อมูลรังสีอัลตราไวโอเลต (UV) จากวรรณกรรมและห้องสมุดภายในบริษัทของเรา


4.6. การกำหนดกิจกรรมของเอนไซม์

การทดสอบกิจกรรมของเอนไซม์สำหรับ -amylase, -glucosidase และ -glucosidase ได้ดำเนินการตามการศึกษาก่อนหน้านี้ [25,40,41] ตัวอย่างโคจิข้าวแต่ละตัวอย่างปริมาณ 10 กรัมถูกสกัดในน้ำ 90 มล. โดยการเขย่าบนเครื่องเขย่าแบบโคจรที่เวลา 120 น. และ 25 ◦ซ เป็นเวลา 1 ชั่วโมง หลังจากกรองตัวอย่างแล้ว สารแขวนลอยจะถูกนำมาใช้เพื่อประเมินกิจกรรมของเอนไซม์

4.7. การกำหนดกิจกรรมต้านอนุมูลอิสระและปริมาณฟีนอลิกและฟลาโวนอยด์ทั้งหมด

เพื่อตรวจสอบฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของตัวอย่างข้าวโคจิ ABTS, DPPH, ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระเฟอริกรีดิวซ์ (FRAP), ปริมาณฟีนอลิกทั้งหมด (TPC) และปริมาณฟลาโวนอยด์ทั้งหมด (TFC) ได้ดำเนินการเพิ่มขึ้นสามเท่า

การทดสอบ ABTS และ FRAP ดำเนินการโดยใช้วิธีการที่อธิบายโดย Lee และคณะ [24]. โดยสังเขป สารละลายสต็อก ABTS เจือจางด้วยน้ำกลั่นเพื่อให้ได้การดูดซับขั้นสุดท้ายที่ 0.7 ± 0.02 ที่ 750 นาโนเมตร (180 µL) คือ เติมลงในสารสกัดแต่ละตัวอย่าง (20 µL) ใน 96-จานหลุม ปฏิกิริยาถูกปล่อยให้เกิดขึ้นเป็นเวลา 6 นาทีในที่มืดที่อุณหภูมิห้อง วัดค่าการดูดกลืนแสงที่ 750 นาโนเมตรโดยใช้สเปกโตรโฟโตมิเตอร์ สำหรับการทดสอบ FRAP ส่วนผสมของ 300 mM acetate buffer (pH 3.6), 20 mM iron (III) chloride และ 10 mM 2,4,6-สารละลาย tripyridyl-S-triazine (TPTZ) ใน 40 mM HCl (10:1:1, v/v/v) ถูกเตรียมไว้ ตัวอย่าง (10 µL) ผสมกับ FRAP reagent 300 µL และบ่มที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 6 นาที วัดค่าการดูดกลืนแสงที่ 570 นาโนเมตร การทดสอบ DPPH ดำเนินการตามวิธีที่ดัดแปลงมาจาก Won et al [42] โดยนำสารละลายสต็อก DPPH 180 µL (0.2 mM ในเอทานอล) ผสมกับโคจิข้าว 20 µL กับสารสกัดจากเชื้อราสองชนิดใน 96-แผ่นหลุม และปล่อยให้ทำปฏิกิริยาเป็นเวลา 20 นาทีที่อุณหภูมิห้อง ในที่มืด. วัดค่าการดูดกลืนอนุมูลอิสระโดย DPPH ที่ 515 นาโนเมตร ผลลัพธ์ของ ABTS, FRAP และ DPPH แสดงเป็นความเข้มข้นของความสามารถในการต้านอนุมูลอิสระเทียบเท่าของ Trolox (TEAC) (mM) ต่อมิลลิกรัมของโคจิ เส้นโค้งความเข้มข้นมาตรฐานอยู่ในช่วงตั้งแต่ 0.0078 mM ถึง 1 mM TEAC

สำหรับการทดสอบ TFC และ TPC เป็นวิธีการที่ Lee และคณะใช้ [25] ตามมา สำหรับการทดสอบ TFC 20 µL ของตัวอย่างข้าวโคจิแต่ละตัวอย่างผสมกับ 20 µL ของ 1 N NaOH และ 180 µL ของ 90 เปอร์เซ็นต์ไดเอทิลีนไกลคอลใน 96-จานหลุม หลังจากการบ่มของผสมเป็นเวลา 60 นาทีที่อุณหภูมิห้อง วัดค่าการดูดกลืนแสงที่ 405 นาโนเมตร TFC แสดงเป็นความเข้มข้นเทียบเท่า naringin (NE) (mM) ต่อมิลลิกรัมของโคจิ เส้นโค้งความเข้มข้นมาตรฐานเป็นเส้นตรงระหว่าง 0.0027 และ 0.3445 mM NE สำหรับการวิเคราะห์การทดสอบ TPC 20 µL ของแต่ละตัวอย่างถูกบ่มด้วย 100 µL ของ 0.2 N Folin–Ciocalteu reagent ใน96-จานหลุมที่อุณหภูมิห้องเป็นเวลา 6 นาที จากนั้น 80 µL ของสารละลายโซเดียมคาร์บอเนต (Na2CO3) 7.5 เปอร์เซ็นต์ถูกเติมลงในของผสมและปล่อยให้ทำปฏิกิริยาเป็นเวลา 60 นาทีที่อุณหภูมิห้อง สุดท้าย ค่าการดูดกลืนแสงถูกประเมินที่ 750 นาโนเมตร ผลลัพธ์จะแสดงเป็นความเข้มข้นเทียบเท่ากรดแกลลิก (GE) (mM) ต่อมิลลิกรัมของโคจิในช่วงความเข้มข้นมาตรฐาน 0.0230–2.9391 mM GE

Echinacoside in cistanche (7)


4.8. การเพาะเลี้ยงเซลล์

ไฟโบรบลาสต์ผิวหนังมนุษย์ปฐมภูมิ (HDF) อาหารเลี้ยงเชื้อที่เกี่ยวข้อง และ DetachKit ถูกซื้อจาก PromoCell (ไฮเดลเบิร์ก เยอรมนี) HDFs ถูกเพาะเลี้ยงในอาหารเลี้ยงเชื้อไฟโบรบลาสต์ (Fibroblast Growth Medium 2, PromoCell, Cat no. C-23020) ที่อุดมด้วยอาหารเสริมผสม/Fibroblast Growth Medium 2 (PromoCell, Cat no. C-39325) และ เพนิซิลลิน-สเตรปโตมัยซิน 1 เปอร์เซ็นต์ (PS) ที่ 37 ◦ซ ในตู้อบ CO2 5 เปอร์เซ็นต์ เมื่อ HDF ที่เพาะเลี้ยงถึงจุดบรรจบกันเกือบ 80 เปอร์เซ็นต์ พวกมันจะถูกเพาะเลี้ยงย่อยหรือเพาะลงในหลุมที่เหมาะสมสำหรับการรักษาที่แตกต่างกันและการตรวจวิเคราะห์เพิ่มเติม

4.9. ปฏิกิริยาลูกโซ่โพลีเมอเรสตามเวลาจริง

ในการแยกและหาปริมาณ RNA ทั้งหมดจากเม็ดเซลล์ มีการใช้ Trizol reagent และทำการวิเคราะห์โดยใช้เครื่องสเปกโตรโฟโตมิเตอร์ การสังเคราะห์ cDNA ดำเนินการในปริมาตรปฏิกิริยาทั้งหมด 20 µL; ของผสมปฏิกิริยาประกอบด้วย 2 ไมโครกรัมของ RNA ทั้งหมด, โอลิโก (dT) และพรีมิกซ์การถอดรหัสแบบย้อนกลับภายใต้สภาวะปฏิกิริยาต่อไปนี้: 45 ◦ซ เป็นเวลา 45 นาที, ที่ตามด้วย 95 ◦ซ เป็นเวลา 5 นาที RT-PCR ใช้สำหรับหาปริมาณของการแสดงออกของยีน และผลลัพธ์ได้รับการวิเคราะห์ในภายหลังโดยใช้ซอฟต์แวร์ระบบ StepOne PlusTM (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA) การขยายสัญญาณ RT-PCR ดำเนินการโดยใช้ SYBR Green PCR Master Mix กับ ROX แบบผสมล่วงหน้า (Applied Biosystems, Foster City, CA, USA) และไพรเมอร์ (Bioneer, Daejeon, Korea) ในเครื่องมือ ABI 7300 ตามโปรโตคอลของผู้ผลิต สภาวะการเกิดปฏิกิริยามีดังนี้: การเริ่มต้นที่ 95 ◦C เป็นเวลา 10 นาที ตามด้วยสภาวะการหมุนเวียนที่ 95 ◦C เป็นเวลา 15 วินาที 60 ◦C เป็นเวลา 30 วินาที และ 72 ◦C เป็นเวลา 30 วินาที เป็นเวลา 40 รอบ - แอคตินถูกใช้เป็นตัวควบคุมภายใน



5. สรุปผลการวิจัย

โดยสรุป โคจิจากข้าวแสดงการผลิตสารเมแทบอไลต์และฤทธิ์ทางชีวภาพที่แตกต่างกันตามสายพันธุ์เชื้อรา Aspergillus ที่ใช้ ระดับที่สูงขึ้นของฟลาโวนอยด์และอนุพันธ์ของ auroglaucin ใน RAC มีค่าสูงขึ้นฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระมากกว่าใน RAO นอกจากนี้ยังเสริมฤทธิ์กันของกรดไขมันและสารต้านอนุมูลอิสระที่พบในโคจิทั้งสองมีความสัมพันธ์กับการแสดงออกของ RNA ของปัจจัยต่อต้านริ้วรอยของผิว. อนุพันธ์ของ Auroglaucin และ lysophospholipids ที่พบใน RAC ก็เป็นตัวเลือกที่อาจเกี่ยวข้องกับการแสดงออกของ RNA ของปัจจัยต่อต้านริ้วรอยของผิวหนัง. ดังนั้น แม้ว่าข้าวโคจิจะหมักโดยใช้พืชสกุลเดียวกัน (Aspergillus) แต่ก็มีความแตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญในกิจกรรมของเอนไซม์และสารเมแทบอไลต์สำหรับแต่ละสายพันธุ์ และส่งผลต่อฤทธิ์ทางชีวภาพเช่นสารต้านอนุมูลอิสระและกิจกรรมต่อต้านริ้วรอย. ดังนั้น การศึกษานี้จึงให้ข้อมูลเชิงลึกที่ครอบคลุม ตลอดจนตรรกะสำหรับการเลือกจุลินทรีย์ที่ปลูกเชื้ออย่างมีเหตุผล ในส่วนที่เกี่ยวกับ

เมแทบอโลมิกส์เพื่อปรับปรุงคุณภาพการผลิตโคจิในเชิงพาณิชย์

Flavonoid (2)

วัสดุเสริม:ข้อมูลต่อไปนี้มีอยู่ทางออนไลน์ที่ รูปที่ S1: พล็อตคะแนน PLS-DA (A,B) และ OPLS-DA (C) สำหรับข้าวโคจิหมักด้วยเชื้อรา Aspergillus cristatusหรือก. oryzaeได้มาจาก UHPLC–LTQ–Orbitrap MS/MS (A,C) และ GC–TOF–MS (B), ตารางที่ S1: รายชื่อสารเมแทบอไลต์ที่แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญจากข้าวโคจิด้วยความแตกต่างเชื้อราแอสเปอร์จิลลัส. ระหว่างการหมักที่ระบุโดย UHPLC–LTQ–Orbitrap-MS/MS, ตารางที่ S2: รายชื่อสารเมแทบอไลต์ที่แตกต่างกันอย่างมีนัยสำคัญจากข้าวโคจิด้วยความแตกต่างเชื้อราแอสเปอร์จิลลัส. ระหว่างการหมักที่ระบุโดย GC-TOF-MS รูปที่ S2: แผนที่ความสัมพันธ์ของฤทธิ์ทางชีวภาพ (ฤทธิ์ของเซลล์ผิวหนังและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ) และข้าวโคจิหมักด้วยเชื้อรา Aspergillus cristatusหรือก. oryzaeสารเมแทบอไลต์ตามค่าสัมประสิทธิ์สหสัมพันธ์ของเพียร์สัน แต่ละตารางระบุค่าสัมประสิทธิ์สหสัมพันธ์ของเพียร์สัน (r)

ผลงานของผู้เขียน:การสร้างแนวคิด CL และ SL; วิธีการ HL, SL, SK (Seoyeon Kyung) และ JR; การตรวจสอบ HL, SL และ SK (ซอยอน คยอง); การวิเคราะห์อย่างเป็นทางการ HL และ SK (Seoyeon Kyung); การสืบสวน HL และ SL; ทรัพยากร, JR, SK (ซึงฮยอนคัง) และ MP; การเขียน—การเตรียมร่างต้นฉบับ HL; การเขียน—ตรวจทานและแก้ไข HL และ SL; การสร้างภาพ HL; การกำกับดูแล SL และ CL; การบริหารโครงการ SK (คังซึงฮยอน) MP และ CL; การจัดหาเงินทุน CL ผู้เขียนทั้งหมดได้อ่านและตกลงที่จะตีพิมพ์รุ่นของต้นฉบับ

เงินทุน:งานนี้ได้รับการสนับสนุนโดย Korea Institute of Planning and Evaluation for Technology in Food, Agriculture and Forestry (IPET) ผ่านโครงการ Agricultural Microbiome R&D Program (The Strategic Initiative for Microbiomes in Agriculture and Food) ซึ่งได้รับทุนสนับสนุนจากกระทรวงเกษตร อาหาร และชนบท กิจการ (MAFRA) (หมายเลขอนุญาต 918011-04-3-HD020) นอกจากนี้ งานนี้ได้รับการสนับสนุนจากสถาบันการวางแผนและประเมินเทคโนโลยีด้านอาหาร การเกษตร ป่าไม้ของเกาหลี (IPET) ผ่านโครงการพัฒนาเทคโนโลยีอาหารที่มีมูลค่าเพิ่มสูง ซึ่งได้รับทุนสนับสนุนจากกระทรวงเกษตร อาหาร และกิจการชนบท (MAFRA) (หมายเลขสิทธิ์ 318027-04-3-HD030)


คำชี้แจงของคณะกรรมการพิจารณาสถาบัน:ไม่สามารถใช้ได้.
คำชี้แจงความยินยอมที่ได้รับการบอกกล่าว:ไม่สามารถใช้ได้.

คำชี้แจงความพร้อมใช้งานของข้อมูล:ข้อมูลที่นำเสนอในการศึกษานี้สามารถขอได้จากผู้เขียนที่เกี่ยวข้อง

กิตติกรรมประกาศ:งานวิจัยนี้ได้รับการสนับสนุนโดยกองทุนนักวิจัยมหาวิทยาลัยคอนกุกใน2020.

ผลประโยชน์ทับซ้อน:ผู้เขียนประกาศว่าไม่มีความขัดแย้งทางผลประโยชน์


อ้างอิง

1. ซานเลียร์ เอ็น.; โกคเซน, บีบี; Sezgin, AC ประโยชน์ต่อสุขภาพของอาหารหมักดอง คริ. รายได้ วิทย์อาหาร. นัท 2019, 59, 506–527. [ครอสรีฟ]

2. ยู, K.-W.; ลี, เอส-อี.; ชอย, H.-S.; ซูห์, เอชเจ; รา, แคนซัส; ชอย เจดับบลิว; ฮวาง เจ.-เอช. การเพิ่มประสิทธิภาพสำหรับการเตรียมข้าวโคจิโดยใช้ Aspergillus oryzae CJCM-4 ที่แยกได้จาก meju แบบดั้งเดิมของเกาหลี วิทย์อาหาร. เทคโนโลยีชีวภาพ 2012, 21, 129–135. [ครอสรีฟ]

3. หยาง วาย; เซีย, วาย.; หลิน เอ็กซ์; วัง, G.; จาง เอช; ซีออง, ซี; ยู, เอช.; ยู, เจ; Ai, L. การปรับปรุงรูปแบบรสชาติในไวน์ข้าวของจีนโดยการสร้างยีสต์หมักที่มีความทนทานต่อเอธานอลและกิจกรรมการหมักที่เหนือกว่า ความละเอียดของอาหาร ภายใน 2018, 108, 83–92. [ครอสรีฟ] [PubMed]

4. อิชิคาวะ อี.; ฮิราตะ เอส; ฮาตะ, ย.; ยาซาวะ เอช; ทามูระ, เอช; กนก, ม.; อิวาชิตะ, พ.; Hirata, D. ผลกระทบของสารตั้งต้นโคจิต่อสารเมแทบอไลต์ในเหล้าสาเกญี่ปุ่นที่ทำจากข้าวสาเก Koshitanrei ชีววิทยาศาสตร์ เทคโนโลยีชีวภาพ ชีวเคมี 2020, 84, 1714–1723. [ครอสรีฟ]

5. เพชรพรไพศาล ป.; ป. ทิพยวัฒน์; เจ, ม.; สุทธินุช รำข้าวดำพันธุ์ท้องถิ่นของไทย: แหล่งของสารประกอบเชิงหน้าที่ในการปรับภูมิคุ้มกัน การมีชีวิตของเซลล์และการสังเคราะห์คอลลาเจน และยับยั้งเมทริกซ์เมทัลโลโปรตีนเนส-2 และ-9 เจ. ฟังก์ชัน. อาหาร 2014, 7, 650–661 [ครอสรีฟ]

6. คิม เอเจ; ชอย, เจเอ็น; คิม เจ; คิม, ฮโย; ปาร์ค, เอสบี; ยอ, SH; ชอย, JH; หลิว เคเอช ; Lee, CH การทำโปรไฟล์ Metabolite และฤทธิ์ทางชีวภาพของข้าวโคจิที่หมักโดยสายพันธุ์ Aspergillus เจ.ไมโครไบโอล. เทคโนโลยีชีวภาพ 2555, 22, 100–106. [ครอสรีฟ] [PubMed]

7. เอมส์ บีเอ็น; ชิเกนางะ, เอ็มเค ; ฮาเก้น TM Oxidants สารต้านอนุมูลอิสระและโรคความเสื่อมแห่งวัย โพรซี นัทล. อคาเดมี วิทย์ สหรัฐอเมริกา 2536, 90, 7915–7922 [ครอสรีฟ] [PubMed]

8. วัลโก ม.; ไลบ์ฟริตซ์, ดี.; มองโกล เจ; โครนิน, มอนแทนา; มาซูร์ ม.; Telser, J. อนุมูลอิสระและสารต้านอนุมูลอิสระในการทำงานทางสรีรวิทยาตามปกติและโรคในมนุษย์ ภายใน เจ. ไบโอเคม. เซลล์ไบโอล 2550, 39, 44–84. [ครอสรีฟ]

9. อุตตรา, บี; ซิงห์ เอวี; ซัมโบนี พี; Mahajan, RT ความเครียดออกซิเดชันและโรคเกี่ยวกับความเสื่อมของระบบประสาท: การทบทวนทางเลือกในการบำบัดด้วยสารต้านอนุมูลอิสระต้นน้ำและปลายน้ำ สกุลเงิน นิวโรฟาร์มาคอล. 2552, 7, 65–74. [ครอสรีฟ]

10. เยน, G.-C.; ช้าง, ย.-ค.; สุ, ส.-ว. ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระและสารออกฤทธิ์ของข้าวโคจิที่หมักด้วยเชื้อรา Aspergillus candidus เคมีอาหาร. 2546, 83, 49–54. [ครอสรีฟ]

11. ลี, เยอรมนี; ลี เอส; ซิงห์, ด.; จาง ES; ชิน, เอชดับเบิลยู; พระจันทร์ ว.บ.; Lee, CH ได้ทำการแก้ไขเมตาโบโลมเปรียบเทียบตามเวลาสำหรับการหมักโคจิกับข้าวกล้อง ข้าวขาว และข้าวเอ็มบริโอยักษ์ เคมีอาหาร. 2017, 231, 258–266. [ครอสรีฟ] [PubMed]

12. จาร์ราร์ ม.; เบห์ล เอส; ชาฮีน น.; ฟาติมา, อ.; Nasab, R. ผลการต่อต้านริ้วรอยของเรตินอลและกรดอัลฟ่าไฮดรอกซีต่อเส้นใยอีลาสตินของเส้นเซลล์ไฟโบรบลาสต์ผิวหนังของมนุษย์ที่มีอายุด้วยภาพถ่าย ภายใน เจ เมด เฮลท์ ไบโอเมด ฟาร์มา อังกฤษ 2015, 7, 328.

13. บอลลา, อาร์เอส; อัล-ซูไบ, AM; อัล-จินดาน, RY ; Balakrishna, JP; ราวี, พีเค; วีระราฆวัน รองประธาน; พิไล, เอเอ ; กอลลาปาลลี, SSR; โจเซฟ เจพี; Surapaneni, KM ความสามารถในการรักษาบาดแผลในหลอดทดลองของสารสกัดจากใบเมทานอลิกของ Aristolochia saccata อาจเกิดจากผลการกระตุ้นต่อการแสดงออกของคอลลาเจน-1 เฮลิยอน 2019, 5, e01648. [ครอสรีฟ] [PubMed]

14. ไมน์เก้ เอ็มซี; นาวบารี ซีเค; แชนเซอร์ เอส; โวลเลิร์ต, เอช.; Lademann เจ; Darvin, ME อิทธิพลของสารสกัดจากผักคะน้าที่อุดมด้วยแคโรทีนอยด์ทางปากต่อดัชนีคอลลาเจน I/อีลาสตินของผิวหนัง สารอาหาร 2017, 9, 775. [CrossRef] [PubMed]

15. มาจีด ม.; บาท, บี; อานันท์ ส.; ศิวะกุมาร อ.; ปาลิวาล ป.; Geetha, KG การยับยั้ง ROS ที่เกิดจากรังสี UV และการทำลายคอลลาเจนโดยสารสกัด Phyllanthus emblica ในไฟโบรบลาสต์ผิวหนังของมนุษย์ปกติ เจ.คอสเมท. วิทย์ 2554, 62, 49–56. [ผับเมด]

16. ม.มาสุดา; มูราตะ, เค; นารูโตะ, เอส; อุวายา, อ.; อิซามิ เอฟ; Matsuda, H. Matrix metalloproteinase-1 กิจกรรมการยับยั้งของสารสกัดจากเมล็ด Morinda citrifolia และองค์ประกอบในไฟโบรบลาสต์ผิวหนังของมนุษย์ที่ฉายรังสี UVA ไบโอล ฟาร์มา วัว. 2555, 35, 210–215. [ครอสรีฟ] [PubMed]

17. ซอ, วาย.-เค.; จุง, S.-H.; เพลง, K.-Y.; ปาร์ค, เจ.-เค.; พาร์ค, ซี.-เอส. ฤทธิ์ต้านการเกิดแสงของสารสกัดจากรำข้าวหมักต่อไฟโบรบลาสต์ในผิวหนังปกติที่เกิดจากรังสียูวี เออ ความละเอียดของอาหาร เทคโนโลยี 2553, 231, 163–169. [ครอสรีฟ]

18. กูโฟ พี; Trindade, H. สารต้านอนุมูลอิสระในข้าว: กรดฟีโนลิก, ฟลาโวนอยด์, แอนโธไซยานิน, โปรแอนโธไซยานิดิน, โทโคฟีรอล, โทโคไตรอีนอล, -โอรีซานอล และกรดไฟติก วิทย์อาหาร. นัท 2014, 2, 75–104. [ครอสรีฟ]

19. เบคแมน อ.; ฟิลลิปส์, RD; Chen, J. การเปลี่ยนแปลงคุณสมบัติทางกายภาพที่เลือกและกิจกรรมของเอนไซม์ของข้าวและข้าวบาร์เลย์โคจิระหว่างการหมักและการเก็บรักษา อาหารเจ. วิทย์ 2012, 77, M318–M322. [ครอสรีฟ]

20. คัง ด.; สุ, ม.; ลำดวน, ย.; Huang, Y. Eurotium cristatum เชื้อราโปรไบโอติกที่มีศักยภาพจากชาอิฐ Fuzhuan ลดความอ้วนในหนูโดยการปรับจุลินทรีย์ในลำไส้ ฟังก์ชั่นอาหาร 2019, 10, 5032–5045. [ครอสรีฟ]

21. Zhao พี; อลัม เอ็มบี ; Lee, SH การป้องกันรังสี UVB-Induced Photoaging โดย Fuzhuan-Brick Tea Aqueous Extract via MAPKs/Nrf2- Mediated Down-Regulation of MMP-1 สารอาหาร 2018, 11, 60. [CrossRef] [PubMed]

22.เฮอร์ เอสเจ; ลี ซิส ; คิม, วายซี; ชอย ฉัน; Kim, GB ผลของการหมักต่อฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระในอาหารจากพืช เคมีอาหาร. 2557, 160, 346–356. [ครอสรีฟ] [PubMed]

23. Zhou, S.-D.; Xu, X.; ลิน, ย.-ฉ.; เซีย, H.-Y.; หวาง, ล.; ต๋อง ม.-ส. การคัดกรองออนไลน์และการระบุสารกำจัดอนุมูลอิสระในดอกดาฮูริกาที่หมักด้วย Eurotium cristatum โดยใช้ระบบ HPLC-PDA-Triple-TOF-MS/MS-ABTS เคมีอาหาร. 2019, 272, 670–678. [ครอสรีฟ] [PubMed]

24. ลี เอส; ลี เดอ ; ซิงห์, ด.; Lee, CH Metabolomics เผยกระบวนการเตรียมเมล็ดข้าวที่เหมาะสมที่สุด (การสี) ไปสู่การหมักข้าวโคจิ เจ. อกริก. เคมีอาหาร. 2561, 66, 2694–2703. [ครอสรีฟ]



สอบถามเพิ่มเติม:

อีเมล:wallence.suen@wecistanche.com whatsapp: บวก 86 15292862950


คุณอาจชอบ