การศึกษาเชิงทดลองเกี่ยวกับผลการป้องกันของ Cistanche Total Glycosides (CTG) ต่อการบาดเจ็บที่เลือดไหลย้อนกลับของไต

ติดต่อ: Audrey Hu Whatsapp/hp: 0086 13880143964 อีเมล:audrey.hu@wecistanche.com

ZHU Jun, ZHAO Xi

เชิงนามธรรม:วัตถุประสงค์ เพื่อสร้างแบบจำลองหนูแรทของการตกเลือดและการช่วยชีวิตเพื่อสังเกตผลการป้องกันของซิสแทนเช่ โททัล ไกลโคไซด์(ซีทีจี)ที่ไตการบาดเจ็บจากการกลับเป็นเลือดขาดเลือด. หนูทดลองวิธี SD ถูกสุ่มเป็นกลุ่มหลอก － กลุ่มปฏิบัติการ กลุ่มช็อต และการช่วยชีวิต (กลุ่มทดลอง) และกลุ่ม CTG โดยมีหนู 10 ตัวในแต่ละกลุ่ม หลังการสร้างแบบจำลอง หนูในกลุ่ม CTG ได้รับการฉีด CTG 400 มก./กก. ในช่องท้อง ในกลุ่มทดลองและกลุ่มทดลองหลอก ให้ฉีดน้ำเกลือ 3 มล. ระดับ Cr, BUN และ Cys － C ถูกกำหนดเพื่อตรวจหาการทำงานของไตในแต่ละกลุ่ม โฟลว์ไซโตเมทรีถูกใช้เพื่อตรวจหาอัตราการตายของเซลล์ไต ELISA ถูกใช้เพื่อตรวจหาการแสดงออกของ XIAP ในเนื้อเยื่อไต ผลลัพธ์ เมื่อเปรียบเทียบกับกลุ่มทดลอง Cr, BUN และ Cys － ระดับ C ลดลงอย่างเห็นได้ชัดในCTGกลุ่ม ( P ＜ {{0}}.01) และการตายของเซลล์ไตลดลง ( P ＜ 0.01) CTG ปรับปรุงการแสดงออก XIAP อย่างมีนัยสำคัญ ( P<0.05). conclusion="">CTGนำผลการป้องกันมาสู่การขาดเลือดกลับคืนมาอาการบาดเจ็บที่ไตในหนู ซึ่งอาจเกี่ยวข้องกับการส่งเสริมการแสดงออกของ XIAP

【คำสำคัญ】 ไต; การบาดเจ็บจากการกลับเป็นเลือดของการขาดเลือด; Cistanche Total Glycosides; XIAP; การตายของเซลล์

ซิสทานเช่ โททัล ไกลโคไซด์

Ischemia-reperfusion (I/R) บาดเจ็บเป็นปรากฏการณ์ทางพยาธิสรีรวิทยาที่พบบ่อยของความเสียหายของไตในกระบวนการช็อกเลือดออก การบาดเจ็บรุนแรง การปลูกถ่ายไต และการผ่าตัดเนื้องอกในไต จากการศึกษาพบว่าการตายของเซลล์อะพอพโทซิสมีส่วนสำคัญต่อความเสียหายของการทำงานของไตที่เกิดจากการบาดเจ็บของ I/R [1] ตัวยับยั้งที่เชื่อมโยงกับโครโมโซม X ของโปรตีนอะพอพโทซิส (XIAP) เป็นหนึ่งในสารยับยั้งการตายแบบอะพอพโทซิสภายในร่างกายที่แข็งแกร่งที่สุดที่พบในตอนนี้ [2] มีการศึกษาเพียงเล็กน้อยเกี่ยวกับฤทธิ์ต้านอะพอพโทซิสของ XIAP ในเนื้อเยื่อไตหลังการบาดเจ็บของ I/Rซิสทานเช่ โททัล ไกลโคไซด์(CTG) มาจากบัญชีรายชื่อสารประกอบฟีนิลเอธานอลไกลโคไซด์ที่สกัดจากCistancheมีหน้าที่ทางชีวภาพที่หลากหลาย มีการศึกษาเพียงเล็กน้อยเกี่ยวกับการป้องกันไตหลังจากได้รับบาดเจ็บที่ I/R ในการทดลองนี้ ได้มีการสร้างแบบจำลองหนูของการช่วยชีวิตด้วยภาวะช็อกจากเลือดออก และได้สร้างแบบจำลองการบาดเจ็บของ I/R อย่างเป็นระบบเพื่อสำรวจผลการป้องกันของการปรับสภาพ CTG ต่อไตจากการบาดเจ็บของ I/R และสำรวจกลไกที่เป็นไปได้

ผลกระทบของ cistanche: ป้องกันIschemia-reperfusion (I/R) บาดเจ็บ

1 วัสดุและวิธีการ

1.1 วัสดุทดลอง

1.1.1 สัตว์ทดลองในห้องปฏิบัติการ หนู SD เพศผู้เกรดสะอาด 30 ตัว จัดโดยศูนย์ทดลองแห่งมหาวิทยาลัยการแพทย์แผนจีนแห่งมหาวิทยาลัยเซี่ยงไฮ้ หมายเลขใบรับรองสัตว์: SYXK (เซี่ยงไฮ้) 2009-0069 น้ำหนักตัว (320 ± 30) ก.

1.1.2 น้ำยาทดลองCTG(ซื้อจากเจ้อเจียงหางโจว Xinghui Tianli Pharmaceutical Co., Ltd. หมายเลขแบทช์: 20081516); โซเดียมเพนโทบาร์บิทัล (หมายเลขแบทช์: P3761), โพรพิเดียมไอโอไดด์ (PI), Rhodamin123 (ซื้อทั้งคู่ (จากซิกมา, สหรัฐอเมริกา); Rat XIAP ชุดทดสอบ ELISA Kit (ซื้อจาก Shanghai Kemin Biotechnology Co., Ltd., หมายเลขแบทช์ CSB-ELO26172MO) .

1.1.3 เครื่องมือห้องปฏิบัติการเครื่องอ่านไมโครเพลท (บริษัท American Thermo); เครื่องตรวจจับทางสรีรวิทยาแบบหลายพารามิเตอร์ (ซื้อจากบริษัท NIHON KOHDEN ประเทศญี่ปุ่น); Flow Cytometer (ซื้อจาก Becton-Dickinson Company, USA); 24 G trocar ( บริษัท อุปกรณ์การแพทย์มณฑลซานตง Jierui)

1.2 วิธีการทดลอง

1.2.1 การเตรียมหนูแรท SD แบบจำลองสัตว์ถูกอดอาหาร 12 ชั่วโมงก่อนการทดลองและให้ยาสลบโดยการฉีดโซเดียม เพนโทบาร์บิทัล (50 มก./กก.) เข้าช่องท้อง หนูถูกตรึงในตำแหน่งหงายและทำแผล 3 ซม. ที่ช่องท้องส่วนล่างด้านซ้ายและแยกออกจากกัน ในหลอดเลือดแดงต้นขามีการใส่ trocar 24 G เครื่องทดสอบทางสรีรวิทยาแบบหลายพารามิเตอร์เชื่อมต่อหลอดฉีดยาขนาด 20 มล. heparinized และความดันโลหิตลดลงถึง 40 มม. ปรอท ความดันโลหิตลดลงเหลือ 40 มม.ปรอท ถือว่าช็อกได้เริ่มขึ้นและความดันโลหิตจะคงอยู่เป็นเวลา 90 นาที มันคือ (13 ± 3) มล. จากนั้นเลือดที่มาจากตัวเองในหลอดฉีดยาจะถูกส่งกลับอย่างช้าๆ ใช้เวลาประมาณ 30 นาทีในการฟื้นฟูความดันโลหิตให้มากกว่าร้อยละ 90 ของค่าพื้นฐาน ก็ถือว่าการช่วยชีวิตสำเร็จแล้ว [3] ดึงเข็ม trocar ดึงหลอดเลือดแดงตีบและเย็บแผล หลังจากที่หนูตื่นแล้ว พวกมันก็กลับไปที่กรงเพื่อสังเกตการณ์ และพวกมันก็มีอาหารและน้ำให้กินฟรี 24 ชั่วโมงหลังจากการช่วยชีวิต หนูถูกทำให้หมดความรู้สึกด้วย pentobarbital sodium (50 มก./กก.) โดยการฉีดเข้าช่องท้อง การผ่าตัดส่องกล้อง และเลือด 5 มล. ถูกเก็บจาก Vena Cava ที่ด้อยกว่า หนูถูกฆ่าทันทีและนำไตด้านซ้ายและขวาออกเพื่อใช้งาน

1.2.2 การจัดกลุ่มและการบริหารสัตว์ของสัตว์ สุ่มหนู 30 ตัว แบ่งเป็นกลุ่มทำศัลยกรรมหลอก กลุ่มช่วยฟื้นคืนชีพ (กลุ่มทดลอง) และกลุ่ม CTG โดยมีหนู 10 ตัวในแต่ละกลุ่ม

กลุ่มทดลองถูกฉีดเข้าช่องท้องด้วยน้ำเกลือปกติ 3 มล. 2 ชั่วโมงก่อนปล่อยเลือด ในCTGกลุ่ม, ให้ CTG 2 ชั่วโมงก่อนปล่อยเลือดของหนู และยาถูกฉีดเข้าไปในช่องท้องที่ขนาดยา 400 มก./กก. กลุ่มปฏิบัติการเสแสร้งได้รับการดมยาสลบ การผ่าตัดส่องกล้อง และการแยกตำแหน่งของหลอดเลือดแดงตีบและรอยเย็บแผล ฯลฯ เท่านั้น ไม่มีการเจาะเลือดและการช่วยชีวิต และส่วนที่เหลือเหมือนกับกลุ่มทดลอง

1.3 ตัวชี้วัดและวิธีการทดสอบ

1.3.1 การตรวจครีเอตินินในเลือด (Cr), ยูเรียไนโตรเจน (BUN), cystatin C Cr, BUN และ cystatin C จะถูกกำหนดโดยห้องปฏิบัติการของโรงพยาบาลของเรา Cystatin C เป็นตัวบ่งชี้ภายในของการเปลี่ยนแปลงของอัตราการกรองของไต เมื่อการทำงานของไตบกพร่อง อัตราการกรองของไตจะลดลงและความเข้มข้นของ cystatin C ในเลือดจะเพิ่มขึ้นมากกว่า 10 เท่า ความแม่นยำในการวินิจฉัยของ cystatin C นั้นดีกว่าของ creatinine ในซีรัมอย่างมีนัยสำคัญ

1.3.2 การหาอัตราการตายของเซลล์แบบอะพอพโทซิส Flow cytometry ถูกใช้เพื่อตรวจหาอัตราการตายของเซลล์ไต นำไตมาสับด้วยใบมีด เพิ่ม PBS เล็กน้อยแล้วโอนไปยังหลอดทดลอง เพิ่มทริปซิน 0.3 เปอร์เซ็นต์สำหรับการย่อยอาหารในอ่างน้ำ 37 องศา และฟักเป็นเวลา 20 นาที เมื่อสารในหลอดทดลองขุ่น ให้เติม PBS สองเท่าเพื่อหยุดการย่อย กรองด้วยตาข่ายไนลอน 300 เมช ทิ้งสิ่งเจือปน และใช้เครื่องหมุนเหวี่ยงที่อุณหภูมิต่ำ เครื่องปั่นเหวี่ยงที่อุณหภูมิ 1500 กรัม/วินาที สำหรับ 5 นาที ทิ้ง supernatant ปรับความเข้มข้นของเซลล์เป็น 1 × 106 ~ 1.5 × 106 / ml ใช้สารแขวนลอยของเซลล์ด้านบน 0.4 ml และเพิ่ม Rhodamin 10 ul / ml123 0 ．4 ml บ่มใน a อ่างน้ำ 37 องศาป้องกันแสง ปิดหลอดทดลอง ล้างด้วย PBS สองครั้งหลังจากผ่านไป 30 นาที จากนั้นปั่นแยกที่ 1500 g/s เป็นเวลา 5 นาที ทิ้งส่วนลอยเหนือตะกอน แล้วล้างอีกครั้งด้วยวิธีเดียวกัน เติม PI 0.4 มล. ย้อมเป็นเวลา 15 นาที และตรวจสอบเปอร์เซ็นต์ของเซลล์ปกติ เซลล์ตาย และเซลล์ apoptotic ในไต จากความสัมพันธ์ของสีย้อมทั้งสองชนิดนี้ในเซลล์ประเภทต่างๆ เป็นที่ทราบกันดีอยู่แล้วว่ามีเพียงเซลล์สี PI เท่านั้นที่เป็นเซลล์ที่ตายแล้ว มีเพียงเซลล์สี Rhodamin123 เท่านั้นที่เป็นเซลล์ที่มีชีวิต และเซลล์สีทั้งสองเป็นเซลล์อะพอพโทติก

1.3.3 Enzyme-linked immunoassay (ELISA) ใช้เพื่อตรวจหาการแสดงออกของ XI-AP ในเนื้อเยื่อไตของหนู ไตของแต่ละกลุ่มถูกถ่ายและเนื้อเยื่อไตสดได้รับการรักษาด้วยทิชชู่ไลเสต ปั่นแยกที่ 1500 กรัม/วินาทีในเครื่องหมุนเหวี่ยงที่อุณหภูมิต่ำเป็นเวลา 5 นาที ใช้ supernatant และดำเนินการตามคำแนะนำของ XI-AP ELISA Kit Shanghai Jiaoda Fenghe Technology Co., Ltd. รับผิดชอบการทดสอบ

1.4 การประมวลผลทางสถิติ

ข้อมูลทั้งหมดได้รับการวิเคราะห์ทางสถิติโดยใช้ซอฟต์แวร์ SPSS170 และข้อมูลถูกแสดงเป็นค่าเฉลี่ย±ส่วนเบี่ยงเบนมาตรฐาน (x ± s) และ P<0.05 indicated="" that="" the="" difference="" was="" statistically="">

ซิสแทนเช่ โททัล ไกลโคไซด์

2 ผลลัพธ์

2.1 ดัชนีการทำงานของไต Cr, BUN, Cystatin C การเปรียบเทียบ Cr, BUN, Cystatin C ในกลุ่มทดลองมีค่าสูงกว่ากลุ่มปฏิบัติการหลอกอย่างมีนัยสำคัญ (P<0.01), indicating="" that="" the="" rat="" kidney="" i/r="" model="" was="" prepared="">

เปรียบเทียบกับกลุ่มทดลอง ค่า Cr, BUN และ Cystatin C ในCTGกลุ่มลดลงอย่างมีนัยสำคัญ และความแตกต่างมีนัยสำคัญทางสถิติ (P<0.01). the="" results="" are="" shown="" in="" table="">

ตารางที่ 1 การเปรียบเทียบดัชนีการทำงานของไต Cr, BUN และ Cystatin C ของหนูในแต่ละกลุ่ม (x ± s)

หมายเหตุ: เมื่อเปรียบเทียบกับกลุ่มปฏิบัติการเสแสร้ง P＜{{0}}.01; เทียบกับกลุ่มทดลอง bP＜0.01

2.2 อัตราการตายของเซลล์ไตและการแสดงออกของ XIAP ในเนื้อเยื่อไต มีเซลล์เพียงไม่กี่เซลล์ในเนื้อเยื่อไตของกลุ่มปฏิบัติการหลอกที่ได้รับการตายของเซลล์

จำนวนอะพอพโทซิสในกลุ่มทดลองเพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ และความแตกต่างมีนัยสำคัญทางสถิติเมื่อเปรียบเทียบกับกลุ่มปฏิบัติการหลอก (P<0.01); the="" number="" of="" apoptosis="" in="" the="" ctg="" group="" was="" decreased="" compared="" with="" the="" experimental="" group,="" and="" the="" difference="" was="" statistically="" significant="" (p=""><0.01)>

กลุ่มปฏิบัติการหลอกลวงมีการแสดงออก XIAP ที่อ่อนแอเท่านั้น ในขณะที่กลุ่มทดลองมีการแสดงออก XIAP เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ (P<0.01). compared="" with="" the="" experimental="" group,="" the="" ctg="" group="" can="" significantly="" increase="" the="" expression="" of="" xiap=""><0.05). the="" results="" are="" shown="" in="" table="">

ตารางที่ 2 การเปรียบเทียบอัตราการตายของเซลล์อะพอพโทซิสและการแสดงออกของ XIAP ของเซลล์ไตของหนูในแต่ละกลุ่ม (x± s)

หมายเหตุ: เปรียบเทียบกับกลุ่มปฏิบัติการหลอกลวง aP＜{{0}} 01; เมื่อเปรียบเทียบกับกลุ่มทดลอง b P＜0 05, cP<0.>

3 การอภิปราย

กลไกของการบาดเจ็บที่ไต I/R นั้นซับซ้อนมาก เป็นกระบวนการทางพยาธิวิทยาที่เกิดขึ้นจากหลาย ๆ วิถีทางภายใต้การกระทำของปัจจัยต่าง ๆ เช่น แคลเซียมไอออนเกิน ความเสียหายของลิพิด เปอร์ออกซิเดชัน อะพอพโทซิส และเนื้อร้าย โดยที่ caspase ที่เกิดภายใน apoptosis ขึ้นกับ Caspase เป็นหนึ่งในรูปแบบหลักของเยื่อบุผิวท่อไต ความเสียหายของเซลล์ที่เกิดจากการบาดเจ็บของไต I/R [4] สารยับยั้งกลุ่มโปรตีนอะพอพโทซิส (IAP) เป็นตัวยับยั้งแคสเปสเพียงชนิดเดียวที่พบในเซลล์ของสัตว์เลี้ยงลูกด้วยนม ซึ่งสามารถป้องกันการเกิดอะพอพโทซิสได้อย่างมีประสิทธิภาพ XIAP เป็นสารยับยั้งแคสเปสที่แข็งแรงที่สุดในตระกูล IAP ซึ่งสามารถยับยั้งการตายของเซลล์ที่เกิดจากสิ่งเร้าทางพยาธิวิทยาที่หลากหลายและให้ผลในการป้องกันอวัยวะที่เสียหาย [5]

ในปัจจุบัน วิธีการสร้างแบบจำลองของสัตว์ที่ได้รับบาดเจ็บของไตโดย I/R ส่วนใหญ่คือการเอาไตข้างหนึ่งออกและหนีบอีกด้านหนึ่งของขั้วไตหรือหลอดเลือดแดงไต [6] เพื่อจำลองสถานะของการปลูกถ่ายไต ผู้เขียนใช้แบบจำลองช็อก/การช่วยชีวิตในการศึกษานี้ ซึ่งใกล้เคียงกับกระบวนการทางพยาธิสรีรวิทยาของการกลับเป็นเลือดขาดเลือดจากระบบที่เกิดขึ้นในอาการช็อกจากบาดแผลทางคลินิก ในการทดลองนี้ เลือด BUN, Cr และ cystatin ของหนูแรท SD ปริมาณ C เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญและการทำงานของไตบกพร่องอย่างรุนแรง เป็นแบบจำลองสัตว์ในอุดมคติสำหรับการศึกษาการบาดเจ็บของไต I/R

CTG เป็นส่วนประกอบทางยาที่สำคัญของการแพทย์แผนจีนCistanche. Cistancheซึ่งมีความอบอุ่นในธรรมชาติ มีรสหวานและเค็ม เป็นเส้นเมอริเดียนของไตและลำไส้ใหญ่ และเดิมมีอยู่ใน Materia Medica ของ Shennong "Ben Jing" พูดว่า: "รักษาห้าแรงงานและเจ็ดบาดเจ็บ บำรุงตรงกลาง บำรุงห้าอวัยวะภายใน เสริมสร้างหยิน และบำรุงแก่นแท้และชี่" อีกด้วย."Cistancheใช้ในประเทศของฉันมาสองพันปีแล้ว เป็นอันดับหนึ่งในสูตรเพิ่มความแข็งแรงในอดีต และเป็นอันดับสองรองจากโสมในสูตรบำรุงCistancheสามารถปรับปรุงการทำงานทางเพศ ควบคุม neuroendocrine และปรับปรุงการทำงานของภูมิคุ้มกันของร่างกาย สารต้านอนุมูลอิสระ, ส่งเสริมการเผาผลาญของวัสดุ, ปกป้องกล้ามเนื้อหัวใจขาดเลือดและการทำงานอื่นๆ. เป็นส่วนประกอบยาหลักของCistanche, CTG มีฟังก์ชั่นมากมาย งานวิจัยเกี่ยวกับสมองischemia-reperfusionแบบอย่าง

จากการศึกษาพบว่าCTGสามารถลดกรดอะมิโน excitatory ในเนื้อเยื่อสมองหลังขาดเลือด-reperfusion และปกป้องเนื้อเยื่อสมองของหนูแรท [7] CTG มีฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระในเนื้อเยื่อของเมาส์และมีผลในการป้องกันภาวะขาดออกซิเจนในสมองเฉียบพลันในหนูและความเสียหายของกล้ามเนื้อหัวใจในหนู [8] CTG สามารถปรับปรุงพฤติกรรมทางระบบประสาทของหนูทดลองของพาร์กินสันได้อย่างมีนัยสำคัญ และยับยั้งการลดจำนวนของเซลล์ประสาทโดปามีนใน substantia nigra [9] ยับยั้งการสะสมของ -amyloid peptide ในสมอง และยับยั้งการตายของเซลล์สมอง CTG ช่วยเพิ่มความสามารถในการเรียนรู้และความจำของหนูที่เป็นโรคอัลไซเมอร์ -amyloid peptide อย่างมีนัยสำคัญ [10] การศึกษานี้แสดงให้เห็นว่าหลังจากใช้การปรับสภาพ CTG เนื้อหา BUN, Cr และ cystatin C ในเลือดของหนูแรท SD ลดลงอย่างมีนัยสำคัญ และความเสียหายของการทำงานของไตลดลง CTG เพิ่มโปรตีน XIAP ที่ยับยั้งการตายของเซลล์ในเนื้อเยื่อไตของการบาดเจ็บของ I/R และปิดกั้นเซลล์ การเกิดอะพอพโทซิสมีบทบาทในการป้องกันการทำลายไต

อ้างอิง

[1] Cassis P, Azzollini N, Solini S และอื่น ๆ ทั้งดาร์บีโพเอตินอัลฟ่าและคาร์บามิเลเตดเอริโทรพอยอิตินป้องกันความผิดปกติของการปลูกถ่ายไตอันเนื่องมาจากการขาดเลือด/การกลับเป็นไปของหนูในหนู ［J］． การปลูกถ่าย, 2011, 92 (3): 271-279.

[2] West T, Stump M, Lodygensky G และอื่น ๆ การขาดสารยับยั้ง X-linked ของโปรตีน apoptosis นำไปสู่การตายของเซลล์และการสูญเสียเนื้อเยื่อที่เพิ่มขึ้นหลังจากได้รับบาดเจ็บที่สมองของทารกแรกเกิด［J］． ASN Neuro, 2009, 1 (1). PII: e00004. ดอย:10. 10421AN20090005.

[3] Fu X, Tian H, Wang D และอื่น ๆ การบาดเจ็บและความล้มเหลวของอวัยวะหลายอย่างเกิดจากการช็อกและการกลับมาของเลือดอีกครั้งหลังจากบาดแผลกระสุนปืน［J］． J Trauma, 1996, 40 (3 Suppl): S135-139.

[4] ปดานิลัม บีเจ. การตายของเซลล์ที่เกิดจากการบาดเจ็บของไตเฉียบพลัน: มุมมองเกี่ยวกับการมีส่วนร่วมของการตายของเซลล์และเนื้อร้าย［J］． Am J Physiol Renal Physiol, 2003, 284 (4): F608-F627.

[5] Galbán S, Hwang C, Rumble JM และอื่น ๆ ผลต่อเซลล์ของ IAP ที่เปิดเผยโดยตัวร้ายโมเลกุลขนาดเล็ก［J］． Biochem J, 2009, 417 (3): 765-771.

[6] Wu Jianguo, Zhang Dan, Wu Xinsheng, etc., การก่อตั้งและประสบการณ์ของแบบจำลองการบาดเจ็บที่ไตแบบเฉียบพลันของการขาดเลือดขาดเลือดในหนู [J] ข้อมูลทางการแพทย์: คู่มือการผ่าตัด, 2007, 20 (12): 1103-1105.

[7] จูเจิ้ง. ผลของ Cistanche Glycosides ต่อกรดอะมิโนที่ถูกกระตุ้นในเนื้อเยื่อสมองของหนูหลังสมองขาดเลือดขาดเลือดและเลือดกลับคืนสู่สภาพเดิม [J] Anhui Medicine, 2010, 14 (12): 1393 -1394.

[8] Julia Y, Wang XW, Wubuli AS และอื่น ๆ ผลการป้องกันของ glycosides ทั้งหมดของ cistanche deserticola ต่อการขาดออกซิเจน ［J］． ตัวแทนชิน Pharm, 2003, 20 (1): 73-76.

[9] Li Wenwei, Yang Ru, Cai Dongfang, และคณะ ผลการป้องกันของ glycosides ทั้งหมดของ cistanche ต่อเซลล์ประสาท dopaminergic ใน substantia nigra ของหนูโมเดลโรค MPTP Parkinson

[10] Liu Fengxia, Wang Xiaowen, Luo Lan เป็นต้น ผลกระทบและกลไกของ glycosides ทั้งหมดของ cistanche ต่อการเรียนรู้และความจำของโมเดลเมาส์โรคอัลไซเมอร์ที่เกิดจาก -amyloid peptide [J] แถลงการณ์เภสัชวิทยาจีน พ.ศ. 2549 22 (5): 595-599