การเปลี่ยนแปลงในระดับของฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์ กิจกรรมต้านอนุมูลอิสระ และลักษณะคุณภาพอื่น ๆ ในชิ้น Cistanche Deserticola โดยการประมวลผลด้วยไอน้ำ

ซิสตานเช่ เดซินิโคลา Y. C. MA(Orobanchaceae) หรือที่เรียกกันทั่วไปว่า "โสมทะเลทราย" มีการใช้กันมานานเป็นยาบำรุงในจีนและญี่ปุ่น ก้านเนื้อถูกตัดเป็นชิ้นเพื่อรักษาโรคต่างๆ รวมถึงความอ่อนแอ ภาวะมีบุตรยากในสตรี ความรู้สึกเย็นบริเวณเอวและหัวเข่า และอาการท้องผูกในผู้สูงอายุ ในช่วงไม่กี่ปีที่ผ่านมา มีงานวิจัยหลายชิ้นเปิดเผยประสิทธิผลในแบบจำลองการทดลองที่เกี่ยวข้องกับความผิดปกติทางระบบประสาท โดยเฉพาะโรคอัลไซเมอร์และโรคพาร์กินสันตลาดอาหารเพื่อสุขภาพเริ่มให้ความสนใจผลิตภัณฑ์เสริมอาหารจากธรรมชาติที่มีประโยชน์นี้มากขึ้น ไวน์และชาที่ทำจากก้านฉ่ำเป็นอาหารเพื่อสุขภาพยอดนิยมที่ช่วยบรรเทาความเหนื่อยล้าและเพิ่มการเรียนรู้และความจำค. เดสสิโคลาเป็นแหล่งที่อุดมไปด้วยฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์ โพลีแซ็กคาไรด์ และน้ำตาลที่ละลายน้ำได้ ซึ่งส่วนใหญ่แสดงสารต้านอนุมูลอิสระป้องกันระบบประสาท,ป้องกันตับ,เสริมสร้างภูมิคุ้มกันยาระบายและต่อต้านริ้วรอย ผลกระทบซึ่งกิจกรรมต้านอนุมูลอิสระถือเป็นพื้นฐานของการดำเนินการทางเภสัชวิทยาอื่น ๆ Echinacoside และ Acteoside เป็นเครื่องหมายตัวแทนสำหรับการควบคุมคุณภาพของ Cistanches Herba ในตำรับยาจีน (ฉบับปี 2015) เนื่องจากความอุดมสมบูรณ์ที่โดดเด่น ความจำเพาะของสกุล และฤทธิ์ทางชีวภาพที่โดดเด่น การกำหนดสารสกัดที่ละลายได้ในเอธานอลเจือจางยังรวมอยู่ในการควบคุมคุณภาพของ Cistanches Herba อีกด้วย มีรายงานว่า Cistanoside A, isoacteoside และ 2′-acetylacteoside มีมากมายในค. เดสสิโคลา. 

สารสกัดจากเพชรธรรมชาติ อาหารเสริมต้านความเหนื่อยล้า PHGS75% ECH 30% ACT 12%

ที่เพิ่มขึ้นความต้องการ C. Deserticola ได้กระตุ้นการเพาะปลูกอย่างมาก C. Deserticola เป็นสมุนไพรปรสิตยืนต้นซึ่งส่วนใหญ่เติบโตในพื้นที่แห้งแล้งหรือกึ่งแห้งแล้งทางตะวันตกเฉียงเหนือของจีน ทันทีหลังการเก็บเกี่ยว ลำต้นดิบที่มีน้ำตาลสูงและมีน้ำหนักมากเหล่านี้จะต้องทำให้แห้ง เพื่อป้องกันการสูญเสียสารอาหารและการเน่าเสีย ก้านสดมักประกอบด้วยน้ำ 75–85% และควรลดระดับน้ำให้ต่ำกว่า 10% เพื่อการดูแลรักษา ในพื้นที่ที่ผลิต Cistanche ส่วนใหญ่ ก้านสดทั้งหมดจะถูกวางไว้ในทุ่งโล่งเป็นเวลาประมาณ 2 เดือนสำหรับกระบวนการทำให้แห้งเบื้องต้น วัสดุที่แห้งแล้วจะถูกขนส่งไปยังโรงงาน แช่น้ำ หั่นเป็นชิ้น แล้วทำให้แห้งอีกครั้ง ความล่าช้าในการประมวลผลชิ้นอาจเป็นผลมาจากเกษตรกรที่มีการศึกษาไม่ดีหรือมีอุปกรณ์ครบครัน อย่างไรก็ตามปัญหาหลักคือการขาดความรู้และเทคโนโลยีเพื่อทำให้กระบวนการผลิตมีประสิทธิภาพ

การใช้ความร้อนสูงถูกนำมาใช้กันอย่างแพร่หลายในผักและผลไม้ และสามารถยับยั้งการเจริญเติบโตของจุลินทรีย์และยืดอายุการเก็บรักษาได้ อย่างไรก็ตาม มันยังอาจทำให้เกิดการเปลี่ยนแปลงรูปลักษณ์และองค์ประกอบของสารอาหารอีกด้วย ส่วนประกอบที่ออกฤทธิ์ทางชีวภาพบางอย่าง และกิจกรรมทางเภสัชวิทยา เช่น ฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระ แสดงให้เห็นว่ามีสมุนไพรเพิ่มขึ้นหลังจากการนึ่ง ดังนั้นการนึ่ง C. Deserticola อาจช่วยเพิ่มประโยชน์ต่อสุขภาพหลายประการ มีรายงานการใช้การนึ่งหรือการลวกกับ C. Deserticola ที่ตัดสดเพื่อเพิ่มปริมาณของเอไคนาโคไซด์และแอคทีโอไซด์.19,20) อย่างไรก็ตาม ไม่มีการตรวจสอบโดยละเอียดเพื่อเปรียบเทียบการเปลี่ยนแปลงของสารประกอบออกฤทธิ์ทางชีวภาพและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของ C. Deserticola ที่หั่นสดในระหว่างกระบวนการนึ่ง การศึกษานี้จึงมีวัตถุประสงค์เพื่อตรวจสอบผลของเวลานึ่ง (1, 3, 5, 7 นาที) ต่อปริมาณฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์ โพลีแซ็กคาไรด์ น้ำตาลที่ละลายน้ำได้ สารสกัดที่ละลายได้ในเอทานอลเจือจาง การลดน้ำหนัก และคุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระ ในชิ้น C. Deserticola เมื่อเปรียบเทียบกับกลุ่มอื่นสามกลุ่ม (สด แห้งในเตาอบโดยตรง ลวก)

การทดลอง

เคมีภัณฑ์

สารเคมีเกรดเชิงวิเคราะห์: เมทานอล เอทานอล ดี-กลูโคส กรดซัลฟิวริก โพแทสเซียมไฮโดรเจนฟอสเฟต และโพแทสเซียมไดไฮโดรเจนฟอสเฟตโมโนไฮเดรตได้มาจาก Beijing Chemical Works (ปักกิ่ง ประเทศจีน) ซื้อกรดฟอร์มิกและฟีนอลจาก Sinopharm Chemical Reagent Co. (เซี่ยงไฮ้, จีน) ซื้อเมทานอลเกรด HPLC จาก Fisher Scientific (โตรอนโต แคนาดา) ได้รับน้ำปราศจากไอออนโดยใช้ระบบ Milli-Q (Millipore Corp., Bedford, MA, USA) 2,2-ไดฟีนิล-1-พิคริลไฮดราซิล (DPPH) ได้มาจาก Alfa Aesar (วอร์ดฮิลล์, แมสซาชูเซตส์, สหรัฐอเมริกา) และ 2,2′-azobis(2-อะมิโน-โพรเพน) ไดไฮโดรคลอไรด์ (AAPH ) โดย Adamas-beta (เซี่ยงไฮ้ จีน) 6-เมทอกซี-2,5,7,8- เตตระเมทิลโครเมน-2-กรดคาร์บอกซิลิก (โทรลอกซ์), 2,6-ได-เทอร์ตบิวทิล-พี-ครีซอล (BHT) และฟลูออเรสซิน (เกลือโซเดียม) (FL) ได้มาจาก TCI (โตเกียว, ญี่ปุ่น) และชุดทดสอบความสามารถต้านอนุมูลอิสระทั้งหมด (T-AOC) จากสถาบันวิศวกรรมชีวภาพหนานจิง Jiancheng (หนานจิง, จีน) มาตรฐานสำหรับแอคทีโอไซด์ (111530-200706) และเอชินาโคไซด์ (111670-200503) ซื้อจากสถาบันควบคุมอาหารและยาแห่งชาติ (ปักกิ่ง จีน) มาตรฐานสำหรับ2′-อะซิติแลคโตไซด์, cistanoside A และ isoacteoside ถูกนำเสนอเป็นของขวัญโดย Dr. Zhiguo Ma ความบริสุทธิ์ของสารประกอบอ้างอิงแต่ละตัวถูกกำหนดให้มากกว่า 98% โดยการทำให้พื้นที่พีคเป็นมาตรฐานที่ตรวจพบโดยตัวตรวจวัดอาร์เรย์ไดโอด HPLC (DAD)

การกำหนดวัสดุและการสูญเสียน้ำหนัก

เก็บตัวอย่างในฤดูใบไม้ผลิวันที่ 2{{10}}14 ในไร่ Ningxia ของ Cistanches Herba (106.08 องศา N, 38.24 องศา E, 1124.2 ม. ) ในประเทศจีน และระบุโดยพวกเราคนหนึ่ง (ศาสตราจารย์ จุน เฉิน) ตัวอย่างบัตรกำนัลถูกฝากไว้ที่สถาบันการพัฒนาพืชสมุนไพร, สถาบันวิทยาศาสตร์การแพทย์จีน, วิทยาลัยการแพทย์ปักกิ่งยูเนี่ยน สุ่มเก็บลำต้นของ C. Deserticola ประมาณ 3 กิโลกรัมและล้างด้วยน้ำสะอาด ตัดส่วนของช่อดอกออกด้วยมีดเซรามิก จากนั้นตัดก้านเป็นชิ้นขนาด 3 มม. ชิ้นทุกๆ 100 กรัมถูกวัดเป็นน้ำหนัก (W0) ในรูปแบบการจำลอง มีการประเมินการทดลองเจ็ดครั้งโดยมีสามซ้ำต่อการรักษา สำหรับการนึ่ง ให้นำชิ้นสี่ชิ้นใส่ในไอน้ำอุณหภูมิ 93 องศาเป็นเวลา 1, 3, 5 หรือ 7 นาที สำหรับการลวก ทรีทเมนต์หนึ่งถูกใส่ในน้ำอุณหภูมิ 96 องศาเป็นเวลา 5 นาที ชิ้นเนื้อสดและแห้งด้วยเตาอบโดยตรงคืออีกสองวิธีการรักษาที่รายงานในการทดลองนี้ ชั่งน้ำหนักชิ้นที่ผ่านการบำบัดแล้ว (W1) และทำให้แห้งที่อุณหภูมิ 60 องศาในเตาอบ จากนั้นนำชิ้นแห้งมาชั่งน้ำหนักอีกครั้ง (W2) บดและบดให้ละเอียด (65 เมช) ผงตัวอย่างถูกเก็บไว้ในถุงสูญญากาศที่อุณหภูมิ -20 องศาจนถึงวันทำการวิเคราะห์ การลดน้ำหนักคำนวณได้ดังนี้ การลดน้ำหนักหลังการใช้ความร้อนสูง (%)=[(W0−W1)/ W0]×100 น้ำหนักที่ลดลงหลังการอบแห้งด้วยเตาอบ (%)=[(W0 −W2)/W0]× 100 โดยที่ W0 คือน้ำหนักเริ่มต้น และ W1 และ W2 คือน้ำหนักที่วัดได้หลังจากการอบชุบด้วยความร้อนสูงและการทำให้แห้งในเตาอบ ตามลำดับ

ฟีนิลธานอยด์ไกลโคไซด์และคุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระ

การสกัดตัวอย่าง

ตัวอย่างที่เป็นผง {{0}}.5- กรัมถูกสกัดด้วยสารละลายน้ำเมทานอล 60% 25 มล. โดยอัลตราซาวนด์ KQ-250DE (Kunshan Ultrasonic Instrument Co., Jiangsu, China) ที่ 40 kHz, 200 W และ 40 องศา เป็นเวลา 30 นาที หลังจากการสกัด ตัวอย่างที่ผ่านการบำบัดจะถูกปั่นเหวี่ยงเป็นเวลา 10 นาทีที่ 4600×g (TD5; Hunan Herexi Instrument & Equipment Co., Hunan, China) ส่วนลอยเหนือตะกอนถูกกรองผ่านตัวกรองขนาดรูพรุน 0.45-µm สำหรับการวิเคราะห์ในภายหลัง

การหาปริมาณฟีนิลธานอยด์ไกลโคไซด์

การหาปริมาณเอไคนาโคไซด์, ซิสตาโนไซด์ เอ,แอกทีโอไซด์, ไอโซแอคทีโอไซด์ และ 2′-อะซิติแลกโอไซด์จากตัวอย่าง C. Deserticola ดำเนินการตามที่อธิบายโดย Ma และคณะ 21) โดยมีการแก้ไขบางอย่าง การวิเคราะห์ดำเนินการโดยใช้เครื่องมือ HPLC 2695–2996 (Waters Corp., Milford, MA, USA) โดยมีการตรวจติดตามการดูดกลืนแสงอัลตราไวโอเลตที่ 330 นาโนเมตร การแยกดำเนินการบนคอลัมน์ Merck Purospher® Star RP-C18 (250 มม.×4.6 มม., 5 µm) ทำที่ 30 องศา เฟสเคลื่อนที่ที่อัตราการไหล 1 มิลลิลิตร/นาทีประกอบด้วยตัวทำละลาย A (เมทานอล) และตัวทำละลาย B (0.1% กรดฟอร์มิกที่เป็นน้ำ, ปริมาตร/ปริมาตร) การชะล้างแบบไล่ระดับดำเนินการดังนี้: 28% A ({{30}}–10 นาที), 28–38% A (10–30 นาที), 38% A (30– 45 นาที) และปริมาตรการฉีดคือ 10 ไมโครลิตร สารละลายผสมที่มีสารมาตรฐานอ้างอิง 5 ชนิดถูกเตรียมโดยการละลายสารมาตรฐานอ้างอิงในเมทานอล 60% จนถึงความเข้มข้นสุดท้ายที่ 0.20 มก./มล. สำหรับเอชินาโคไซด์, 0.21 มก./มล. สำหรับแอกทีโอไซด์, 0.20 มก./มล. สำหรับ 2′-อะซิติแลคเตโอไซด์, 0.05 มก./ มล. สำหรับซิสตาโนไซด์ A และ 0.05 มก./มล. สำหรับไอโซแอคทีโอไซด์ จากนั้นจึงเจือจางสารละลายจนถึงความเข้มข้นที่แตกต่างกันเจ็ดระดับเพื่อสร้างเส้นโค้งการสอบเทียบ ความเข้มข้นของฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์ของตัวอย่างแสดงเป็นกรัม/กิโลกรัมของน้ำหนักสด (FW)

สารสกัดจาก CISTANCHE ธรรมชาติช่วยเพิ่มความจำ อาหารเสริม PHGS75% ECH 30% ACT 12%

การหาค่าความสามารถในการดูดกลืนแสงจากอนุมูลออกซิเจน (ORAC)

การทดสอบ ORAC ดำเนินการตามที่อธิบายโดย Huang และคณะ 22) พร้อมการปรับเปลี่ยนบางอย่าง สารต้านอนุมูลอิสระสังเคราะห์ BHT ถูกใช้เป็นตัวควบคุมเชิงบวก โดยสรุป สารสกัดตัวอย่างเจือจาง 25 ไมโครลิตรและ FL 160 ไมโครลิตรถูกผสมในไมโครเพลท 96- หลุม ของผสมถูกบ่มที่ 37 องศาเป็นเวลา 15 นาที ก่อนการเติม AAPH 20 ไมโครลิตร ตรวจสอบการเรืองแสงโดยใช้ 485 นาโนเมตร (การกระตุ้น) และ 520 นาโนเมตร (การปล่อย) ที่ช่วงเวลา 3- นาทีเป็นเวลา 72 นาทีโดยใช้ Fluoroskan Ascent FL (Thermo Scientific, Waltham, MA, USA) ใช้ Trolox (2.5–50.0 µmol/L) เป็นมาตรฐานอ้างอิง และผลลัพธ์แสดงเป็นไมโครโมลของ Trolox ต่อมวลของชิ้นสด µmol TE/g FW

การหาปริมาณ 2,2-ไดฟีนิล-1-พิคริลไฮดราซิลที่มีฤทธิ์กำจัดอนุมูลอิสระ (DPPH)

การทดสอบ DPPH ดำเนินการตามที่อธิบายโดย Goupy และคณะ 23) พร้อมการแก้ไขบางอย่าง สารต้านอนุมูลอิสระสังเคราะห์ BHT ถูกใช้เป็นตัวควบคุมเชิงบวก โดยสรุป สารสกัดตัวอย่างเจือจาง 1 มิลลิลิตรถูกผสมกับสารละลายเมทานอล DPPH 0.2 มิลลิโมล/ลิตร 1 มิลลิลิตร สารละลายถูกเก็บในที่มืดที่อุณหภูมิ 25 องศาเป็นเวลา 90 นาที จากนั้นวัดค่าการดูดกลืนแสงที่ 517 นาโนเมตร ใช้ Trolox (4.0–119.5 µmol/L) เป็นมาตรฐานอ้างอิง และผลลัพธ์แสดงเป็นไมโครโมลของ Trolox ต่อมวลของชิ้นสด µmol TE/g FW

การกำหนดคุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระของเฟอร์ริกรีดิวซ์ (FRAP)

การทดสอบ FRAP ดำเนินการโดยใช้ชุดทดสอบ T-AOC ตามคำแนะนำของผู้ผลิต

น้ำตาลที่ละลายน้ำได้และโพลีแซ็กคาไรด์

การเตรียมตัวอย่างน้ำตาลที่ละลายน้ำได้

ตัวอย่างที่เป็นผง 0.5- กรัมถูกสกัดด้วยสารละลายเอทานอล-น้ำ 80% 25 มล. โดยอัลตราซาวนด์ KQ-250DE ที่ 40 kHz, 150 W และ 80 องศาเป็นเวลา 30 นาที สารละลายสกัดชนิดแรกถูกกรองและเทลงในขวดวัดปริมาตรขนาด 50- มล. ตะกอนถูกสกัดซ้ำ และสิ่งกรองถูกรวมเข้ากับสารละลายสกัดตัวแรกในขวดปริมาตร 50- มล. และเติมสารละลายเอทานอลที่เป็นน้ำ 80% จนถึงเครื่องหมาย

จากนั้น สารละลายนี้ 1 มิลลิลิตรถูกปิเปตลงในหลอดแก้ว 10- มล. เพื่อระเหยเอธานอลในอ่างน้ำเดือด น้ำกลั่น (5 มล.) ถูกเติมเพื่อละลายสารตกค้าง จากนั้นจึงถ่ายโอนลงในขวดวัดปริมาตรขนาด 100- มล. และเติมน้ำกลั่นจนถึงเครื่องหมาย สุดท้าย สารละลายเจือจางนี้ 2 มิลลิลิตรใช้ในการหาน้ำตาลที่ละลายน้ำได้

การเตรียมตัวอย่างโพลีแซ็กคาไรด์

ตะกอนจากการสกัดน้ำตาลที่ละลายน้ำได้จะถูกทำให้แห้งในอากาศและสกัดด้วยน้ำกลั่น 25 มล. โดยอัลตราซาวนด์ KQ- 250DE ที่ 40 kHz, 150 W และ 80 องศาเป็นเวลา 30 นาที สารละลายสกัดชนิดแรกถูกกรองและเทลงในขวดปริมาตร 50- มล. ตะกอนถูกสกัดซ้ำ และสิ่งกรองถูกรวมเข้ากับสารละลายสกัดตัวแรกในขวดวัดปริมาตรขนาด 50- มล. และเติมน้ำกลั่นจนถึงเครื่องหมาย จากนั้น ปิเปตสารละลาย 5- มล. ของสิ่งนี้ลงในขวดวัดปริมาตร 50- มล. และเติมน้ำกลั่นจนถึงเครื่องหมาย สุดท้าย สารละลายเจือจางนี้ 2 มิลลิลิตรถูกใช้เพื่อกำหนดปริมาณโพลีแซ็กคาไรด์

การหาปริมาณน้ำตาลที่ละลายน้ำได้และโพลีแซ็กคาไรด์

การตรวจวัดน้ำตาลและโพลีแซ็กคาไรด์ที่ละลายน้ำได้ดำเนินการโดยใช้วิธีกรดฟีนอล-ซัลฟิวริก ตามที่ Wang และคณะอธิบายไว้ 24) เติมสารละลายฟีนอล 6% หนึ่งมิลลิลิตรลงในสารละลายตัวอย่าง 2 มล. แล้วผสมให้เข้ากัน จากนั้น เติมกรดซัลฟิวริกเข้มข้น 5 มล. อย่างรวดเร็วและเขย่าเป็นเวลา 5 นาที ของผสมถูกถ่ายโอนไปยังอ่างน้ำเดือดเป็นเวลา 15 นาทีและทำให้เย็นลงอย่างรวดเร็วจนถึงอุณหภูมิห้องเพื่อการตรวจจับอัลตราไวโอเลต การดูดกลืนแสงอัลตราไวโอเลตถูกตรวจสอบที่ 490 นาโนเมตรในเครื่องสเปกโตรโฟโตมิเตอร์ UV2550 (Shimadzu Co., เกียวโต, ญี่ปุ่น) น้ำกลั่นถูกใช้เป็นช่องว่าง ดี-กลูโคสแบบแอนไฮดรัสมาตรฐานอ้างอิงได้รับการชั่งน้ำหนักอย่างแม่นยำและละลายในน้ำกลั่นจนถึงความเข้มข้นสุดท้ายที่ 0.10 มก./มล. จากนั้นปิเปตสารละลายสต๊อก 1, 2, 3, 4, 5, 6 และ 7 มล. ลงในขวดวัดปริมาตร 10- มล. จำนวนเจ็ดขวด และเติมน้ำกลั่นจนถึงเครื่องหมาย จากนั้นสารละลายมาตรฐานที่มีความเข้มข้นต่างกันเจ็ดชนิดจะถูกนำมาใช้เพื่อสร้างเส้นโค้งการสอบเทียบ

เจือจางสารสกัดที่ละลายน้ำได้เอทานอล

ตัวอย่าง (4.0 กรัม) ได้รับการชั่งน้ำหนักอย่างแม่นยำเพื่อตรวจสอบสารสกัดที่ละลายได้ในเอธานอลเจือจาง ตามวิธีการที่อธิบายไว้ในเภสัชตำรับจีน (ฉบับปี 2015)25) ตัวอย่างที่เป็นผงได้รับการชั่งน้ำหนัก (W3) และสกัดด้วย สารละลายในน้ำเอทานอล 50% 100 มล. ในขวดทรงกรวย 250- มล. โดยเขย่าเป็นครั้งคราวเป็นเวลา 6 ชั่วโมงและปล่อยให้ยืนเป็นเวลา 18 ชั่วโมง สารละลายแบบแยกออกถูกกรองและของกรอง 20 มิลลิลิตรถูกระเหยจนแห้ง, ทำให้แห้งที่ 105 องศา เป็นเวลา 3 ชั่วโมง, และทำให้เย็นในเดซิกเคเตอร์ (ซิลิกา เจล) เป็นเวลา 30 นาที ในที่สุด ปริมาณก็ได้รับการชั่งน้ำหนักอย่างแม่นยำ (W4) ปริมาณสารสกัดที่ละลายได้ในเอธานอลเจือจางแสดงเป็น g/kg FW ของตัวอย่าง สารสกัดที่ละลายได้ในเอธานอลแบบเจือจางได้รับการคำนวณดังนี้: สารสกัดที่ละลายในเอทานอลแบบเจือจาง (g/kg FW)=[(W4×5)/W3]×(100−W5)×10 โดยที่ W3 คือน้ำหนักเริ่มต้น , W4 คือน้ำหนักที่วัดได้หลังการสกัด และ W5 คือน้ำหนักที่ลดลงหลังจากการอบแห้งด้วยเตาอบ (%)

การวิเคราะห์ทางสถิติ

เพื่อชี้แจงความแตกต่างระหว่างกลุ่มการรักษา การวิเคราะห์ความแปรปรวนแบบทางเดียวจึงถูกนำมาใช้โดยใช้ SPSS 130 (SPSS Inc., Chicago, IL, USA) ความแตกต่างถูกประเมินโดยใช้การทดสอบ Duncan โดยมีขีดจำกัดนัยสำคัญที่ 0.05 ข้อมูลถูกแสดงเป็นค่าเบี่ยงเบนมาตรฐาน (SD) (n=3)

ผลลัพธ์และการอภิปราย

ลดน้ำหนัก

น้ำหนักของชิ้น C. Deserticola เป็นตัวกำหนดมูลค่าทางการค้าในตลาดสมุนไพรโดยตรง ดังที่แสดงในตารางที่ 1 การสูญเสียน้ำหนักของ C. Deserticola ได้รับการวิเคราะห์หลังจากการอบชุบด้วยความร้อนสูงและการทำให้แห้งในเตาอบ พบว่าระดับการสูญเสียน้ำหนักลดลงเมื่อชิ้นเนื้อผ่านการอบแห้งในเตาอบโดยตรง แทนที่จะนึ่งหรือลวก ตัวอย่างที่ลวกมีระดับการลดน้ำหนักสูงสุด ตัวอย่างที่นึ่งมีระดับการสูญเสียน้ำหนักที่สูงขึ้นและใช้เวลานึ่งนานขึ้น การนึ่งเป็นเวลาเจ็ดนาที ซึ่งเป็นเวลาที่นานที่สุดในการคงรูปร่างของชิ้นสดแสดงให้เห็นอย่างมีนัยสำคัญ (หน้า<0.05) higher levels of weight loss after oven-drying than 5 min of steaming. Since phenylethanoid glycosides had been detected in the hot water (data not shown), it suggested that blanching/steaming promoted more water-soluble compounds to be dissolved in the hot water. Concerning weight loss after high-heat exposure, samples steamed for 1 minute exhibited extremely low weight loss. Therefore, 1 min of steaming was too short to make the Cistanche tissue brittle, so it was less able to release bioactive compounds (such as phenylethanoid glycosides) during the subsequent extraction procedure, compared with samples that had been steamed longer.

ฟีนิลธานอยด์ไกลโคไซด์

ระดับของเอไคนาโคไซด์, ซิสตาโนไซด์ A, แอกทีโอไซด์, ไอโซแอคทีโอไซด์ และ 2′-อะซิติแลกทีโอไซด์ในชิ้นของ C. Deserticola ที่ผ่านการประมวลผลโดยวิธีการต่างๆ จะแสดงไว้ในรูปที่ 1 ตัวอย่างที่นึ่งเป็นเวลา 7 นาที มีเอไคนาโคไซด์ 2.16 กรัม/กิโลกรัม FW และ {{6} }.29 กรัม/กิโลกรัม FW ของซิสตาโนไซด์ A เพิ่มขึ้น −140 และ −6 เท่า ตามลำดับ เมื่อเทียบกับชิ้นสด ปริมาณฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์เพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็วเมื่อตัวอย่างสดได้รับการบำบัดด้วยความร้อนและทำให้แห้งสูง โดยเฉพาะแอกทีโอไซด์, ไอโซแอคทีโอไซด์ และ 2′-อะซิติแลกทีโอไซด์ในขณะที่ตรวจไม่พบในตัวอย่างสด สาเหตุหนึ่งที่เป็นไปได้อาจเป็นเพราะการสลายตัวของฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์โดยเปอร์ออกซิเดสและ - กลูโคซิเดส เอนไซม์เหล่านี้จะไม่ทำงานในตัวอย่างที่แห้งด้วยอุณหภูมิสูงและมีปริมาณน้ำลดลง ส่งผลให้มีฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์ยังคงอยู่ในสารสกัดในระดับสูง นอกจากนี้ฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์ยังเป็นสารประกอบฟีนอลิกซึ่งจะถูกสังเคราะห์ในพืชสดเพื่อตอบสนองต่อความเครียดจากอุณหภูมิสูงและการสูญเสียความชื้น

ถังเก็บน้ำธรรมชาติ TUBULOSA ปรับปรุงการทำงานของไต PHGS75% ECH 30% ACT 12%

มีรายงานทั้งการนึ่งและการลวก C. Deserticola ที่ตัดสดเพื่อเพิ่มปริมาณเอคินาโคไซด์และแอคทีโอไซด์19,20) อย่างไรก็ตาม ในการศึกษาปัจจุบัน การลวกให้ผลอย่างมีนัยสำคัญ (p<0.05) lower concentration of acteoside and cistanoside A than drying directly. Regarding the total concentration of the five phenylethanoid glycosides, the blanched samples were still lower than the directly oven-dried ones (1.73, 2.35 g/kg FW, respectively). Slices steamed for 5 and 7 min contained significantly (p<0.05) higher amounts of acteoside, isoacteoside, and 2′-acetylacteoside than directly oven-dried samples. In general, the highest levels of phenylethanoid glycosides were found in the steamed samples, suggesting that the above-mentioned pharmacological activities produced by ฟีนิลธานอยด์ไกลโคไซด์ในชิ้น C. Deserticola อาจได้รับการปรับปรุงให้ดีขึ้นโดยการนึ่ง

นอกจากนี้ เราพบว่าเวลาในการนึ่งมีความสำคัญอย่างยิ่งในการกำหนดเนื้อหาของฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์ เอชินาโคไซด์ ซิสตาโนไซด์ A แอกทีโอไซด์ และไอโซแอคทีโอไซด์มีแนวโน้มเพิ่มขึ้นที่คล้ายกันในระหว่างกระบวนการนึ่ง ซึ่งเพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็ว (ที่ 1, 3 นาที) และไปถึงระดับสูงสุดที่ 7 นาที ไม่พบการเปลี่ยนแปลงที่มีนัยสำคัญในฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์สี่ชนิดที่กล่าวข้างต้นในระหว่างกระบวนการนึ่งจาก 3 ถึง 7 นาที ในทางตรงกันข้าม 2′-acetylacteoside เพิ่มขึ้นอย่างมีนัยสำคัญ (หน้า<0.05) with processing time. Notably, the levels of phenylethanoid glycosides in slices steamed for 1 min were significantly (p<0.05) lower than in directly oven-dried slices, except isoacteoside. Therefore, 1 min steaming of 3-mm fresh-cut C. deserticola was not long enough to inactivate the above-mentioned enzymes. Higher total levels of the five phenylethanoid glycosides were observed when the slices were steamed for 5 and 7 min (3.20, 3.52 g/kg FW, respectively) rather than directly oven drying. Steaming from 5 to 7 min more effectively promoted the extraction of phenylethanoid glycosides from C. deserticola, leading to a higher level of phenylethanoid glycosides in the extracts.

รูปที่ 1 ความเข้มข้น (กรัม/กิโลกรัม FW) ของเอชินาโคไซด์ (A), ซิสตาโนไซด์ A (B), แอกทีโอไซด์ (C), ไอโซแอคทีโอไซด์ (D) และ 2′-อะเซทิลแลคทีโอไซด์ (E) ใน Cistanche Deserticola Slice ตามวิธีการประมวลผลที่แตกต่างกัน ตัวอักษรที่แตกต่างกัน (a–e) แสดงถึงความแตกต่างที่มีนัยสำคัญทางสถิติระหว่างการรักษา (การทดสอบ Duncan, p<0.05, n=3).

กิจกรรมต้านอนุมูลอิสระ

คุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระของชิ้นต่างๆ ตามที่ประเมินโดย ORAC, DPPH และ FRAP จะแสดงไว้ในรูปที่ 2 ตามที่คาดไว้ ค่า ORAC แสดงการเปลี่ยนแปลงในวงกว้างในกลุ่มตัวอย่าง ตั้งแต่ 13.34 µmol TE/g FW ในตัวอย่างสด จนถึง 108.62 µmol TE/g FW ที่กำลังนึ่ง 7 นาที ในระหว่างกระบวนการนึ่ง ค่า ORAC เพิ่มขึ้น 4- เท่าระหว่างการนึ่ง 1 ถึง 7 นาที แนวโน้มที่คล้ายกันถูกพบในการทดสอบทั้ง DPPH และ FRAP ซึ่งแสดงให้เห็นการเพิ่มขึ้นอย่างรวดเร็วระหว่างการบำบัดด้วยไอน้ำ แม้ว่าตัวอย่างที่ได้รับการบำบัดด้วยไอน้ำในตอนแรกจะมีค่าสารต้านอนุมูลอิสระต่ำกว่า (ที่ 1 นาที) แต่ตัวอย่างเหล่านี้กลับแสดงความสามารถในการคงความสามารถในการต้านอนุมูลอิสระได้ดีกว่ามากในระหว่างกระบวนการ ในกรณีของการลวก ไม่พบความแตกต่างที่มีนัยสำคัญในคุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระเมื่อเปรียบเทียบกับการอบแห้งด้วยเตาอบโดยตรง

รูปที่ 2 ระดับ (µmol TE/g FW) ของความสามารถในการดูดกลืนรังสีจากอนุมูลอิสระ (ORAC) (A), 2, 2-ไดฟีนิล-1-กิจกรรมกำจัดอนุมูลอิสระพิคริลไฮดราซิล (DPPH) (B) และ คุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระของเฟอร์ริกรีดิวซ์ (FRAP) (C) ของชิ้น Cistanche Deserticola ตามวิธีการประมวลผลที่แตกต่างกัน ตัวอักษรที่แตกต่างกัน (a–f) แสดงถึงความแตกต่างที่มีนัยสำคัญทางสถิติระหว่างการรักษา (การทดสอบ Duncan, p<0.05, n=3).

ยังไม่มีการรายงานฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระของ ORAC ในลำต้นดิบหรือชิ้นของ C. Deserticola อย่างไรก็ตาม สารสกัดเอธานอลจากลำต้นดิบของ C. Deserticola ได้รับการวัดในการทดสอบ DPPH และ FRAP28) แสดงฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระสูง ซึ่งต่ำกว่า 2(3)-t-butyl-4-hydroxyanisole (BHA) เล็กน้อย และ สูงกว่าบาท ยิ่งไปกว่านั้น ฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์ที่แยกได้จาก C. Deserticola มีฤทธิ์กำจัด DPPH ที่รุนแรง ซึ่งต่ำกว่ากรดแอสคอร์บิกเล็กน้อย29) และสูงกว่าโทโคฟีรอล2) C. Deserticola สามารถเป็นแหล่งที่มีศักยภาพของสารต้านอนุมูลอิสระตามธรรมชาติ เนื่องจากคุณสมบัติต้านอนุมูลอิสระของสารประกอบบริสุทธิ์ที่แยกได้ จาก C. Deserticola มีค่าสูงกว่าสารต้านอนุมูลอิสระสังเคราะห์บางชนิด ดังที่แสดงไว้ในตารางที่ 2 BHT แสดงอย่างมีนัยสำคัญ (หน้า<0.05) higher antioxidant properties than C. deserticola slices steamed for 7 min. Therefore, there is still a big gap between C. deserticola slices and synthetic antioxidants of equal quality.

การทดสอบ DPPH ใช้ทั้งกลไกการถ่ายโอนอะตอมไฮโดรเจน (HAT) และการถ่ายโอนอิเล็กตรอนเดี่ยว (SET) ในขณะที่การทดสอบ ORAC และ FRAP เป็นไปตามหลักการของปฏิกิริยา HAT และ SET ตามลำดับ 30) ในการศึกษานี้ แนวโน้มทั่วไปของความสามารถในการต้านอนุมูลอิสระ ประเมินโดยการทดสอบทั้ง 3 แบบมีความคล้ายคลึงกันมาก ดังนั้นเราจึงยืนยันว่าชิ้นแห้งของ C. Deserticola (นึ่ง อบแห้งโดยตรงในเตาอบ และลวก) มีนัยสำคัญ (p<0.05) higher levels of antioxidant activity than fresh ones. Furthermore, steaming for 5 and 7 min significantly (p<0.05) enhanced levels of antioxidant activity compared with direct oven drying and blanching. Overall, our results showed that steaming fresh-cut C. deserticola slices was effective in preserving phenylethanoid glycoside levels and antioxidant activity.

น้ำตาลที่ละลายน้ำได้ โพลีแซ็กคาไรด์ และสารสกัดที่ละลายน้ำได้ของเอทานอลแบบเจือจาง

As shown in Fig. 3, levels of soluble sugars and polysaccharides exhibited the following descending order: fresh>directly oven-dried>steamed>ลวก ชิ้นลวกมีน้ำตาลที่ละลายน้ำได้ โพลีแซ็กคาไรด์ และสารสกัดที่ละลายได้ในเอทานอลเจือจางในระดับต่ำมาก คอร์เรสโปเข้ากันได้ดีกับการลดน้ำหนักที่สูง ตัวอย่างสดมีนัยสำคัญ (หน้า<0.05) higher content of soluble sugars (62.89 g/kg FW) and polysaccharides (17.36 g/kg FW) than the other samples, suggesting that heat treatment (oven drying, steaming, blanching) on fresh-cut samples would reduce the extraction of soluble sugars and polysaccharides. Heat treatment inhibited the hydrolysis of phenylethanoid glycosides to release the glucose, rhamnose, and so on. Moreover, heat treatment, used as an abiotic stress factors on fresh slices, gave rise to the synthesis of several phenylpropanoid compounds including phenylethanoid glycosides.27) Particularly, sugars contained in the slices were dissolved in the hot water to different extents by steaming or blanching. Thus, it is not surprising to see that the content of soluble sugars decreased by 23.88% in steaming and by 60.82% in blanching, while the content of polysaccharides decreased by 41.33% in steaming and by 53.83% in blanching, compared with fresh slices. It has been reported that the steaming process can increase reducing sugars and acidic polysaccharides in Ginseng Radix et Rhizoma,18) and mono sugars, including galactose and glucose, in Rehmanniae Radix.17) However, the whole dried crude drugs studied in the above-mentioned literature were quite different from the fresh-cut slices used in the present study.

รูปที่ 3 ความเข้มข้น (กรัม/กิโลกรัม FW) ของน้ำตาลที่ละลายน้ำได้ (A), โพลีแซ็กคาไรด์ (B) และสารสกัดที่ละลายน้ำได้ของเอธานอลเจือจาง (C) ของชิ้น Cistanche Deserticola ตามวิธีการประมวลผลที่แตกต่างกัน ตัวอักษรที่แตกต่างกัน (a–e) แสดงถึงทางสถิติ ความแตกต่างที่มีนัยสำคัญระหว่างการรักษา (Duncan test, p<0.05, n=3).

ชิ้นที่ตากแห้งในเตาอบโดยตรงมีปริมาณสารสกัดที่ละลายได้ในเอธานอลเจือจางสูงสุด (89.26 กรัม/กิโลกรัม FW) ในขณะที่ชิ้นที่ลวกจะมีปริมาณต่ำสุด (47.60 กรัม/กิโลกรัม FW) แม้ว่าชิ้น C. Deserticola ที่ผ่านกระบวนการแปรรูปทั้งหมดจะเป็นไปตามมาตรฐานของเภสัชตำรับจีน (ฉบับปี 2015) ที่จะมีคุณสมบัติเป็น Cistanches Herba แต่ชิ้นที่ลวกแล้วจะให้ประโยชน์ต่อสุขภาพน้อยกว่าตัวอย่างที่ตากแห้งในเตาอบโดยตรง เนื่องจากสูญเสียอย่างรุนแรงของเจือจางที่ละลายในเอธานอล สารสกัด ในส่วนของกระบวนการนึ่ง แนวโน้มของน้ำตาลที่ละลายน้ำได้มีความคล้ายคลึงกับแนวโน้มที่สังเกตได้จากสารสกัดที่ละลายได้ในเอธานอลเจือจาง โดยค่อยๆ ลดลงโดยไม่เห็นการเปลี่ยนแปลงที่มีนัยสำคัญจาก 3 ถึง 7 นาที ความเข้มข้นของโพลีแซ็กคาไรด์ผันผวนโดยเพิ่มขึ้นเล็กน้อยตลอดระยะเวลาการนึ่ง โดยเฉพาะอย่างยิ่ง การนึ่ง 7 นาทีแสดงให้เห็นการเก็บรักษาโพลีแซ็กคาไรด์ได้ดี แต่มีการสูญเสียน้ำตาลที่ละลายน้ำได้มาก ในขณะที่การนึ่ง 5 นาทีแสดงให้เห็นตรงกันข้าม เมื่อเปรียบเทียบกับการอบแห้งด้วยเตาอบโดยตรง

บทสรุป

เราได้รายงานผลของการนึ่งต่อสารออกฤทธิ์ทางชีวภาพและฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระใน C. Deserticola ที่ตัดสดเป็นครั้งแรก และให้ข้อมูลที่สำคัญสำหรับการพัฒนากระบวนการที่มีประสิทธิภาพสำหรับการบำบัดหลังการเก็บเกี่ยวของลำต้น C. Deserticola ชิ้นสดแสดงให้เห็นประสิทธิภาพที่แย่ที่สุดในการสกัดฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์และสารประกอบต้านอนุมูลอิสระ ซึ่งเผยให้เห็นว่าสารเหล่านี้มีแนวโน้มที่จะย่อยสลายของเอนไซม์ ในทางตรงกันข้าม ตัวอย่างที่นึ่งมีฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์และฤทธิ์ต้านอนุมูลอิสระในระดับสูงสุด แม้ว่าการลวกจะทำให้เนื้อหาของแอคทีโอไซด์ ไอโซแอคทีโอไซด์ และ 2′-อะซิติแลกทีโอไซด์เพิ่มขึ้นเล็กน้อยเมื่อเทียบกับการอบแห้งด้วยเตาอบโดยตรง แต่ค่าน้ำหนัก น้ำตาลที่ละลายน้ำได้ โพลีแซ็กคาไรด์ และสารสกัดที่ละลายในเอทานอลเจือจางล้วนลดลงอย่างมาก สำหรับกระบวนการนึ่ง ระดับของฟีนิลทานอยด์ไกลโคไซด์และโพลีแซ็กคาไรด์เพิ่มขึ้นเล็กน้อยเมื่อเวลาผ่านไป นึ่งเป็นเวลา 5 และ 7 นาทีอย่างมาก (น<0.05) enhanced total levels of the five phenylethanoid glycosides than directly oven drying. However, the longer the steaming process, the greater the decrease in weight, soluble sugars, and dilute ethanol-soluble extracts. No significant decrease in soluble sugars was observed when slices were steamed from 1 to 5 min compared with directly oven-dried samples. The steaming time had a consistent effect on the antioxidant properties, with a significant increase evaluated by the DPPH, ORAC, and FRAP assays. It was concluded that C. deserticola slices can be successfully treated with 5 to 7 min of steaming to improve the phenylethanoid glycoside levels and antioxidant activity while preserving the amounts of soluble sยูการ์ โพลีแซ็กคาไรด์ และสารสกัดที่ละลายในเอธานอลเจือจาง

Cistanche TUBULOSA ANTI-FATIGUE ANTI-OXIDANT PHGS75% ECH 30% ACT 12%